验证IRE1α定位于MAMs
确认IRE1α存在于MAMs中
通过密度梯度离心分离MEFs和小鼠肝脏的亚细胞组分,Western blot检测IRE1α和PERK在MAM组分中的富集
Non-canonical function of IRE1α determines mitochondria-associated endoplasmic reticulum composition to control calcium transfer and bioenergetics.
包含MEFs体外模型、条件敲除小鼠肝脏体内模型、蛋白质组学和代谢组学等多层级证据,并进行功能与机制验证
IRE1α敲除及其重建的MEFs CRISPR-Cas9制备的IRE1α敲除MEFs Ern1条件性敲除小鼠(Ern1ΔK和Ern1ΔR)肝脏 HEK293T细胞
ATP刺激浓度100 μM用于钙成像 M3M3FBS浓度50 μM用于激活PLC 小鼠体内poly:IC注射剂量150 μg,每两天一次共三次 tunicamycin处理浓度0.1 μg ml−1(细胞)或1 mg kg−1(小鼠) 葡萄糖耐量试验中葡萄糖剂量1.5 g kg−1
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认IRE1α存在于MAMs中
通过密度梯度离心分离MEFs和小鼠肝脏的亚细胞组分,Western blot检测IRE1α和PERK在MAM组分中的富集
明确IRE1α是否影响内质网-线粒体钙转移
在IRE1α敲除和重建细胞中,用ATP或M3M3FBS刺激后,同时检测胞质钙(Fura2)和线粒体钙(Rhod2或CEPIA2mt)
确定IRE1α缺失是否改变线粒体生理和能量代谢
测量线粒体膜电位(TMRM)、ATP水平(荧光素酶法和FRET探针)、耗氧率(Seahorse)、AMPK磷酸化、LC3-II水平、线粒体形态(TEM)和MAM含量(免疫荧光和TEM)
探究IRE1α是否控制InsP3R在MAMs的分布
纯化MAM组分,Western blot检测InsP3R1/3;使用PLA检测InsP3R与VDAC1的邻近;TEM测量ER-线粒体间距;SPLICSL检测宽MAM接触
确定IRE1α是否通过物理互作支架InsP3R,且不依赖其酶活性
免疫共沉淀(HEK293T和MEFs)、GST pull-down、PLA;使用IRE1α突变体(ΔN、ΔC、D123P、P830L)评估钙转移和XBP1剪接
确认InsP3R下调是IRE1α缺失导致线粒体缺陷的原因
在IRE1α敲除细胞中用CRISPR激活系统(CRa)上调内源InsP3R1或InsP3R3,检测MAMs的InsP3R、线粒体钙摄取、膜电位、AMPK磷酸化和ATP水平
在小鼠肝脏中验证IRE1α对MAMs的InsP3R定位及代谢的影响
使用Mx-Cre诱导的Ern1ΔK和Ern1ΔR小鼠,TEM分析MAM形态,定量蛋白质组学分析MAM组分,Western blot检测InsP3R1,代谢组学分析肝脏代谢物,葡萄糖耐量试验
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| Western blot | RIPA缓冲液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| 抗HSP90抗体 | Santa-Cruz | sc-13119 | |
| 抗HA抗体 | Invitrogen | 715500 | |
| 抗PERK抗体 | CST | 3192 | |
| 抗VDAC1抗体 | CST | 4866 | |
| 抗InsP3R3抗体 | BD-Biosciences | 610313 | |
| 抗MCU抗体 | Santa-Cruz | sc-246071 | |
| 抗钙联蛋白抗体 | Stressgene | SPA-860 | |
| 抗LC3B抗体 | CST | 2775S | |
| 抗磷酸化AMPK抗体 | CST | 2535 | |
| 抗总AMPK抗体 | CST | 5832 | |
| 免疫荧光 | 抗HA抗体 | Biolegend | 901514 |
| 抗InsP3R1抗体 | Abcam | ab5804 | |
| 抗VDAC1抗体 | Abcam | ab14734 | |
| 抗TOM20抗体 | Abcam | ab56783 | |
| 抗ERp72抗体 | Stressgene | SPS-720 | |
| 钙成像 | Fura2钙指示剂 | -- | -- |
| Rhod2钙指示剂 | -- | -- | |
| Mag-Fluo4-AM钙指示剂 | Invitrogen | -- | |
| 线粒体膜电位 | 四甲基罗丹明甲酯 | -- | -- |
| ATP检测 | 荧光素酶检测试剂盒 | Invitrogen | A22066 |
| 耗氧率检测 | Seahorse XFe96细胞外通量分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| 免疫沉淀 | 磁珠 | Biorad | 1614013 |
| GST pull-down | 谷胱甘肽琼脂糖珠 | Thermo Scientific | -- |
| CRISPR激活 | CRISPR激活慢病毒颗粒 | Santa Cruz | sc-421192-LAC, sc-421194-LAC, sc-437282 |
| CRISPR敲除 | 双切口酶 | Santa Cruz | sc-429758-NIC, sc-437281 |
| 动物实验 | 聚肌胞苷酸 | Invivogen | -- |
| 衣霉素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 钙成像 | ATP刺激浓度100 μM,M3M3FBS浓度50 μM,Fura2和Rhod2的加载浓度和时间 阅读提示:Methods: Calcium imaging, ER dynamics and mitochondrial membrane potential; Fig. 1c-f, h |
| 线粒体功能检测 | TMRM浓度10 nM,FCCP浓度1 μM,寡霉素1 μM,鱼藤酮/抗霉素A 1 μM;Seahorse分析中使用的细胞数量和培养时间 阅读提示:Methods: ATP determination and mitochondrial respiration; Fig. 2a-h |
| IRE1α突变体实验 | 突变体质粒转染量,tunicamycin处理浓度0.1 μg ml−1和时间4 h 阅读提示:Fig. 4a, b; Methods: Cell culture, cell lines and DNA constructs |
| 小鼠体内实验 | poly:IC注射剂量150 μg,每两天一次共三次;tunicamycin注射剂量1 mg kg−1,6小时;小鼠年龄2-6个月,性别匹配 阅读提示:Methods: Animal studies; Fig. 6a |
| 葡萄糖耐量试验 | 葡萄糖剂量1.5 g kg−1,小鼠禁食过夜,8周龄雄性 阅读提示:Methods: Animal studies; Fig. 7f |