ULK1通过磷酸化Beclin-1并激活VPS34脂质激酶诱导自噬

ULK1 induces autophagy by phosphorylating Beclin-1 and activating VPS34 lipid kinase.

作者信息Ryan C Russell, Ye Tian, Haixin Yuan, Hyun Woo Park, Yu-Yun Chang, Joungmok Kim, Haerin Kim, Thomas P Neufeld, Andrew Dillin, Kun-Liang Guan
PMID23685627
发布时间2013-07
DOI10.1038/ncb2757

实验完整度

高

包含体外激酶与脂质激酶实验、细胞模型功能验证、线虫在体模型验证及多种突变体机制解析

主要模型

小鼠胚胎成纤维细胞(MEF,野生型、ULK缺陷型、FIP200-/-) HEK293细胞 HeLa细胞(shBeclin-1重建稳转系) 秀丽隐杆线虫bec-1(ok700)转基因拯救系

重点核对

氨基酸饥饿或mTOR抑制剂Torin-1处理条件 Beclin-1 S14A/S14D突变体与野生型对照 ULK1/ULK2体外激酶实验及[γ32P]ATP标记 ATG14L免疫沉淀的VPS34脂质激酶活性测定 C. elegans bec-1 S6A转基因拯救实验

摘要

自噬是响应营养饥饿激活的主要细胞分解代谢程序。自噬的起始,特别是由氨基酸缺乏引发的自噬起始,需要ULK激酶。尽管ULK在自噬起始中具有关键作用,但ULK促进自噬的机制尚不清楚。在此,我们描述了将ULK与促自噬脂质激酶VPS34联系起来的分子机制。在氨基酸饥饿或mTOR抑制下,激活的ULK1磷酸化Beclin-1的S14位点,从而增强含ATG14L的VPS34复合物的活性。ULK对Beclin-1 S14的磷酸化是哺乳动物中完整自噬诱导所必需的,并且这一需求在秀丽隐杆线虫中保守。我们的研究揭示了从ULK1到自噬特异性VPS34复合物激活及自噬诱导的分子联系。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ULK激酶如何激活VPS34脂质激酶并诱导自噬?
核心机制
氨基酸饥饿或mTOR抑制激活ULK1,ULK1通过ATG14L招募至VPS34-Beclin-1复合物,磷酸化Beclin-1 S14,从而增强含ATG14L的VPS34脂质激酶活性并促进自噬诱导。
主要证据
体外激酶实验证明ULK1直接磷酸化Beclin-1 S14;ULK缺陷和FIP200-/- MEF中ATG14L-VPS34激活及自噬诱导受损;Beclin-1 S14A突变体不能恢复自噬;C. elegans中保守位点S6突变导致自噬缺陷。
研究意义
揭示了从ULK1到自噬特异性VPS34复合物激活的分子联系,阐明了氨基酸-TORC1-ULK1-VPS34-Beclin-1信号通路在自噬起始中的作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测VPS34复合物在氨基酸饥饿下的活性变化

验证不同VPS34复合物对氨基酸饥饿的响应差异

用VPS34、Beclin-1或ATG14L抗体免疫沉淀MEF细胞中的VPS34复合物,进行PI3P脂质激酶实验,比较营养丰富与氨基酸饥饿条件下的活性。

2

验证ULK激酶对ATG14L-VPS34复合物激活的必要性

确定ULK激酶是否参与氨基酸饥饿诱导的ATG14L-VPS34复合物激活

在野生型、ULK1-/- ULK2敲低(ULK缺陷)和FIP200-/- MEF中免疫沉淀ATG14L、VPS34或Beclin-1复合物,进行脂质激酶实验,并检测LC3B斑点和PI3P水平。

3

鉴定ULK1对Beclin-1的磷酸化位点

确定ULK1直接磷酸化Beclin-1的位点

使用[γ32P]ATP进行体外ULK1激酶实验,结合Beclin-1截短体和点突变,以及质谱分析,鉴定磷酸化位点。

4

验证Beclin-1 S14磷酸化对VPS34激活的必要性

确定Beclin-1 S14磷酸化是否介导ULK1对ATG14L-VPS34复合物的激活

在293细胞中共转染ATG14L、VPS34、Beclin-1(WT或S14A)和ULK1,免疫沉淀ATG14L复合物进行脂质激酶实验,并用磷酸化特异性抗体检测Beclin-1 S14磷酸化。

5

验证Beclin-1 S14在体内响应氨基酸饥饿和mTOR抑制的磷酸化

确定Beclin-1是否为ULK的生理底物

在野生型、FIP200-/-和ULK缺陷MEF中,进行氨基酸饥饿时间进程或Torin-1处理,免疫沉淀ATG14L结合的Beclin-1,用pBeclin-1 S14抗体检测磷酸化。

6

解析ATG14L促进Beclin-1磷酸化的机制

确定ATG14L如何增强ULK1对Beclin-1的磷酸化

通过共转染和免疫沉淀实验检测ULK1、ATG14L和Beclin-1的相互作用,使用ATG14LΔCCD、ΔBATS、ΔN突变体,以及ATG14L诱导表达细胞系。

7

验证Beclin-1 S14磷酸化对自噬诱导的必要性

确定Beclin-1 S14磷酸化是否必需于自噬诱导

在HeLa shBeclin-1重建细胞系中表达Beclin-1 WT或S14A,检测LC3B II积累和电镜观察自噬体;在FIP200-/- MEF中表达Beclin-1 S14D,检测LC3B斑点。

8

验证C. elegans中保守磷酸化位点的功能

确定ULK磷酸化位点在多细胞生物中的保守功能

构建bec-1(WT或S6A)转基因拯救线虫,检测PGL-1颗粒清除和LGG-1斑点形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗磷酸化Beclin-1 (S14)抗体Abbiotec254515
抗LC3B抗体Cell Signaling Technology2775
抗Vps34抗体Cell Signaling Technology4263
抗Beclin-1抗体Cell Signaling Technology3738
抗ULK1抗体Cell Signaling Technology8054
抗pULK1 S757抗体Cell Signaling Technology6888
抗磷酸化S6K抗体Cell Signaling Technology9205
抗Atg14L抗体MBLPD026
抗UVRAG抗体MBLM160-3
抗LC3B抗体MBLPM036
抗Vps34抗体EchelonZR015
抗Beclin-1抗体BethylA302-567A
抗Vinculin抗体SIGMAV9264
抗α-微管蛋白抗体SIGMAT6199
抗Flag抗体SIGMAF3165
抗Atg14L抗体SIGMAA6358
抗HA抗体(克隆16B12)CovanceMMS-101P
抗Myc抗体(克隆9E10)CovanceMMS-150P
抗肌动蛋白抗体AbcamAb3280
胎牛血清Hyclone--
青霉素/链霉素Invitrogen--
非必需氨基酸Invitrogen--
透析胎牛血清Invitrogen--
聚凝胺Sigma--
嘌呤霉素Invivogen--
潮霉素Invitrogen--
蛋白A珠Repligen--
蛋白酶抑制剂混合物-EDTARoche--
GST-ULK1 (1-649)CQuential Solutions--
GST-ULK2 (1-478)CQuential Solutions--
抗DYKDDDDK抗体Agilent Technologies200474
Olympus FV1000共聚焦显微镜Olympus--
JEOL 1200EX II透射电子显微镜JEOL--
Gatan数码相机Gatan--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
氨基酸饥饿处理
饥饿培养基配方(无氨基酸、透析FBS)、饥饿持续时间、处理前培养基更换时间点
阅读提示:Methods中Cell Culture小节及图注中氨基酸饥饿条件描述
VPS34脂质激酶实验
免疫沉淀抗体、激酶缓冲液成分(磷脂酰肌醇浓度、ATP浓度、MnCl2浓度)、反应时间与温度
阅读提示:Methods中in vitro VPS34 lipid kinase assay小节
ULK1体外激酶实验
ULK1来源(免疫沉淀或重组蛋白)、ATP浓度、[γ32P]ATP用量、反应终止方式
阅读提示:Methods中In vitro ULK1 kinase assay小节
Beclin-1 S14磷酸化检测
磷酸化抗体来源与货号、磷酸酶处理对照、免疫沉淀条件
阅读提示:Methods中Antibodies小节及图3a图注
C. elegans转基因拯救实验
bec-1(ok700)等位基因背景、转基因构建方式、PGL-1和LGG-1抗体来源、胚胎评分标准
阅读提示:Methods中C. elegan Strains和C. elegan Reporter Construction小节及图7图注
shBeclin-1重建稳转系构建
shRNA靶序列、病毒感染方案、筛选抗生素浓度、重建Beclin-1表达水平验证
阅读提示:Methods中Generation of knock-down reconstitution lines小节