Cdh1基因陷阱小鼠的建立与验证
获得Cdh1功能缺失等位基因并验证其敲除效果。
将BayGenomics的基因陷阱ES细胞克隆(RRJ067)注射入C57BL/6囊胚获得嵌合体,繁育后获得生殖系传递;通过Western blot和LacZ染色分析Cdh1蛋白缺失及表达模式。
The adaptor protein of the anaphase promoting complex Cdh1 is essential in maintaining replicative lifespan and in learning and memory.
包含基因敲除小鼠、MEFs、胎盘组织、电生理和恐惧条件化行为学等多层级实验,并有功能与机制验证。
Cdh1基因陷阱敲除小鼠(Cdh1gt/gt和Cdh1+/gt) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) E9.5胚胎及胎盘组织 293T和HeLa细胞系
Cdh1gt/gt胚胎在E9.5左右死亡,突变体胎盘缺乏巨细胞且cyclin B1积累。 Cdh1gt/gt MEFs增殖减慢、BrdU掺入减少、p16和Ets2蛋白升高,Ets2半衰期延长。 Ets2敲低可降低p16表达并恢复Cdh1gt/gt MEFs增殖;Ets2DBM比野生型Ets2更强烈抑制野生型MEFs生长并诱导衰老。 Cdh1+/gt小鼠海马L-LTP(四串100 Hz HFS)受损,E-LTP和基础突触传递正常。 Cdh1+/gt小鼠情境恐惧条件化受损,但线索恐惧条件化正常。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得Cdh1功能缺失等位基因并验证其敲除效果。
将BayGenomics的基因陷阱ES细胞克隆(RRJ067)注射入C57BL/6囊胚获得嵌合体,繁育后获得生殖系传递;通过Western blot和LacZ染色分析Cdh1蛋白缺失及表达模式。
确定Cdh1缺失对体内发育和胎盘形成的影响。
杂合子互交,分析不同发育阶段胚胎;对E9.5胎盘进行H&E染色和cyclin B1免疫染色。
研究Cdh1在细胞周期和复制性寿命中的作用。
从E9.0-E9.5胚胎分离MEFs,进行生长曲线(MTT)、BrdU掺入、phospho-H3免疫印迹和衰老相关β-半乳糖苷酶染色。
鉴定Cdh1缺失后稳定的底物并阐明其引发衰老的分子机制。
Western blot分析多种细胞周期调节因子;检测p16 mRNA和蛋白;CHX追踪Ets2半衰期;Ets2 shRNA敲低;Ets2和Ets2DBM过表达;免疫共沉淀检测Cdh1与Ets2相互作用。
确定Cdh1表达降低对海马突触功能和学习记忆的影响。
制备海马切片,记录Schaffer collateral-CA1突触的fEPSP,诱导E-LTP和L-LTP;进行情境和线索恐惧条件化行为测试。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | 细胞增殖试剂盒(MTT) | Roche | -- |
| Western blot | 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- |
| 抗Cdh1抗体(克隆DH01) | Abcam | -- | |
| 抗p27抗体 | Cell Signaling Technology | 2552 | |
| 抗Cdc20抗体 | Santa Cruz Biotech. | sc-8358 | |
| 抗cyclin B1抗体 | Santa Cruz Biotech. | sc-752 | |
| 抗Aurora B抗体 | BD Biosciences | 611083 | |
| 抗Skp2抗体 | Santa Cruz Biotech. | sc-764 | |
| 抗p21抗体 | Santa Cruz Biotech. | sc-397-G | |
| 抗Plk1抗体 | Santa Cruz Biotech. | sc-17783 | |
| 抗磷酸化H3抗体 | Millipore Corporation | 06-570 | |
| 抗Flag抗体 | Sigma | A8592 | |
| 抗myc抗体 | Sigma | M5546 | |
| Ets2敲低 | 逆转录病毒Ets2 shRNA载体(V2MM_39638) | Open Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Cdh1基因陷阱小鼠的建立与验证 | 基因陷阱ES细胞克隆来源(RRJ067,BayGenomics)、插入位点(Cdh1内含子5)、嵌合体注射背景(C57BL/6囊胚)、生殖系传递验证、Western blot所用抗体及LacZ染色方法。 阅读提示:Methods 'Generation and analysis of Cdh1 Knockout Mice' 及 Fig. S1。 |
| Cdh1缺失小鼠的胚胎发育与胎盘表型分析 | 胚胎取材时间点(E8.5、E9.5)、胎盘H&E和cyclin B1免疫染色条件、突变体基因型鉴定。 阅读提示:Methods 'Generation and analysis of Cdh1 Knockout Mice' 及 Fig. 1。 |
| Cdh1缺失MEFs的增殖与衰老分析 | MEFs分离胚胎期(E9.0–E9.5)、培养基成分(DMEM、2 mM谷氨酰胺、1%青霉素/链霉素、15% FBS)、实验用细胞代次(P2或更高,生长曲线用P3和P6)、MTT和BrdU实验条件、独立实验重复数(三个独立实验)。 阅读提示:Methods 'Cell Culture' 及 Fig. 2。 |
| Cdh1底物及Ets2-p16通路的机制解析 | CHX处理浓度和时间、Ets2 shRNA序列(GGGATTTATGTAGCAGCTATT)及敲低效率、Ets2DBM突变(D-box RGTL突变为GGTV)、瞬转DNA量、免疫共沉淀条件、抗体货号。 阅读提示:Methods 'Western blot analysis and antibodies' 及 Fig. 3、Fig. 4、Fig. S3。 |
| Cdh1杂合小鼠的突触可塑性与学习记忆行为评估 | 小鼠周龄(10–16周)、海马切片厚度(400 μm)、灌流液成分和流速(1.5 ml/min)、HFS参数(100 Hz、1 s、串间隔5 min)、fEPSP基线强度(最大反应的35–50%)、恐惧条件化足底电击强度(0.7 mA、2 s)、每组小鼠和切片数量(E-LTP:每组5只小鼠,每只5片;L-LTP:每组8只小鼠,每只10片;行为:12只野生型和12只杂合)。 阅读提示:Methods 'Electrophysiology'、'Behavior testing' 及 Fig. 5。 |