晚期肿瘤内cDC功能与PPP活性分析
比较早期和晚期肿瘤内cDC的功能状态及代谢特征,识别关键代谢差异。
对MC38荷瘤小鼠早期(8-10天)和晚期(20-30天)肿瘤内DC进行scRNA-seq;分选cDC进行central carbon metabolomics和转录组分析;流式检测成熟标志物;qRT-PCR检测功能基因;体外共培养检测T细胞激活能力。
Pentose phosphate pathway fuels cGAS-STING signalling to boost function of intratumoral conventional dendritic cells.
包含scRNA-seq、代谢组学、基因敲除小鼠、多种肿瘤模型、BMDC过继治疗及患者乳腺癌样本验证
MC38肿瘤荷瘤小鼠的肿瘤浸润cDC G6pdxfl/flZbtb46-Cre(cDC特异性PPP缺陷)小鼠 骨髓来源树突状细胞(BMDC)过继治疗肿瘤模型 乳腺癌患者肿瘤组织来源的DC
G6pdxfl/flZbtb46-Cre小鼠中cDC特异性G6PDX敲除 PPP抑制剂G6PDi-1(100 μM)和6-AN(50 μM)处理12小时 PPP激动剂AG1(3 μM)处理12小时 BMDC过继治疗:3×10^6细胞/小鼠,于肿瘤接种后第3天和第6天注射 ISD(2 μg/mL)刺激4小时激活STING信号
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较早期和晚期肿瘤内cDC的功能状态及代谢特征,识别关键代谢差异。
对MC38荷瘤小鼠早期(8-10天)和晚期(20-30天)肿瘤内DC进行scRNA-seq;分选cDC进行central carbon metabolomics和转录组分析;流式检测成熟标志物;qRT-PCR检测功能基因;体外共培养检测T细胞激活能力。
验证PPP活性变化是否足以改变cDC的表型和抗肿瘤功能。
早期肿瘤内cDC用PPP抑制剂G6PDi-1或6-AN处理,晚期cDC用PPP激动剂AG1处理;检测成熟标志物和功能基因;将处理后的cDC过继转移至荷瘤小鼠,观察肿瘤生长和T细胞应答。
通过cDC特异性G6PDX敲除验证PPP在cDC抗肿瘤免疫中的内在作用。
构建G6pdxfl/flZbtb46-Cre(KO)小鼠;接种MC38、B16-F10或LLC肿瘤;检测肿瘤生长、生存期、cDC功能基因和T细胞应答;用WT和KO BMDC进行过继治疗实验。
探究PPP是否通过STING信号影响cDC功能。
对WT和KO肿瘤内cDC进行RNA-seq和KEGG分析;Western blot检测STING、STAT1、AKT磷酸化;qRT-PCR检测I型干扰素;使用STING激动剂ISD、cGAMP、DMXAA以及STING缺陷DC进行挽救实验。
确定PPP调控STING信号的具体代谢节点。
检测细胞内ATP、GTP和2’3’-cGAMP水平;使用嘌呤代谢抑制剂6-MP和嘧啶代谢抑制剂;补充R5P、ATP/GTP或cGAMP;检测STING磷酸化和I型干扰素表达。
评估增强PPP能否改善DC介导的肿瘤免疫治疗及免疫检查点阻断疗效。
在BMDC过继治疗模型中,用AG1处理DC或补充ATP/GTP;联合抗PD-L1抗体治疗;检测肿瘤生长和肿瘤浸润T细胞。
验证小鼠发现是否适用于人乳腺癌患者DC。
从乳腺癌患者肿瘤组织分离DC;用PPP抑制剂、嘌呤代谢抑制剂处理;检测STING磷酸化、I型干扰素、ATP/GTP和cGAMP水平;补充ATP/GTP或cGAMP进行挽救。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| BMDC generation | FLT-3L | Bio X Cell | BE0098 |
| 细胞分离 | 淋巴细胞分离液 | Stem cell | 78071 |
| 人泛DC预富集试剂盒 | Stem cell | 19521 | |
| 小鼠CD11c阳性选择试剂盒 | Stem Cell | 18780 | |
| 小鼠CD8α阳性选择试剂盒 | Stem Cell | 18953 | |
| 小鼠CD4 T细胞分离试剂盒 | Biolegend | 480033 | |
| Percoll密度梯度离心液 | Cytiva | -- | |
| T cell proliferation assay | CFSE | Thermo Fisher Scientific | C34570 |
| T cell stimulation | SIINFEKL肽 | Sigma | A5503 |
| Western blot | 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | -- | -- |
| RNA extraction | TRIzol试剂 | Accurate Biology | AG21102 |
| RT-qPCR | 一步法RT-gDNA消化预混液 | YEASEN | 11142ES60 |
| qPCR SYBR Green预混液 | YEASEN | 11202ES60 | |
| Metabolite extraction | ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱 | -- | -- |
| Atlantis Premier BEH Z-HILIC色谱柱 | -- | -- | |
| Metabolite detection | AB Sciex Triple Quad 6500+质谱仪 | AB Sciex | -- |
| DC stimulation | PEI转染试剂 | YEASEN | 40815ES03 |
| DC treatment | G6PDi-1 | -- | -- |
| 6-氨基烟酰胺 | -- | -- | |
| AG1 | -- | -- | |
| MITO-TEMPO | -- | -- | |
| 核糖5-磷酸 | -- | -- | |
| 6-巯基嘌呤 | -- | -- | |
| 5-氟尿嘧啶 | -- | -- | |
| 来氟米特 | -- | -- | |
| BRQ | -- | -- | |
| ATP measurement | 发光细胞活力检测试剂盒 | Promega | G7570 |
| GTP and cGAMP measurement | 蛋白提取试剂 | Thermo Fisher Scientific | 78503 |
| GTP measurement | GTP酶联免疫吸附试剂盒 | MEIBIAO BIOLOGY | 66393 A |
| cGAMP measurement | 2’3’-cGAMP酶联免疫吸附试剂盒 | Cayman Chemical | 501700 |
| Stable cell line generation | 聚凝胺 | -- | -- |
| Flow cytometry | 固定/透化缓冲液 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 肿瘤模型与cDC分离 | MC38、B16-F10、LLC细胞接种数量分别为5×10^5、1×10^6、1×10^6细胞/小鼠;早期肿瘤8-10天,晚期20-30天;cDC分选门控为CD45+CD24−F4/80−Ly6C−CD11c+MHC-II+ 阅读提示:Methods中Tumor model和Cell isolation小节;Fig. 1a图注 |
| PPP药理学调控 | G6PDi-1 100 μM、6-AN 50 μM、AG1 3 μM处理12小时;ISD 2 μg/mL刺激4小时;cGAMP 3 μg/mL;DMXAA 7.5 μM 阅读提示:Methods中DC stimulation and drug treatment小节;Fig. 2、Fig. 4图注 |
| BMDC过继治疗实验 | BMDC 3×10^6细胞/小鼠于肿瘤接种后第3天和第6天皮下注射至肿瘤邻近部位;BMDC需提前用SIINFEKL肽过夜预处理 阅读提示:Methods中Tumor model小节;Fig. 4、Fig. 6图注 |
| ATP/GTP补充实验 | ATP和GTP各100 μM预处理12小时(部分实验为4小时);单独补充ATP或GTP不足以挽救STING信号 阅读提示:Methods中Nucleotides supplement assay小节;Fig. 5图注;Supplementary Fig. 8 |
| 人乳腺癌样本DC实验 | 30例女性乳腺癌患者肿瘤组织;DC经Lymphoprep密度梯度离心和Human Pan-DC Pre-Enrichment Kit富集;G6PDi-1 100 μM、6-AN 50 μM、6-MP 50-100 μM处理12小时 阅读提示:Methods中Human samples和DC stimulation and drug treatment小节;Fig. 7图注 |