鉴定HRD1与TLR3的相互作用
筛选并验证HRD1与TLR3的物理互作及结构域需求。
在WT与Hrd1−/− RAW264.7细胞中进行抗HRD1免疫共沉淀-质谱(CoIP-MS);在HEK293T细胞中共转染TLR3-Flag与HRD1-Myc并进行免疫共沉淀;利用截短突变体定位互作结构域。
Ubiquitination by HRD1 is essential for TLR3 trafficking and its innate immune signaling.
包含巨噬细胞、HEK293T、MEF体外模型,CRISPR敲除、敲低、过表达、抑制剂、泛素化、转运定位及TLR3 K813R敲入小鼠体内验证等多层级功能与机制实验
RAW 264.7巨噬细胞(WT与Hrd1−/−) 原代腹腔巨噬细胞与BMDM HEK293T-TLR3稳定表达细胞(WT与Hrd1−/−) TLR3K813R敲入小鼠及C57BL/6J小鼠
poly(I:C)处理浓度50 μg/ml及所示时间点 LS-102使用浓度5 μM处理24 h(体外)或10 mg/kg体重/天连续3天(体内) Hrd1−/−与WT细胞的CRISPR/Cas9敲除及对照 TLR3 K813R敲入小鼠基因型鉴定及WT同窝对照 体内poly(I:C) 0.7 mg/kg体重联合D-GalN 0.5 g/kg体重注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选并验证HRD1与TLR3的物理互作及结构域需求。
在WT与Hrd1−/− RAW264.7细胞中进行抗HRD1免疫共沉淀-质谱(CoIP-MS);在HEK293T细胞中共转染TLR3-Flag与HRD1-Myc并进行免疫共沉淀;利用截短突变体定位互作结构域。
确定HRD1缺失或抑制对TLR3下游信号及炎症反应的影响。
比较WT与Hrd1−/− RAW264.7、HEK293T-TLR3细胞中TBK1、IRF3、P65、IκBα磷酸化;使用siRNA敲低Hrd1或LS-102处理原代巨噬细胞;qPCR检测炎症基因,ELISA检测细胞因子;HSV-1复制实验评估分泌组抗病毒活性。
探究TLR3信号是否上调HRD1表达及HRD1如何影响TLR3转录。
qPCR检测Hrd1、Ets1、Tlr3、Irf1、Irf2转录;免疫印迹检测ERK1/2、STAT1磷酸化;使用PD98059、LS-102、Fludarabine及细胞因子回补实验。
检验HRD1对TLR3信号的影响是否依赖其经典ERAD活性或UPR。
检测WT与Hrd1−/−细胞中全长TLR3丰度及CHX追踪降解;使用Eeyarestatin I抑制VCP/ERAD、毒胡萝卜素诱导ER应激、4μ8c抑制IRE1α,检测炎症基因表达。
确定HRD1是否直接泛素化TLR3及泛素链类型和关键结构域。
体内外泛素化实验;使用HRD1 C2A、ΔRING、ΔTM突变体;泛素K48R、K63R及K48-only、K63-only突变体;Brefeldin A阻断ER到高尔基转运;检测VCP、SEL1L、BIP、OS9与TLR3的相互作用。
确定HRD1缺失是否阻断TLR3从ER经高尔基向內溶酶体的转运和切割。
共聚焦显微镜检测TLR3与KDEL、TGN38、LAMP1、Calnexin、GM130、Rab5、Rab7共定位;Endo H/PNGase F糖苷酶处理;分离ER、高尔基和内体组分进行免疫印迹;检测ESCRT组分HRS、TSG101、VPS36与TLR3的结合。
确定HRD1泛素化TLR3的具体赖氨酸位点及其功能重要性。
构建TLR3胞质域11个K→R突变体筛选泛素化位点;在MEF中稳定表达WT或K813R TLR3-Flag,检测切割、糖苷酶敏感性、细胞器分布及下游信号。
评估HRD1抑制及TLR3 K813R突变对poly(I:C)诱导小鼠炎症和致死率的影响。
LS-102预处理C57BL/6J小鼠后注射poly(I:C)±D-GalN,检测血清细胞因子、存活率、肺HE染色和肝TUNEL;构建TLR3K813R敲入小鼠,分离BMDM检测信号,并进行体内poly(I:C)挑战。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与药物处理 | 高分子量聚肌胞苷酸 | InvivoGen | tlrl-pic |
| LS-102 | MedChemExpress | -- | |
| Eeyarestatin I | MedChemExpress | -- | |
| 4μ8c | MedChemExpress | -- | |
| 毒胡萝卜素 | EMD Calbiochem | -- | |
| MG132 | MedChemExpress | -- | |
| 布雷菲德菌素A | Sellck | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Cytiva | -- |
| 胎牛血清 | Braserum | -- | |
| BMDM诱导 | 巨噬细胞集落刺激因子 | PeproTech | -- |
| Western blot | Flag抗体 | Sigma | F1804 |
| HA抗体 | Proteintech | 51064-2-AP | |
| HRD1抗体 | Proteintech | 13473-1-AP | |
| SEL1L抗体 | Abclonal | A12073 | |
| IRE1α抗体 | Cell Signaling | 3294 | |
| PERK抗体 | Proteintech | 20582-1-AP | |
| Eif2α抗体 | Cell Signaling | 5324 | |
| 磷酸化Eif2α抗体 | Cell Signaling | 5324 | |
| β-微管蛋白抗体 | Proteintech | 10068-1-AP | |
| HSP90抗体 | Proteintech | 13171-1-AP | |
| Myc抗体 | ABclonal | AE010 | |
| V5抗体 | ABclonal | AE017 | |
| 磷酸化IκBα抗体 | ABclonal | AP0707 | |
| HRS抗体 | ABclonal | A1790 | |
| TSG101抗体 | ABclonal | A1692 | |
| VPS36抗体 | ABclonal | A15157 | |
| TLR3抗体 | NOVUS | NBP2-24875 | |
| 磷酸化TBK1 (Ser172)抗体 | Cell Signaling | D52C2 | |
| TBK1抗体 | Cell Signaling | E9H5S | |
| 磷酸化IRF3 (Ser396)抗体 | Cell Signaling | D601M | |
| IRF3抗体 | Cell Signaling | D83B9 | |
| IκBα抗体 | Cell Signaling | 9242 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling | 13E5 | |
| p65抗体 | Cell Signaling | D14E12 | |
| 磷酸化p65抗体 | Cell Signaling | 93H1 | |
| K48连接特异性泛素抗体 | Cell Signaling | D9D5 | |
| K63连接特异性泛素抗体 | Cell Signaling | D7A11 | |
| GOLPH2抗体 | ABclonal | A26409PM | |
| EEA1抗体 | ABclonal | A5057 | |
| 泛素抗体 | Santa Cruz | P4D1 | |
| TGN38抗体 | Santa Cruz | sc-166594 | |
| 小鼠IgG | Santa Cruz | sc-2025 | |
| 兔IgG | Abclonal | AC005 | |
| ERK1/2抗体 | Cell Signaling | 4695 | |
| 磷酸化ERK1/2抗体 | Cell Signaling | 9101 | |
| STAT1抗体 | Cell Signaling | 14994 | |
| 磷酸化STAT1抗体 | Cell Signaling | 9167 | |
| 免疫共沉淀 | Protein A/G PLUS琼脂糖珠 | Santa Cruz | -- |
| Western blot | Endo H | New England BioLab | -- |
| PNGase F | New England BioLab | -- | |
| 细胞培养与转染 | lipo8000转染试剂 | Beyotime | -- |
| 双荧光素酶报告基因实验 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- |
| 体外泛素化 | E1泛素激活酶 | Abcam | ab139467 |
| E2泛素结合酶UBE2G2 | MedChemExpress | -- | |
| 泛素化缓冲液 | Abcam | ab139467 | |
| 细胞器分离 | 内质网富集试剂盒 | Invent Biotechnologies | -- |
| 高尔基体富集试剂盒 | Invent Biotechnologies | -- | |
| 内体分离和细胞分级试剂盒 | Invent Biotechnologies | -- | |
| ELISA | 小鼠TNFα ELISA试剂盒 | BioLegend | -- |
| 小鼠IL6 ELISA试剂盒 | BioLegend | -- | |
| 小鼠IFNβ ELISA试剂盒 | BioLegend | -- | |
| TUNEL染色 | 一步法TUNEL凋亡检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫荧光 | TLR3抗体 | Proteintech | 17766-1-AP |
| Calnexin抗体 | Proteintech | 10427-2-AP | |
| GM130抗体 | Proteintech | 11308-1-AP | |
| Rab5抗体 | Cell Signaling | C8B1 | |
| Rab7抗体 | Cell Signaling | D95F2 | |
| KDEL抗体 | Novus Biologicals | NBP1-97469 | |
| TGN38抗体 | Santa Cruz | sc-166594 | |
| LAMP1抗体 | Proteintech | 65050-1-Ig | |
| Flag抗体 | Sigma | F1804 | |
| 含DAPI的抗淬灭封片剂 | Beyotime | -- | |
| 体内poly(I:C)挑战 | D-半乳糖胺 | Sigma-Aldrich | G1639 |
| 聚肌胞苷酸 | InvivoGen | tlrl-pic |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| HRD1-TLR3互作验证 | poly(I:C)处理浓度50 μg/ml及各时间点;HEK293T转染后处理时间3 h;RAW264.7处理时间点 阅读提示:Methods细胞培养与药物处理;Fig. 1图注 |
| HRD1缺失或抑制对TLR3信号的影响 | LS-102浓度5 μM、处理24 h;poly(I:C) 50 μg/ml;ELISA刺激后6 h;Hrd1−/−细胞系构建及对照 阅读提示:Methods细胞培养与CRISPR介导基因敲除;Fig. 2图注 |
| Hrd1敲低实验 | siRNA序列及转染条件:文中未明确说明转染试剂、浓度和时间 阅读提示:Methods siRNA小节 |
| 泛素化实验 | LS-102 5 μM处理8 h;Brefeldin A 10 μg/ml处理8 h;体外泛素化37 °C 3 h;E1/E2用量:文中未明确说明 阅读提示:Methods体外泛素化实验;Fig. 5图注 |
| TLR3转运与切割检测 | poly(I:C) 50 μg/ml处理不同时间;细胞器分离试剂盒操作步骤;共聚焦抗体稀释比例;Endo H/PNGase F处理条件按说明书 阅读提示:Methods免疫荧光、细胞器分离、Western blot;Fig. 6图注 |
| TLR3 K813R敲入小鼠体内实验 | poly(I:C) 0.7 mg/kg体重;D-GalN 0.5 g/kg体重;LS-102 10 mg/kg体重/天连续3天;血清2 h、组织4 h;每组n=6-17;小鼠性别和年龄匹配 阅读提示:Methods小鼠、Poly(I:C)挑战、组织HE和TUNEL染色;Fig. 8图注 |
| BMDM分化 | M-CSF 50 ng/ml处理3-5天 阅读提示:Methods生成BMDMs |
| HSV-1感染实验 | secretome刺激18 h;HSV-1 MOI 0.5或1.0;感染24 h 阅读提示:Methods HSV1感染;Fig. 2f图注 |