HRD1介导的泛素化对TLR3转运及其天然免疫信号传导至关重要

Ubiquitination by HRD1 is essential for TLR3 trafficking and its innate immune signaling.

作者信息Lianfeng Zhao, Zinan He, Yao Sun, Mengqi Sun, Zheyi Liu, Zhangsen Zhou, Ling Qi, Yuan Luo, Yewei Ji, Tingbo Liang
PMID41372171
发布时间2025-12-10
DOI10.1038/s41467-025-67219-0

实验完整度

高

包含巨噬细胞、HEK293T、MEF体外模型,CRISPR敲除、敲低、过表达、抑制剂、泛素化、转运定位及TLR3 K813R敲入小鼠体内验证等多层级功能与机制实验

主要模型

RAW 264.7巨噬细胞(WT与Hrd1−/−) 原代腹腔巨噬细胞与BMDM HEK293T-TLR3稳定表达细胞(WT与Hrd1−/−) TLR3K813R敲入小鼠及C57BL/6J小鼠

重点核对

poly(I:C)处理浓度50 μg/ml及所示时间点 LS-102使用浓度5 μM处理24 h(体外)或10 mg/kg体重/天连续3天(体内) Hrd1−/−与WT细胞的CRISPR/Cas9敲除及对照 TLR3 K813R敲入小鼠基因型鉴定及WT同窝对照 体内poly(I:C) 0.7 mg/kg体重联合D-GalN 0.5 g/kg体重注射

摘要

Toll样受体3(TLR3)是一种双链RNA(dsRNA)的天然免疫传感器,合成后从内质网(ER)转运至内溶酶体进行蛋白水解切割和激活。然而,调控TLR3转运的分子机制在很大程度上仍不清楚。在此,我们鉴定出ER驻留E3连接酶HMG-CoA还原酶降解蛋白1(HRD1)——ER相关降解(ERAD)的核心组分——是促进TLR3转运及下游信号传导的关键调控因子。巨噬细胞中HRD1缺失显著削弱了poly(I:C)诱导的TLR3信号传导和炎症反应(体外和体内),这是由TLR3进入内溶酶体的转运及随后的蛋白水解加工显著减少所致。机制上,HRD1介导ER定位的TLR3在赖氨酸813位点的泛素化,这是其被转运必需的内体分选复合物(ESCRT)机器识别和分选所必需的。HRD1的这一功能与其经典的ERAD活性及ER应激传感器肌醇需求酶1α(IRE1α)解耦联。因此,我们的研究鉴定了一种先前未被认识的控制TLR3信号传导的机制,并将HRD1介导的泛素化与天然免疫应答中免疫传感器的转运联系起来。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HRD1是否通过泛素化修饰调控TLR3从内质网向內溶酶体的转运及其天然免疫信号传导。
核心机制
HRD1作为ER驻留E3连接酶,在K813位点介导TLR3的K48/K63连接多泛素化,促进ESCRT组分HRS、TSG101和VPS36对TLR3的识别与分选,从而驱动TLR3转运至內溶酶体进行切割激活;该功能不依赖HRD1的经典ERAD活性、UPR及IRE1α。
主要证据
通过CoIP-MS鉴定HRD1-TLR3相互作用;在Hrd1−/−巨噬细胞、HEK293T-TLR3和MEF中,HRD1缺失或LS-102抑制降低TLR3下游TBK1/IRF3/P65/IκBα磷酸化及炎症因子表达;共聚焦和细胞器分离显示Hrd1−/−细胞中TLR3向內溶酶体转运及切割形式减少;TLR3 K813R突变体泛素化、转运和信号受损;TLR3K813R敲入小鼠体内poly(I:C)诱导的炎症和致死率降低。
研究意义
揭示了HRD1介导的泛素化调控TLR3转运的先前未知机制,将HRD1与天然免疫传感器转运相联系;由于TLR3和STING激动剂正被研究作为疫苗佐剂,HRD1抑制剂可能增强STING介导或减弱TLR3介导的天然免疫应答,对新型疫苗开发具有相关意义。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定HRD1与TLR3的相互作用

筛选并验证HRD1与TLR3的物理互作及结构域需求。

在WT与Hrd1−/− RAW264.7细胞中进行抗HRD1免疫共沉淀-质谱(CoIP-MS);在HEK293T细胞中共转染TLR3-Flag与HRD1-Myc并进行免疫共沉淀;利用截短突变体定位互作结构域。

2

验证HRD1对TLR3信号传导的正向调控

确定HRD1缺失或抑制对TLR3下游信号及炎症反应的影响。

比较WT与Hrd1−/− RAW264.7、HEK293T-TLR3细胞中TBK1、IRF3、P65、IκBα磷酸化;使用siRNA敲低Hrd1或LS-102处理原代巨噬细胞;qPCR检测炎症基因,ELISA检测细胞因子;HSV-1复制实验评估分泌组抗病毒活性。

3

解析HRD1与TLR3信号的正反馈环路

探究TLR3信号是否上调HRD1表达及HRD1如何影响TLR3转录。

qPCR检测Hrd1、Ets1、Tlr3、Irf1、Irf2转录;免疫印迹检测ERK1/2、STAT1磷酸化;使用PD98059、LS-102、Fludarabine及细胞因子回补实验。

4

排除ERAD和UPR通路对HRD1调控TLR3的贡献

检验HRD1对TLR3信号的影响是否依赖其经典ERAD活性或UPR。

检测WT与Hrd1−/−细胞中全长TLR3丰度及CHX追踪降解;使用Eeyarestatin I抑制VCP/ERAD、毒胡萝卜素诱导ER应激、4μ8c抑制IRE1α,检测炎症基因表达。

5

验证HRD1对TLR3的泛素化修饰及链型

确定HRD1是否直接泛素化TLR3及泛素链类型和关键结构域。

体内外泛素化实验;使用HRD1 C2A、ΔRING、ΔTM突变体;泛素K48R、K63R及K48-only、K63-only突变体;Brefeldin A阻断ER到高尔基转运;检测VCP、SEL1L、BIP、OS9与TLR3的相互作用。

6

验证HRD1促进TLR3向內溶酶体转运及切割

确定HRD1缺失是否阻断TLR3从ER经高尔基向內溶酶体的转运和切割。

共聚焦显微镜检测TLR3与KDEL、TGN38、LAMP1、Calnexin、GM130、Rab5、Rab7共定位;Endo H/PNGase F糖苷酶处理;分离ER、高尔基和内体组分进行免疫印迹;检测ESCRT组分HRS、TSG101、VPS36与TLR3的结合。

7

定位HRD1介导的TLR3泛素化关键位点K813

确定HRD1泛素化TLR3的具体赖氨酸位点及其功能重要性。

构建TLR3胞质域11个K→R突变体筛选泛素化位点;在MEF中稳定表达WT或K813R TLR3-Flag,检测切割、糖苷酶敏感性、细胞器分布及下游信号。

8

体内验证HRD1-TLR3 K813泛素化对炎症的作用

评估HRD1抑制及TLR3 K813R突变对poly(I:C)诱导小鼠炎症和致死率的影响。

LS-102预处理C57BL/6J小鼠后注射poly(I:C)±D-GalN,检测血清细胞因子、存活率、肺HE染色和肝TUNEL;构建TLR3K813R敲入小鼠,分离BMDM检测信号,并进行体内poly(I:C)挑战。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高分子量聚肌胞苷酸InvivoGentlrl-pic
LS-102MedChemExpress--
Eeyarestatin IMedChemExpress--
4μ8cMedChemExpress--
毒胡萝卜素EMD Calbiochem--
MG132MedChemExpress--
布雷菲德菌素ASellck--
DMEM培养基Cytiva--
胎牛血清Braserum--
巨噬细胞集落刺激因子PeproTech--
Flag抗体SigmaF1804
HA抗体Proteintech51064-2-AP
HRD1抗体Proteintech13473-1-AP
SEL1L抗体AbclonalA12073
IRE1α抗体Cell Signaling3294
PERK抗体Proteintech20582-1-AP
Eif2α抗体Cell Signaling5324
磷酸化Eif2α抗体Cell Signaling5324
β-微管蛋白抗体Proteintech10068-1-AP
HSP90抗体Proteintech13171-1-AP
Myc抗体ABclonalAE010
V5抗体ABclonalAE017
磷酸化IκBα抗体ABclonalAP0707
HRS抗体ABclonalA1790
TSG101抗体ABclonalA1692
VPS36抗体ABclonalA15157
TLR3抗体NOVUSNBP2-24875
磷酸化TBK1 (Ser172)抗体Cell SignalingD52C2
TBK1抗体Cell SignalingE9H5S
磷酸化IRF3 (Ser396)抗体Cell SignalingD601M
IRF3抗体Cell SignalingD83B9
IκBα抗体Cell Signaling9242
β-肌动蛋白抗体Cell Signaling13E5
p65抗体Cell SignalingD14E12
磷酸化p65抗体Cell Signaling93H1
K48连接特异性泛素抗体Cell SignalingD9D5
K63连接特异性泛素抗体Cell SignalingD7A11
GOLPH2抗体ABclonalA26409PM
EEA1抗体ABclonalA5057
泛素抗体Santa CruzP4D1
TGN38抗体Santa Cruzsc-166594
小鼠IgGSanta Cruzsc-2025
兔IgGAbclonalAC005
ERK1/2抗体Cell Signaling4695
磷酸化ERK1/2抗体Cell Signaling9101
STAT1抗体Cell Signaling14994
磷酸化STAT1抗体Cell Signaling9167
Protein A/G PLUS琼脂糖珠Santa Cruz--
Endo HNew England BioLab--
PNGase FNew England BioLab--
lipo8000转染试剂Beyotime--
双荧光素酶报告基因检测系统Promega--
E1泛素激活酶Abcamab139467
E2泛素结合酶UBE2G2MedChemExpress--
泛素化缓冲液Abcamab139467
内质网富集试剂盒Invent Biotechnologies--
高尔基体富集试剂盒Invent Biotechnologies--
内体分离和细胞分级试剂盒Invent Biotechnologies--
小鼠TNFα ELISA试剂盒BioLegend--
小鼠IL6 ELISA试剂盒BioLegend--
小鼠IFNβ ELISA试剂盒BioLegend--
一步法TUNEL凋亡检测试剂盒Beyotime--
TLR3抗体Proteintech17766-1-AP
Calnexin抗体Proteintech10427-2-AP
GM130抗体Proteintech11308-1-AP
Rab5抗体Cell SignalingC8B1
Rab7抗体Cell SignalingD95F2
KDEL抗体Novus BiologicalsNBP1-97469
TGN38抗体Santa Cruzsc-166594
LAMP1抗体Proteintech65050-1-Ig
Flag抗体SigmaF1804
含DAPI的抗淬灭封片剂Beyotime--
D-半乳糖胺Sigma-AldrichG1639
聚肌胞苷酸InvivoGentlrl-pic

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
HRD1-TLR3互作验证
poly(I:C)处理浓度50 μg/ml及各时间点;HEK293T转染后处理时间3 h;RAW264.7处理时间点
阅读提示:Methods细胞培养与药物处理;Fig. 1图注
HRD1缺失或抑制对TLR3信号的影响
LS-102浓度5 μM、处理24 h;poly(I:C) 50 μg/ml;ELISA刺激后6 h;Hrd1−/−细胞系构建及对照
阅读提示:Methods细胞培养与CRISPR介导基因敲除;Fig. 2图注
Hrd1敲低实验
siRNA序列及转染条件:文中未明确说明转染试剂、浓度和时间
阅读提示:Methods siRNA小节
泛素化实验
LS-102 5 μM处理8 h;Brefeldin A 10 μg/ml处理8 h;体外泛素化37 °C 3 h;E1/E2用量:文中未明确说明
阅读提示:Methods体外泛素化实验;Fig. 5图注
TLR3转运与切割检测
poly(I:C) 50 μg/ml处理不同时间;细胞器分离试剂盒操作步骤;共聚焦抗体稀释比例;Endo H/PNGase F处理条件按说明书
阅读提示:Methods免疫荧光、细胞器分离、Western blot;Fig. 6图注
TLR3 K813R敲入小鼠体内实验
poly(I:C) 0.7 mg/kg体重;D-GalN 0.5 g/kg体重;LS-102 10 mg/kg体重/天连续3天;血清2 h、组织4 h;每组n=6-17;小鼠性别和年龄匹配
阅读提示:Methods小鼠、Poly(I:C)挑战、组织HE和TUNEL染色;Fig. 8图注
BMDM分化
M-CSF 50 ng/ml处理3-5天
阅读提示:Methods生成BMDMs
HSV-1感染实验
secretome刺激18 h;HSV-1 MOI 0.5或1.0;感染24 h
阅读提示:Methods HSV1感染;Fig. 2f图注