建立铜绿假单胞菌感染小鼠模型并评估EGFR抑制对生存的影响
验证EGFR信号在铜绿假单胞菌感染中是否具有保护作用,并明确其与3oc12的关系。
气管内注射WT PAO1、ΔlasI或ΔlasR+lasI菌株,联合或不联合EGFR抑制剂Erlotinib,观察小鼠生存率。
A Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing inducer controls lung permeability in establishing chronic infection via EGFR.
包含体外细胞模型、基因编辑细胞、多种基因敲除/敲入小鼠模型及分子动力学模拟等多层级证据,并进行了功能与机制验证。
人肺上皮细胞系A549 HEK293细胞(EGFR-Halo敲入) MCF7细胞(转染EGFR-mEGFP) C57BL/6J小鼠及AT2细胞特异性stat3敲除小鼠
铜绿假单胞菌菌株:WT PAO1、ΔlasI(3oc12合成缺陷)、ΔlasR+lasI(3oc12过表达) 3oc12处理浓度与时间:体外10 μM(部分实验20 min或5 min) EGFR抑制剂:Erlotinib(IC50 20 nM)、PD153035(IC50 29 pM)、AG1478(IC50 3 nM) 小鼠感染模型:6周龄雄性C57BL/6J,气管内注射2×10^7 CFU/50 μl,感染后24小时检测 AT2细胞特异性stat3敲除:Sftpc-ert2cre-stat3f/f小鼠,他莫昔芬75 mg/kg体重腹腔注射5天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证EGFR信号在铜绿假单胞菌感染中是否具有保护作用,并明确其与3oc12的关系。
气管内注射WT PAO1、ΔlasI或ΔlasR+lasI菌株,联合或不联合EGFR抑制剂Erlotinib,观察小鼠生存率。
明确3oc12是否直接激活肺上皮细胞EGFR并改变其膜扩散与二聚化状态。
A549细胞经3oc12或细菌上清处理后检测EGFR Y1068磷酸化;HEK293 EGFR-Halo敲入细胞结合单分子追踪分析扩散系数;MCF7细胞转染EGFR-mEGFP后通过单分子光漂白步数计数分析二聚体。
从热力学和动力学角度阐明脂筏破坏如何促进EGFR二聚化。
构建Lo相(DSM/CHOL与DSPC)和Ld相(DOPC)膜系统,模拟EGFR跨膜域、近膜域及胞外域的二聚化行为;计算GxxxG样基序距离、相互作用能、熵变和扩散系数。
确认EGFR信号在感染中限制细菌全身播散并维持肺屏障功能。
PAO1感染小鼠给予Erlotinib,检测BALF细胞计数、肺组织CFU、H&E染色、Ki67染色、Micro-CT、BALF蛋白浓度、肺干湿比、花生四烯酸浓度、血清IL-6及肝脾CFU。
明确3oc12-EGFR-STAT3轴对紧密连接蛋白表达和上皮通透性的调控。
A549细胞单层经3oc12处理,检测FITC-右旋糖酐通透性、TEER、紧密连接蛋白mRNA及蛋白表达;使用Erlotinib或STAT3敲除细胞验证通路依赖性。
在体内确认STAT3在3oc12-EGFR介导的肺屏障保护中必不可少。
Sftpc-ert2cre-stat3f/f小鼠经他莫昔芬诱导敲除AT2细胞stat3,感染PAO1后检测Micro-CT、BALF蛋白和IL-6、肝脾CFU及血清IL-6;并用ΔlasI和ΔlasR+lasI菌株感染验证。
检验3oc12降低肺通透性的作用是否可推广至急性肺损伤模型。
建立HCl或LPS诱导的急性肺损伤小鼠模型,给予3oc12治疗,检测BALF细胞总数、中性粒细胞数、蛋白及炎症因子水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| EGFR抑制 | 厄洛替尼 | Selleck | S1023 |
| PD153035 | Selleck | S1079 | |
| AG1478 | Selleck | S2728 | |
| Western blot | EGFR抗体 | Abbkin | ABP0084 |
| claudin-1抗体 | Abbkin | ABP0072 | |
| claudin-2抗体 | Abbkin | ABP56953 | |
| 磷酸化EGFR Tyr1068抗体 | CST | 3777 | |
| STAT3抗体 | CST | 12640 | |
| 磷酸化STAT3 Y705抗体 | CST | 9145 | |
| β-肌动蛋白抗体 | CST | 4970 | |
| 流式细胞术 | Ly-6G APC抗体 | BioLegend | 127614 |
| Ki67-PE抗体 | BioLegend | 151210 | |
| CD24-PE抗体 | BioLegend | 119310 | |
| EpCAM-APC抗体 | Ebioscience | 17-5791-82 | |
| CD31-PE抗体 | Ebioscience | 12-0311-81 | |
| podoplanin-PE抗体 | Ebioscience | 12-5381-80 | |
| CD45-PE抗体 | Ebioscience | 12-0451-81 | |
| Sca1-PE抗体 | Ebioscience | 12-5981-81 | |
| Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | Ebioscience | 00-5523-00 | |
| 细胞核染色 | DAPI | Beyotime Biotechnology | C1002 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0012 |
| RT-qPCR | Hieff® qPCR SYBR Green预混液 | Yeasen | 11201ES03 |
| 单分子成像 | JFX646-HaloTag配体 | -- | -- |
| 脂筏标记 | Alexa555标记的霍乱毒素B亚单位 | Invitrogen | -- |
| 细胞骨架染色 | 鬼笔环肽-Atto 647 N | Sigma | 65906 |
| 细胞骨架破坏对照 | latrunculin B | Abcam | ab144291 |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| TEER测量 | Millicell-ERS电阻测量仪 | -- | -- |
| 荧光检测 | Envision-I酶标仪 | -- | -- |
| Micro-CT扫描 | Quantum GX微型CT | -- | -- |
| Western blot成像 | ChemiDoc MP成像系统 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠感染模型 | 小鼠品系、周龄、性别、体重;细菌菌株及CFU数;接种体积和途径;感染后检测时间点 阅读提示:Methods中“P. aeruginosa lung infection”小节及Fig. 1图注 |
| 3oc12体外处理 | 3oc12浓度(10 μM)、处理时间(5-20分钟)、溶剂对照(DMSO) 阅读提示:Methods中相关小节及Fig. 2图注 |
| EGFR抑制剂处理 | Erlotinib、PD153035、AG1478的给药剂量、途径和时机(文中未明确说明) 阅读提示:Results中“EGFR is activated in the presence of 3oc12”段落及Fig. 1图注 |
| TEER和通透性实验 | A549细胞接种密度(2×10^5/孔)、培养天数(4天)、FITC-右旋糖酐浓度(1 mg/ml)、检测时间(2小时) 阅读提示:Methods中“Measurement of transepithelial electrical resistance”和“Permeability of cell monolayer”小节 |
| AT2细胞特异性stat3敲除 | 他莫昔芬剂量(75 mg/kg)、注射天数(5天)、诱导后等待时间(14天)、小鼠周龄(12周) 阅读提示:Methods中“Lung epithelia specific STAT3 knock-out”小节及Fig. 8图注 |
| 分子动力学模拟 | 力场(CHARMM36/Martini 2.2)、温度(310 K)、压力(1 bar)、模拟时长(200 ns/4 μs)、膜脂组成 阅读提示:Methods中“Molecular dynamics simulation”小节 |
| 急性肺损伤模型 | HCl浓度(0.4 N)和剂量(2 μl/g)、LPS浓度(10 mg/ml)、3oc12给药剂量和途径(文中未明确说明) 阅读提示:Methods中“HCL or LPS -induced acute lung injury”小节及Fig. 9图注 |