细胞外线粒体摄取与递送的定量细胞特征分析

Quantitative cellular characterization of extracellular mitochondria uptake and delivery.

作者信息Zahra Al Amir Dache, Maud Chevé, Julia Dancourt, Grégory Lavieu
PMID41073412
发布时间2025-10-10
DOI10.1038/s41467-025-64147-x

实验完整度

高

包含体外细胞模型、条件培养基分离线粒体、定量摄取、蛋白保护、分裂NLuc互补及共聚焦成像多层级功能与机制验证

主要模型

HeLa细胞 A431细胞 SKOV3细胞 瞬时或稳定表达NLuc-HA-OMP25/COX8a-NLuc-HA的供体细胞

重点核对

HeLa受体细胞与F4、F4′、F16组分孵育24小时,输入NLuc活性设为100%,检测摄取比例 F4/F4′摄取动力学和剂量反应,使用50,000 NLuc活性单位及不同时间点 4°C与37°C孵育4小时的温度阻断实验 蛋白保护实验使用0.2 mg/mL Proteinase K和/或0.1% β-OG处理3小时 分裂NLuc互补实验使用HiBiT-OMP25、HiBiT-COX8与LgBiT-OMP25、LgBiT-COX8、胞质LgBiT组合

摘要

线粒体是负责能量产生的必需细胞内细胞器。过去二十年已有非常规的细胞间线粒体转移报道,但转运中间体的性质、过程效率以及受体细胞摄取和可能整合的细胞机制仍不清楚。鉴于线粒体移植的潜在治疗应用,这一知识空白尤为重要。本研究使用可定量的细胞生物学和生化方法评估细胞间线粒体交换。我们的发现提示,少量游离线粒体可释放到条件培养基中,随后被受体细胞摄取,主要通过液相摄取,尽管替代或并行的内吞途径也可能参与。值得注意的是,我们发现一部分内化线粒体逃逸内体区室,到达胞质,并可能整合到宿主细胞已有的线粒体网络中。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
细胞外游离线粒体是否能被受体细胞摄取,其转运中间体性质、摄取机制及细胞内命运如何?
核心机制
条件培养基中的游离线粒体主要通过液相摄取进入受体细胞,经内体-溶酶体途径运输,部分线粒体引起内体膜破裂逃逸至胞质,并可能通过融合整合入受体细胞线粒体网络。
主要证据
SEC分离显示F4含游离线粒体;蛋白保护实验显示OMP25对蛋白酶敏感而COX8a抗性;定量摄取实验显示F4和F4′约1-2%被摄取;4°C阻断摄取;共聚焦显示与EEA1、LAMP1和dextran共定位;Galectin-3-GFP显示约9%内化线粒体共定位;分裂NLuc互补仅在同型组合中检测到信号。
研究意义
为细胞间线粒体转移提供机制解释,提示内体逃逸是线粒体递送的关键细胞机制,可能有助于提高线粒体移植效率并理解生理和病理背景下的线粒体转移。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建并验证线粒体报告探针

建立可高灵敏度追踪线粒体的工具

构建NLuc-HA-OMP25和COX8a-NLuc-HA质粒,转染HeLa细胞,通过免疫荧光和免疫印迹验证定位与完整性

2

分离和表征条件培养基中的转运中间体

确定条件培养基中线粒体的存在形式和性质

收集条件培养基,离心去除细胞碎片,浓缩后用SEC分离,检测NLuc活性和蛋白浓度,NTA分析粒径,免疫印迹检测EV、ER和线粒体标志物,蛋白保护实验区分游离线粒体与EV包裹线粒体

3

定量受体细胞对细胞外线粒体的摄取

评估摄取效率和动力学,并探索摄取机制

将等量NLuc活性的F4、F16、F4′加入HeLa受体细胞,孵育24小时检测NLuc活性;进行动力学、剂量反应和4°C温度阻断实验;在HeLa、A431、SKOV3细胞中验证

4

追踪内化线粒体的细胞内定位

确定线粒体进入细胞后的运输途径

用共聚焦显微镜观察内化线粒体与早期内体标志物EEA1、溶酶体标志物LAMP1和液相摄取标志物dextran的共定位

5

检测线粒体胞质递送和内体逃逸

验证线粒体是否逃逸内体到达胞质并整合入线粒体网络

使用HiBiT/LgBiT分裂NLuc互补实验检测供体与受体线粒体蛋白互补;使用Galectin-3-GFP报告内体膜破裂,LLOMe作为阳性对照

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
遗传霉素Gibco--
Amicon Ultra-15 100 kDa超滤管MilliporeUFC9100
qEVoriginal/70 nm Gen 2尺寸排阻柱Izon--
培养细胞线粒体分离试剂盒Abcamab110170
Micro BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific--
4X Laemmli缓冲液Bio-Rad--
PVDF膜(0.2 μm)Bio-Rad--
Trans-Blot Turbo转膜系统Bio-Rad--
Precision Plus蛋白标准品Bio-Rad--
抗肌动蛋白抗体Sigma-AldrichMAB1501
抗HA抗体Cell SignalingC29F4
抗MFN2抗体Abcam56889
抗PDHA1抗体Abcam110334
抗CD63抗体BD Bioscience556,019
抗CD9抗体Milliporecbl162
抗钙网蛋白抗体Abcam22683
HRP偶联二抗Jackson ImmunoResearch115-035-003
Clarity Western ECL底物Bio-Rad--
ImageQuant LAS 400成像仪GE Healthcare Life Sciences--
蛋白酶KAmbionAM2542
Nano-Glo活细胞检测试剂PromegaN2012
iD3 SpectraMax酶标仪Molecular Devices--
Triton X-100Sigma-Aldrich--
Nano-Glo试剂PromegaN1120
白色96孔板ThermoFischer--
白底透明底96孔板Thermofisher--
HBSS缓冲液ThermoFisher--
重组LgBiTPromega--
红色葡聚糖ThermoFisher--
LLOMESigma-AldrichL7393-500MG
抗EEA1抗体Cell Signaling2411S
抗LAMP1抗体Cell Signaling15665S
抗HA抗体Cell SignalingC29F4
AlexaFluor 488或546二抗ThermoFisher--
ProLong Diamond抗淬灭封片剂Invitrogen--
LSM 880共聚焦显微镜ZEISS--
ZetaView x20纳米颗粒追踪分析仪Particle Metrix--
质粒小量提取试剂盒Macherey Nagel--
Phusion Plus DNA聚合酶试剂盒ThermoFisherF630S
1Kb plus DNA分子量标准ThermoFisher--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
转运中间体分离
条件培养基收集时间、离心速度与时间、浓缩柱型号、SEC柱型号及洗脱体积
阅读提示:Methods中Transport intermediate isolation小节
蛋白保护实验
Proteinase K浓度、β-OG或Triton X-100浓度、处理温度与时间
阅读提示:Methods中Protease Protection Assay小节及图2E图注
线粒体摄取定量
受体细胞类型与融合度、输入NLuc活性单位、孵育温度与时间、洗涤次数
阅读提示:Methods中Mitochondrial uptake and delivery assay小节及图3A-D图注
胞质递送分裂NLuc互补实验
供体与受体细胞HiBiT/LgBiT组合、转染时间、孵育时间、NLuc检测试剂
阅读提示:Methods中Mitochondrial cytosolic delivery assay小节及图5C、图6B图注
共聚焦共定位分析
线粒体孵育时间、dextran浓度、LLOMe浓度与处理时间、抗体稀释比例、ROI分析标准
阅读提示:Methods中Confocal microscopy小节及图4、图7图注