中年小鼠肥胖易感性及WAT功能改变验证
验证中年小鼠在高脂饮食下更易肥胖,并确定WAT是主要功能改变器官。
3月龄和12月龄小鼠分别给予标准饮食或HFD 4周,检测体重、GTT、ITT、能量代谢、脂肪组织巨噬细胞亚群和炎症因子;分析公共RNA-seq数据及人/鼠WAT、肝脏、骨骼肌的代谢标志物。
Adipose progenitor cell-derived extracellular vesicles suppress macrophage M1 program to alleviate midlife obesity.
包含人/鼠组织snRNA-seq、体外BMDM/ATM功能验证、机制通路验证及中年小鼠体内干预实验
3月龄与12月龄C57BL/6小鼠 人白色脂肪组织样本 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) 脂肪组织巨噬细胞(ATMs)
小鼠年龄:年轻3月龄,中年12月龄 HFD喂养4周,EVs每周静脉注射30 μg miR-145@tar-lip静脉注射1 mg miRNA/kg体重,每3天一次 LPS 100 ng/mL诱导M1极化,EVs 50 ng/mL预处理24 h BMDMs中miR-145 mimics 50 nM,inhibitor 100 nM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证中年小鼠在高脂饮食下更易肥胖,并确定WAT是主要功能改变器官。
3月龄和12月龄小鼠分别给予标准饮食或HFD 4周,检测体重、GTT、ITT、能量代谢、脂肪组织巨噬细胞亚群和炎症因子;分析公共RNA-seq数据及人/鼠WAT、肝脏、骨骼肌的代谢标志物。
确定中年APCs的衰老表型及其来源EVs对巨噬细胞M1程序的调控能力。
分离人/鼠APCs,检测衰老标志物和SASP;收集APCs培养上清提取EVs,鉴定EVs形态、粒径和标志物;用PKH26/DiI标记EVs检测巨噬细胞摄取;用yEVs或mEVs预处理BMDMs后LPS刺激,检测M1标志物。
验证yEVs与mEVs对中年小鼠HFD诱导肥胖和WAT炎症的体内效果差异。
12月龄小鼠HFD 4周,每周静脉注射PBS、yEVs或mEVs(30 μg),检测体重、能量代谢、GTT/ITT、WAT质量、CLS、巨噬细胞亚群、炎症因子和衰老标志物。
筛选yEVs和mEVs差异miRNA,验证miR-145对巨噬细胞M1极化的作用及yEVs效应依赖性。
对yEVs和mEVs进行miRNA测序,RT-qPCR验证候选miRNA;在BMDMs中转染miR-145 mimics或inhibitor,LPS刺激后检测M1标志物和炎症因子;用miR-145 inhibitor联合yEVs进行rescue实验。
验证miR-145通过靶向SELL抑制NF-κB信号通路,进而抑制巨噬细胞M1程序。
对miR-145 mimics处理的M1巨噬细胞进行bulk RNA-seq,结合TargetScan预测靶基因;荧光素酶报告基因验证miR-145与Sell 3’UTR结合;Sell siRNA和腺病毒过表达进行功能rescue;Western blot检测NF-κB通路。
构建靶向ATMs的阳离子脂质体递送miR-145 mimics,并评估其体内靶向性和治疗效果。
合成CKGGRAKDC肽修饰的阳离子脂质体装载miR-145 mimics,表征粒径、电位、包封率;DiR标记后IVIS追踪体内分布;12月龄小鼠HFD 4周,每3天静脉注射PBS、NC miR@tar-lip、miR-145@lip或miR-145@tar-lip,检测肥胖表型和WAT炎症。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | eBioscience | -- | |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher | L3000015 | |
| miRNA转染 | miR-145模拟物 | Ribobio | -- |
| miR-145抑制剂 | Ribobio | -- | |
| siRNA转染 | Sell siRNA | Ribobio | -- |
| 腺病毒转导 | Sell腺病毒 | DesignGene Biotechnology | -- |
| NF-κB激活 | CU-T12-9 | Selleck | S2979 |
| 流式细胞术 | PE抗小鼠F4/80抗体 | Biolegend | 123110 |
| FITC抗小鼠CD11b抗体 | Biolegend | 101206 | |
| APC抗小鼠CD11c抗体 | Biolegend | 117310 | |
| PE/Cy7抗小鼠CD206抗体 | Biolegend | 141720 | |
| APC抗小鼠CD31抗体 | Biolegend | 102410 | |
| APC抗小鼠CD45抗体 | Biolegend | 103112 | |
| Western blot | 磷酸化AKT Ser473抗体 | CST | 4060s |
| AKT抗体 | CST | 4685s | |
| iNOS抗体 | CST | 13120S | |
| CD62L/L-选择素兔多克隆抗体 | Abclonal | A1622 | |
| TSG101抗体 | Abcam | ab125011 | |
| CD63抗体 | Abcam | ab134045 | |
| 钙联蛋白抗体 | Abcam | ab22595 | |
| 磷酸化NF-κB p65 (Ser536)抗体 | CST | 3033s | |
| NF-κB p65抗体 | CST | 8242s | |
| 磷酸化IκBα抗体 | CST | 2859 | |
| IκBα抗体 | CST | 9242 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Takara | 9109 |
| cDNA合成试剂盒 | Vazyme | R223-01 | |
| SYBR qPCR预混液 | Yeasen | 11203 | |
| miRNA RT-qPCR | Bulge-Loop miRNA qRT-PCR起始试剂盒 | Ribobio | C10211-1 |
| ELISA | TNF-α ELISA试剂盒 | Biolegend | 430904 |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Biolegend | 431304 | |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Biolegend | 432604 | |
| EVs标记 | DiI荧光染料 | Beyotime | C1036 |
| DiO荧光染料 | Beyotime | C1038 | |
| DiR荧光染料 | MedChemExpress | 100068-60-8 | |
| PKH26染色液 | MedChemExpress | 154214-55-8 | |
| β-Gal染色 | 细胞衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒 | Beyotime | C0602 |
| 免疫荧光 | F4/80抗体 | Santa Cruz Biotechnology | SC-377009 |
| Perplin2抗体 | Abclonal | A6276 | |
| 白蛋白抗体 | Abclonal | A1363 | |
| 层粘连蛋白受体抗体 | Abclonal | A5968 | |
| Alexa Fluor 488抗小鼠二抗 | Jackson ImmunoResearch | 115-545-003 | |
| Alexa Fluor 594抗兔二抗 | Jackson ImmunoResearch | 111-585-003 | |
| Alexa Fluor 488抗兔二抗 | Jackson ImmunoResearch | 111-545-003 | |
| DAPI | Servicebio | G1012 | |
| 组织消化 | I型胶原酶 | -- | -- |
| APCs分离 | CD45磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-045-801 |
| CD31磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-091-935 | |
| CD34磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-046-702 | |
| 小鼠APCs分离 | 非脂肪组织祖细胞磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-106-639 |
| 脂肪组织祖细胞磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-106-639 | |
| ATMs分离 | CD11b磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-049-601 |
| 脂质体构建 | C12-200脂质 | -- | -- |
| 二硬脂酰磷脂酰胆碱 | -- | -- | |
| 甲氧基聚乙二醇-二肉豆蔻酰甘油 | -- | -- | |
| 马来酰亚胺聚乙二醇-二肉豆蔻酰甘油 | -- | -- | |
| 活体成像 | IVIS Lumina XR活体成像系统 | Caliper | -- |
| 代谢笼分析 | 综合实验室动物监测系统 | Columbus Instruments | -- |
| 组织学分析 | OLYMPUS正置显微镜BX53 | Olympus Corporation | -- |
| snRNA-seq | gentle MACS组织解离仪 | Miltenyi Biotec | -- |
| NucBlue细胞核染料 | ThermoFisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 中年小鼠HFD模型与EVs干预 | 小鼠年龄(12月龄)、性别(雄性/雌性)、HFD配方(60% kcal fat,D12492)、喂养时长(4周)、EVs剂量(30 μg/只/周)及给药途径(静脉注射) 阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 3a图注 |
| BMDMs极化与EVs/miR-145处理 | BMDMs来源(6周C57BL/6小鼠骨髓)、M-CSF浓度(30 ng/mL及20 ng/mL)、LPS浓度(100 ng/mL)、EVs浓度(50 ng/mL)及处理时间(24 h)、miR-145 mimics(50 nM)/inhibitor(100 nM)转染条件 阅读提示:Methods中Cell culture and treatment及miR-145 overexpression or inhibition小节 |
| miR-145@tar-lip体内治疗 | 脂质体剂量(1 mg miRNA/kg体重)、给药频率(每3天一次)、给药途径(静脉注射)、小鼠年龄(12月龄)、HFD时长(4周)及每组样本量(n=7) 阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 7a图注 |
| SELL–NF-κB机制验证 | Sell siRNA浓度(100 nM)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、腺病毒过表达滴度(10^7 particles/well)、NF-κB激动剂CU-T12-9浓度(10 μM)及处理时间(12 h)、荧光素酶报告基因转染质粒量及检测时间(48 h) 阅读提示:Methods中Transfection of siRNA、Adenoviral transduction、Luciferase reporter assays小节 |
| ATMs分离与巨噬细胞清除实验 | CD11b磁珠品牌及货号(Miltenyi Biotec, #130-049-601)、氯膦酸盐脂质体剂量(110 mg/kg)及给药频率(每周两次,腹腔注射) 阅读提示:Methods中Adipose tissue-derived macrophages isolation及Mice小节 |