星形胶质细胞Neuroligin 3通过腺苷信号调控雄性小鼠的社会记忆与突触可塑性

Astrocytic neuroligin 3 regulates social memory and synaptic plasticity through adenosine signaling in male mice.

作者信息Rui Dang, An Liu, Yu Zhou, Xingcan Li, Miao Wu, Kun Cao, Yanghong Meng, Haiwang Zhang, Guangming Gan, Wei Xie, Zhengping Jia
PMID39366972
发布时间2024-10-05
DOI10.1038/s41467-024-52974-3

实验完整度

高

包含体外培养星形胶质细胞、条件性敲除小鼠、切片电生理、Ca2+成像、光纤记录及行为学多层级验证

主要模型

成年雄性NLG3 f/Y;hGFAP-CreERT2条件性敲除小鼠 成年雄性NLG3 f/Y小鼠海马AAV病毒注射模型 原代培养小鼠皮层星形胶质细胞 急性海马脑片

重点核对

星形胶质细胞NLG3敲除效率:他莫昔芬每日1 mg腹腔注射连续7天,7周后检测NLG3蛋白;AAV注射后8周检测 行为学检测使用3–5月龄雄性同窝小鼠,三箱社会测试每阶段10分钟,社会记忆指数=(S2时间/(S1+S2时间))×100−50 CNO 0.5 mg/kg或CGS 21680 0.5 mg/kg腹腔注射于行为测试前20分钟 TFB-TBOA 50 nM、1 μl或SCH 58261 100 nM、1 μl于行为测试前30分钟双侧注射腹侧海马 电生理LTP诱导:四组100 Hz、每组1秒、组间隔10秒,药物于HFS前30分钟加入并持续灌流

摘要

社会记忆损伤是许多脑部疾病的关键症状,但其潜在机制仍不清楚。Neuroligins(NLGs)是一类对突触发育和功能至关重要的细胞黏附分子家族,其功能障碍与神经发育和神经精神疾病(包括自闭症和精神分裂症)相关。尽管NLGs在神经元中被广泛研究,但它们在胶质细胞中的作用却知之甚少。本研究表明,在成年雄性小鼠腹侧海马中星形胶质细胞特异性敲除NLG3会损害社会记忆、减弱星形胶质细胞Ca2+信号、增强EAAT2表达并阻止长时程增强,而这些损伤可通过增加星形胶质细胞活性、降低EAAT2功能或增强腺苷/A2a受体信号来挽救。本研究揭示了NLG3在星形胶质细胞功能、谷氨酸稳态和社会记忆中的重要作用,并确定了谷氨酸转运体和腺苷信号通路作为治疗脑部疾病的潜在治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
星形胶质细胞中的NLG3是否以及如何调控成年小鼠的社会记忆与突触可塑性。
核心机制
星形胶质细胞NLG3通过抑制mTOR依赖的EAAT2翻译上调,维持胞外谷氨酸水平,促进星形胶质细胞活动依赖性ATP/腺苷释放并激活神经元A2a受体,从而支持LTP和社会记忆。
主要证据
条件性敲除小鼠显示社会记忆和HFS诱发的星形胶质细胞Ca2+信号受损、EAAT2蛋白升高、LTP缺失;TBOA、谷氨酸、腺苷、ATP及A2a激动剂CGS 21680可挽救LTP或记忆,A2a拮抗剂/神经元A2a敲除则阻断;微透析和GRABAdo光纤记录显示社会刺激诱导的腺苷升高在KO小鼠中缺失。
研究意义
揭示NLG3在星形胶质细胞功能、谷氨酸稳态和社会记忆中的重要作用,并将谷氨酸转运体和腺苷信号通路识别为治疗脑部疾病相关社会缺陷的潜在策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

星形胶质细胞NLG3条件性敲除及验证

验证成年海马星形胶质细胞NLG3敲除是否特异且有效。

将NLG3 f/Y与hGFAP-CreERT2小鼠杂交,出生后2月开始他莫昔芬诱导;并通过AAV GFAP-EGFP-T2A-Cre局部注射实现海马区域敲除,用Western blot和免疫染色验证敲除效率与细胞特异性。

2

社会记忆与一般行为表型检测

确定星形胶质细胞NLG3敲除是否选择性损害社会识别记忆。

进行三箱社会测试、旷场、高架十字迷宫、新物体识别、埋食实验、嗅觉习惯化/去习惯化及情境恐惧记忆测试,比较GFAP-NLG3 KO与WT小鼠。

3

腹侧与背侧海马区域特异性及NLG3回补

确定腹侧海马星形胶质细胞NLG3的必要性并验证表型由NLG3缺失引起。

分别向腹侧或背侧海马注射GFAP-EGFP-T2A-Cre,或在KO小鼠腹侧海马共注射Cre依赖NLG3-HA病毒,8周后进行三箱测试。

4

星形胶质细胞活动与Ca2+信号检测

检验NLG3缺失是否影响星形胶质细胞活动依赖性激活。

在腹侧海马表达GfaABC1D-GCaMP6f,制备急性脑片进行HFS诱导的Ca2+成像,并在自由活动小鼠中进行光纤记录社会嗅探诱发的Ca2+信号。

5

化学遗传学激活星形胶质细胞

检验增强星形胶质细胞活动能否挽救社会记忆缺陷。

向KO小鼠腹侧海马注射EF1α-DIO-hM3D(Gq)-mCherry或mCherry对照病毒,CNO激活后进行三箱测试和脑片Ca2+成像。

6

EAAT2表达调控与谷氨酸稳态检测

探究NLG3缺失如何改变EAAT2表达及胞外谷氨酸动态。

用Western blot、免疫染色和表面染色检测EAAT1/2/3及受体表达;RT-qPCR检测mRNA;mTOR抑制剂处理脑片检测EAAT2蛋白;用iGluSnFR光纤记录社会嗅探诱发的谷氨酸信号。

7

EAAT2功能干预与突触可塑性及记忆验证

检验EAAT2过度表达是否为星形胶质细胞活动、LTP和社会记忆缺陷的原因。

脑片灌流谷氨酸或TFB-TBOA检测星形胶质细胞Ca2+和LTP;腹侧海马局部注射TFB-TBOA或EAAT2激动剂GT949后检测社会记忆。

8

腺苷信号通路与神经元A2a受体验证

确定NLG3缺失通过腺苷-A2a信号影响LTP和社会记忆。

脑片灌流腺苷、D-serine、ATP、ATPγS、bzATP、CGS 21680、CPA、SCH 58261后记录LTP;微透析和GRABAdo光纤记录检测胞外腺苷;全身或局部给药及神经元A2a条件性敲除后检测社会记忆和LTP。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他莫昔芬SigmaT5648
氯氮平N-氧化物SigmaC0832
CGS 21680盐酸盐SellectS2153
SCH 58261SellectS8104
TFB-TBOAMedChemExpressHY-107521
抗EAAT2抗体CST20848
抗GFAP抗体CST3670
抗S100β抗体Proteintech15146-1-AP
抗NeuN抗体Proteintech26975-1-AP
抗DCX抗体CST4604
抗NLG3抗体Sigma-AldrichHPA003183
抗α-微管蛋白抗体Sigma-AldrichT9026
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
腺苷SigmaA9251
三磷酸腺苷SigmaA9187
ATPγSAPExBIOB7582
D-丝氨酸SigmaS4250
MCPGMCEHY-100406
腺苷检测试剂盒BioVisionK327-100
微透析探针EicomAZ-4-01
rAAV2/8-GFAP-EGFP-2A-CreObio Technology--
rAAV2/5-GfaABC1D-cyto-GCaMP6f-SV40-pABrainVTA--
pAAV2/5-CMV-DIO-NLG3-HA-WPREObio Technology--
AAV2/9-CaMKII-GRABAdoBrainVTA--
AAV2/5-GfaABC1D-iGluSnFR (A184S)BrainVTA--
rAAV2/9-Ef1α-DIO-hM3D(Gq)-mCherry-WPRE-pABrainVTA--
印防己毒素SigmaR284556
CNQXSigmaN183
AP5Tocris0106
N6-环戊基腺苷SigmaC8031
bzATPSigmaB6396
异氟烷RWD20072102
微量注射针和微量注射泵KD Scientific78–8130
光纤InperFOC-W-1.25-200-0.37-5.0
引导套管RWD62004
DAPICayman Chemical28718-90-3
蛋白酶抑制剂混合物和磷酸酶抑制剂ThermoA32961

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
星形胶质细胞NLG3敲除与验证
他莫昔芬剂量1 mg/天、连续7天腹腔注射;敲除后检测时间点7周;AAV注射后8周。文中未明确说明他莫昔芬注射具体时间点。
阅读提示:Methods“Mice”与“Viral injections”小节;Fig. 1b、Fig. 1h
三箱社会识别记忆测试
3–5月龄雄性同窝小鼠;每阶段10 min;陌生人1与陌生人2为年龄匹配雄性C57BL/6J;社会记忆指数公式;测试间隔1–2天。
阅读提示:Methods“Three-chamber sociability and social novelty test”;Fig. 1c–f、Fig. 2、Fig. 4、Fig. 6、Fig. 9
化学遗传学与药物腹腔注射
CNO 0.5 mg/kg i.p.或CGS 21680 0.5 mg/kg i.p.,行为测试前20 min;溶剂与对照组设置。
阅读提示:Methods“Behavioral procedures”;Fig. 4g–i、Fig. 9g–i
腹侧海马局部药物注射
TFB-TBOA 50 nM、1 μl;SCH 58261 100 nM、1 μl;注射速度0.1 μl/min;行为测试前30 min;套管坐标AP −3.16 mm,DV −4.20 mm,ML ±3.20 mm。
阅读提示:Methods“Intracerebral cannula drug injections”;Fig. 6g–i、Supplementary Fig. 14f–h
急性脑片电生理与LTP
海马切片厚度360 μm;LTP诱导四组100 Hz、1 s、组间隔10 s;药物HFS前30 min加入并持续灌流;n为切片数,每只动物1–2片。
阅读提示:Methods“Slice electrophysiology”;Fig. 7、Fig. 8
星形胶质细胞Ca2+成像
GCaMP6f与DIO-mCherry病毒1:1混合、0.5 μl双侧注射;他莫昔芬诱导后7周制备脑片;HFS 100 Hz、1 s;灌流含picrotoxin 100 μM;激活细胞判定为dF/F0变化≥0.5。
阅读提示:Methods“Ca2+ imaging in hippocampal slices”;Fig. 3、Fig. 6a–f
光纤记录与微透析
光纤植入坐标AP −3.16 mm,DV −3.95 mm,ML ±3.25 mm;光纤植入后2周记录;微透析灌流速度1.0 μl/min;社会刺激10 min。
阅读提示:Methods“Fiber photometry recording in free-moving mice”“Microdialysis and adenosine assay”;Fig. 3i–l、Fig. 5g–i、Fig. 9a–f
神经元A2a条件性敲除
A2a f/f小鼠腹侧海马注射CaMKIIα-EGFP-T2A-Cre病毒;敲除验证时间点与行为学时间窗。文中未明确说明该实验病毒注射后至行为测试的具体间隔。
阅读提示:Fig. 9j–p;Methods“Viral injections”