PPIA决定NRF2稳定性从而促进肺癌进展

PPIA dictates NRF2 stability to promote lung cancer progression.

作者信息Weiqiang Lu, Jiayan Cui, Wanyan Wang, Qian Hu, Yun Xue, Xi Liu, Ting Gong, Yiping Lu, Hui Ma, Xinyu Yang, Bo Feng, Qi Wang, Naixia Zhang, Yechun Xu, Mingyao Liu, Ruth Nussinov, Feixiong Cheng, Hongbin Ji, Jin Huang
PMID38830868
发布时间2024-06-03
DOI10.1038/s41467-024-48364-4

实验完整度

高

含NSCLC细胞系、CRISPR敲除、蛋白互作与泛素化、X射线共晶结构、PDX及异种移植模型等多层级功能与机制验证

主要模型

NSCLC细胞系(A549、H2030、H1650、H1975等) HEK293T细胞 A549-Luc尾静脉肺原位裸鼠模型 NSCLC患者来源异种移植(PDX)模型(MT-101、WT-201等)

重点核对

PPIA敲除或CsA处理(10 μM)后NRF2蛋白水平及CHX追踪的半衰期 MG132处理后免疫沉淀检测NRF2泛素化水平 PPIA WT与催化失活突变体(R55A&F60A)对NRF2水平的回补能力 NRF2 P174A突变体与PPIA结合及蛋白稳定性 CsA(20 mg/kg,i.p.,每3天)与CB-839(150 mg/kg,p.o.,每日两次)联合在PDX和肺原位模型中的疗效

摘要

核因子红系2相关因子2(NRF2)过度活化已被确立为包括非小细胞肺癌(NSCLC)在内的多种人类癌症的致癌驱动因素。然而,尽管付出巨大努力,目前仍没有特异性疗法靶向NRF2过度活化。在此,我们鉴定出肽基脯氨酰异构酶A(PPIA)是NRF2蛋白稳定性所必需的。敲除PPIA促进NRF2蛋白降解并阻断NSCLC细胞中NRF2驱动的生长。机制上,PPIA与NRF2物理结合并阻断泛素/Kelch样ECH相关蛋白1(KEAP1)接近NRF2,从而阻止泛素介导的降解。我们的X射线共晶结构揭示,PPIA通过一个含有反式脯氨酸174的疏水序列直接与NRF2结构域间连接区相互作用。我们进一步证明,FDA批准的药物环孢菌素A(CsA)破坏NRF2与PPIA的相互作用,诱导NRF2泛素化和降解。有趣的是,CsA干扰由NRF2/KLF5/SLC1A5通路介导的谷氨酰胺代谢,从而抑制NRF2过度活化的NSCLC细胞的生长。CsA与谷氨酰胺酶抑制剂联合治疗显著延缓NRF2过度活化的NSCLC患者来源异种移植(PDX)模型中的肿瘤进展。我们的研究表明,靶向NRF2蛋白稳定性是治疗NRF2过度活化NSCLC的一种可行的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
NRF2过度活化的NSCLC缺乏直接靶向NRF2的疗法,能否通过调控NRF2蛋白稳定性找到可成药的治疗策略。
核心机制
PPIA结合NRF2的P174所在PBM基序,阻断KEAP1/泛素接近NRF2,抑制泛素-蛋白酶体降解;CsA破坏该互作,诱导NRF2降解并干扰NRF2/KLF5/SLC1A5介导的谷氨酰胺代谢。
主要证据
在NSCLC细胞中PPIA敲除缩短NRF2半衰期并增加其泛素化,X射线共晶结构显示P174嵌入PPIA催化口袋,CsA联合谷氨酰胺酶抑制剂在A549肺原位模型和NRF2过度活化PDX模型中协同抑制肿瘤生长。
研究意义
研究表明靶向NRF2蛋白稳定性是治疗NRF2过度活化NSCLC的可行动治疗途径,并为CsA联合谷氨酰胺酶抑制剂的精准治疗提供潜在框架。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建NRF2稳定性荧光报告系统并筛选化合物

筛选能促进NRF2蛋白降解的化合物

构建DsRed-IRES-EGFP-NRF2(RIG-NRF2)报告系统并稳定转染A549细胞,用805个化合物库进行筛选,以CHX处理组为100%降解参照计算NRF2下降百分比。

2

验证CsA诱导NRF2蛋白酶体降解

确认CsA通过泛素-蛋白酶体途径降低NRF2蛋白水平

在A549和H2030细胞中检测CsA处理后NRF2蛋白和mRNA水平,并用MG132逆转实验及泛素化免疫沉淀检测降解途径。

3

建立PPIA敲除细胞并验证NRF2稳定性

确定PPIA对NRF2蛋白稳定性和CsA诱导降解的必要性

用CRISPR/Cas9在A549、H2030、H460和H2122细胞中敲除PPIA,检测NRF2蛋白水平、泛素化及CHX追踪的半衰期,并用WT或催化失活PPIA回补。

4

解析PPIA与NRF2的相互作用及结构基础

确定PPIA与NRF2结合的结构域和关键氨基酸

通过Co-IP、Pull-down、NRF2截短体和脯氨酸点突变定位结合区域,并解析PPIA与NRF2 PBM肽段的X射线共晶结构及NMR化学位移扰动。

5

验证PPIA抑制对谷氨酰胺代谢的影响

确定PPIA抑制是否通过SLC1A5影响谷氨酰胺摄取和代谢

在PPIA敲除或CsA处理的A549和H2030细胞中检测谷氨酰胺依赖生长、OCR、13C5-谷氨酰胺代谢流、谷氨酰胺转运体表达及细胞内谷氨酰胺含量。

6

阐明NRF2-KLF5-SLC1A5转录调控轴

确定NRF2调控SLC1A5转录的分子路径

通过启动子荧光素酶报告、ChIP-PCR和回补实验验证NRF2通过KLF5激活SLC1A5转录。

7

评估CsA与谷氨酰胺酶抑制剂联合的体内疗效

验证联合治疗在NRF2过度活化NSCLC模型中的抗肿瘤效果

在A549-Luc尾静脉肺原位模型、人源化NCG小鼠异种移植模型和NSCLC PDX模型中评估CsA与CB-839单用及联合的疗效。

8

分析PPIA和NRF2的临床相关性

评估PPIA和NRF2表达与NSCLC临床预后之间的关系

对69例人LUAD组织芯片进行PPIA和NRF2免疫组化及Kaplan-Meier生存分析,并用公共数据库GSE8894和Kaplan-Meier plotter分析基因表达与生存的关系。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
NRF2抗体Proteintech16396-1-AP
PPIA抗体Proteintech10720-1-AP
泛素抗体Santa Cruzsc-8017
SLC1A5抗体Proteintech20350-1-AP
KLF5抗体Proteintech21017-1-AP
KEAP1抗体Proteintech10503-2-AP
Flag抗体Sigma-AldrichF3165
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
Dual-Glo荧光素酶检测系统Promega--
双荧光素酶报告基因检测系统Promega--
HaloTag NanoBRET 618配体Promega--
呋喃嗪----
Protein A/G琼脂糖珠----
CNBr活化琼脂糖4B珠GE Healthcare--
染色质免疫沉淀试剂盒Beyotime Biotechnology--
Hifair II第一链cDNA合成预混液Yeasen--
Hifair III一步法RT-qPCR SYBR Green试剂盒Yeasen--
谷氨酰胺/谷氨酸-Glo检测试剂盒Promega--
Seahorse XF细胞线粒体压力测试试剂盒Agilent Technologies--
Seahorse XFe96分析仪Agilent Technologies--
Ni-NTA柱Thermofisher--
PEG 3350----
TCEP----
D-荧光素----
CB-839----
环孢菌素A----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
RIG-NRF2化合物筛选
A549-RIG-NRF2稳定细胞系;CHX(10 μM)作为100%降解对照;CsA(10 μM)处理;流式细胞术门控策略
阅读提示:Methods中RIG-NRF2 Screen小节及Fig. 1D图注
PPIA敲除与NRF2稳定性
sgPPIA#1和sgPPIA#2序列;嘌呤霉素(5 μg/mL)筛选;CHX(100 μg/mL)追踪时间点;PPIA WT或R55A&F60A回补
阅读提示:Methods中CRISPR/Cas9 mediated PPIA gene knockout小节及Fig. 2、Fig. 3F图注
CsA与CB-839联合体内治疗
CB-839 150 mg/kg,p.o.,每日两次;CsA 20 mg/kg,i.p.,每3天;每组n=6只小鼠;PDX模型基因型(MT-101为KEAP1/KRAS突变,WT-201为野生型)
阅读提示:Methods中Lung orthotopic model和Patient-derived xenograft (PDX)小节及Fig. 6C、6F、6G图注
谷氨酰胺代谢流分析
13C5-glutamine(2 mM)标记8小时;LC-MS/MS检测TCA代谢物;谷氨酰胺浓度2、1、0.5 mM
阅读提示:Methods中Stable-isotope labeling and metabolic flux analysis小节及Fig. 4A、Supplementary Fig. 6
NRF2-KLF5-SLC1A5转录调控
SLC1A5启动子(-2000至+100 bp及-500至-10 bp截短体);KLF5启动子(-4000至0 bp);ChIP-PCR所用NRF2和KLF5抗体用量(5 μg)
阅读提示:Methods中Chromatin immunoprecipitation小节及Fig. 5A-5F图注