iPSC系建立与等基因对照构建
获得携带PACS1 p.R203W变异的细胞模型及对照。
使用来自对照和患者的iPSC,通过CRISPR/Cas9引入或纠正p.R203W变异,构建等基因对,并进行核型、多能性及三胚层分化验证。
iPSC-derived models of PACS1 syndrome reveal transcriptional and functional deficits in neuron activity.
包含皮质类器官、iPSC分化神经元、scRNAseq、钙成像和多电极阵列,并有CRISPR等基因编辑验证。
人iPSC来源的背侧皮质类器官 NEUROG2诱导的iPSC来源谷氨酸能神经元 CRISPR/Cas9构建的等基因iPSC系
iPSC系:3例对照(C1、C2、C3)和2例患者(A1、A2),以及CRISPR纠正和引入变异的等基因系 皮质类器官分化:第40天和第80/88天时间点 scRNAseq:9个类器官,来自4次独立分化 钙成像:使用Fluo-4 Direct,并加入50 µM bicuculline或1 µM TTX MEA记录:NEUROG2诱导的谷氨酸能神经元与25k大鼠星形胶质细胞共培养,记录第30–57天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得携带PACS1 p.R203W变异的细胞模型及对照。
使用来自对照和患者的iPSC,通过CRISPR/Cas9引入或纠正p.R203W变异,构建等基因对,并进行核型、多能性及三胚层分化验证。
模拟皮质发育并评估p.R203W对早期神经祖细胞和皮层结构的影响。
将iPSC分化为背侧皮质类器官,在day 40和day 80进行免疫组化染色和Western blot,检测皮层标记物和PACS1蛋白水平。
在转录组水平鉴定p.R203W变异影响的细胞类型和通路。
对day 40和day 88皮质类器官进行scRNAseq,比较基因型间的差异表达基因,并进行GO和IPA分析。
验证突触信号基因表达变化是否导致突触和神经网络活动改变。
在day 79类器官切片中定量谷氨酸能和GABA能突触密度;使用Fluo-4进行钙成像,记录自发和bicuculline处理后的钙事件。
以高时间分辨率评估p.R203W对神经元网络电生理的影响。
通过多西环素诱导NEUROG2过表达快速生成谷氨酸能神经元,与星形胶质细胞共培养于MEA板,记录自发网络活动。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR+培养基 | Stem Cell Technologies | 05825 |
| 基质胶 | Corning | 354234 | |
| ReLeSR传代试剂 | Stem Cell Technologies | 05872 | |
| iPSC分化 | STEMdiff三胚层分化试剂盒 | Stem Cell Technologies | 05230 |
| 神经前体细胞分化 | STEMdiff SMADi神经诱导试剂盒 | Stem Cell Technologies | 08581 |
| 类器官分化 | STEMdiff前脑类器官试剂盒 | Stem Cell Technologies | 08620 |
| 钙成像 | Fluo-4 Direct钙指示剂 | Thermo Scientific | F10473 |
| 毕枯枯林 | Tocris | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Cell Signaling Technology | 9806 |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | 23227 | |
| 抗PACS1抗体 | Sigma Aldrich | HPA038914 | |
| 免疫组化 | 抗PACS1抗体 | Generated by Gary Thomas’s Lab | -- |
| 抗SYN1抗体 | Cell Signaling Technology | 5297 | |
| 抗PSD95抗体 | NeuroMab | 75-028 | |
| 抗vGAT抗体 | Thermo Scientific | PA5-27569 | |
| 抗Gephyrin抗体 | Synaptic Systems | 147-021 | |
| MEA记录 | 48孔多电极阵列板 | Axion biosystems | M768-tMEA-48W |
| Axion Maestro 768通道放大器 | Axion Biosystems | -- | |
| NEUROG2诱导 | rtTA病毒 | Iowa Viral Vector Core | FIV3.2CAG-rtTA VSVG |
| 四环素诱导型NEUROG2::T2A::puroR | Northwestern University Gene Editing, Transduction, & Nanotechnology Core | -- | |
| sholl分析 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000-015 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 皮质类器官分化 | 分化方案版本(基于Sloan protocol或STEMdiff试剂盒)、生长因子浓度和时间点(day 40 vs day 80/88) 阅读提示:Methods 'Generation of dorsal cortical organoids' |
| scRNAseq | 细胞解离方法、测序平台(HiSeq 4000 vs NovaSeq 6000)、数据分析参数(过滤标准、整合方法) 阅读提示:Methods 'Dissociation of cortical organoids for single-cell RNA sequencing' 和 'Single-cell RNA sequencing and downstream analysis' |
| 钙成像 | Fluo-4 Direct浓度和孵育时间、bicuculline浓度(50 µM)和孵育时间(15分钟)、TTX浓度(1 µM)、成像频率(2 Hz) 阅读提示:Methods 'Calcium imaging in organoids' 和 Figure 4 legend |
| MEA记录 | 神经元与星形胶质细胞共培养比例(50k:25k)、多西环素浓度(2 µg/mL)、记录时间点(day 30–57)、尖峰检测阈值(6x RMS) 阅读提示:Methods 'Multielectrode array plating and recording of NEUROG2-derived neurons' 和 Figure 5 legend |
| 突触定量 | 切片厚度(15–20 µm)、共定位分析参数(>10 pixels)、样本量(n=14–20切片) 阅读提示:Methods 'Synaptic quantifications in organoids' 和 Figure 4 legend |