iPSC来源的PACS1综合征模型揭示神经元活性的转录和功能缺陷

iPSC-derived models of PACS1 syndrome reveal transcriptional and functional deficits in neuron activity.

作者信息Lauren Rylaarsdam, Jennifer Rakotomamonjy, Eleanor Pope, Alicia Guemez-Gamboa
PMID38280846
发布时间2024-01-27
DOI10.1038/s41467-024-44989-7

实验完整度

高

包含皮质类器官、iPSC分化神经元、scRNAseq、钙成像和多电极阵列,并有CRISPR等基因编辑验证。

主要模型

人iPSC来源的背侧皮质类器官 NEUROG2诱导的iPSC来源谷氨酸能神经元 CRISPR/Cas9构建的等基因iPSC系

重点核对

iPSC系:3例对照(C1、C2、C3)和2例患者(A1、A2),以及CRISPR纠正和引入变异的等基因系 皮质类器官分化:第40天和第80/88天时间点 scRNAseq:9个类器官,来自4次独立分化 钙成像:使用Fluo-4 Direct,并加入50 µM bicuculline或1 µM TTX MEA记录:NEUROG2诱导的谷氨酸能神经元与25k大鼠星形胶质细胞共培养,记录第30–57天

摘要

PACS1综合征是一种神经发育障碍,以智力障碍和由磷酸弗林酸性簇分选蛋白1(PACS1)的新发p.R203W变异引起的独特颅面异常为特征。已知PACS1在内体途径和细胞核中具有功能,但p.R203W变异如何影响发育中的神经元尚不完全清楚。在这里,我们将干细胞分化为包括皮质类器官在内的神经元模型,以研究导致PACS1综合征的变异对神经发育的影响。虽然在PACS1(+/R203W)神经前体细胞中检测到的有害效应很少,但成熟的PACS1(+/R203W)谷氨酸能神经元表现出参与突触信号传导过程的基因表达受损。随后使用钙成像和多电极阵列对神经活性进行的表征显示,p.R203W PACS1变异通过增加脉冲间间隔导致神经元网络爆发持续时间延长。这些发现证明了PACS1 p.R203W变异对发育中的人神经组织的影响,并揭示了疾病的推定的电生理学基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PACS1 p.R203W变异如何影响发育中的人神经组织,特别是皮质神经发生和神经元功能?
核心机制
p.R203W变异导致成熟谷氨酸能神经元中突触信号和离子转运相关基因表达受损,进而引起神经元网络爆发持续时间延长和同步性降低;该机制可能与脉冲间间隔增加有关。
主要证据
scRNAseq发现成熟谷氨酸能神经元突触信号基因表达下调;钙成像显示GABA能突触密度增加但神经网络活动无差异;MEA记录显示PACS1(+/R203W)神经元网络爆发持续时间延长、脉冲间间隔增加和同步性降低。
研究意义
首次在发育人脑模型中研究PACS1变异的影响,揭示了潜在的电生理学疾病机制,为治疗靶点提供了线索。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

iPSC系建立与等基因对照构建

获得携带PACS1 p.R203W变异的细胞模型及对照。

使用来自对照和患者的iPSC,通过CRISPR/Cas9引入或纠正p.R203W变异,构建等基因对,并进行核型、多能性及三胚层分化验证。

2

皮质类器官分化与早期表征

模拟皮质发育并评估p.R203W对早期神经祖细胞和皮层结构的影响。

将iPSC分化为背侧皮质类器官,在day 40和day 80进行免疫组化染色和Western blot,检测皮层标记物和PACS1蛋白水平。

3

单细胞RNA测序分析

在转录组水平鉴定p.R203W变异影响的细胞类型和通路。

对day 40和day 88皮质类器官进行scRNAseq,比较基因型间的差异表达基因,并进行GO和IPA分析。

4

突触密度和钙成像功能验证

验证突触信号基因表达变化是否导致突触和神经网络活动改变。

在day 79类器官切片中定量谷氨酸能和GABA能突触密度;使用Fluo-4进行钙成像,记录自发和bicuculline处理后的钙事件。

5

NEUROG2诱导谷氨酸能神经元及MEA记录

以高时间分辨率评估p.R203W对神经元网络电生理的影响。

通过多西环素诱导NEUROG2过表达快速生成谷氨酸能神经元,与星形胶质细胞共培养于MEA板,记录自发网络活动。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
mTeSR+培养基Stem Cell Technologies05825
基质胶Corning354234
ReLeSR传代试剂Stem Cell Technologies05872
STEMdiff三胚层分化试剂盒Stem Cell Technologies05230
STEMdiff SMADi神经诱导试剂盒Stem Cell Technologies08581
STEMdiff前脑类器官试剂盒Stem Cell Technologies08620
Fluo-4 Direct钙指示剂Thermo ScientificF10473
毕枯枯林Tocris--
RIPA裂解液Cell Signaling Technology9806
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific23227
抗PACS1抗体Sigma AldrichHPA038914
抗PACS1抗体Generated by Gary Thomas’s Lab--
抗SYN1抗体Cell Signaling Technology5297
抗PSD95抗体NeuroMab75-028
抗vGAT抗体Thermo ScientificPA5-27569
抗Gephyrin抗体Synaptic Systems147-021
48孔多电极阵列板Axion biosystemsM768-tMEA-48W
Axion Maestro 768通道放大器Axion Biosystems--
rtTA病毒Iowa Viral Vector CoreFIV3.2CAG-rtTA VSVG
四环素诱导型NEUROG2::T2A::puroRNorthwestern University Gene Editing, Transduction, & Nanotechnology Core--
Lipofectamine 3000转染试剂InvitrogenL3000-015

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
皮质类器官分化
分化方案版本(基于Sloan protocol或STEMdiff试剂盒)、生长因子浓度和时间点(day 40 vs day 80/88)
阅读提示:Methods 'Generation of dorsal cortical organoids'
scRNAseq
细胞解离方法、测序平台(HiSeq 4000 vs NovaSeq 6000)、数据分析参数(过滤标准、整合方法)
阅读提示:Methods 'Dissociation of cortical organoids for single-cell RNA sequencing' 和 'Single-cell RNA sequencing and downstream analysis'
钙成像
Fluo-4 Direct浓度和孵育时间、bicuculline浓度(50 µM)和孵育时间(15分钟)、TTX浓度(1 µM)、成像频率(2 Hz)
阅读提示:Methods 'Calcium imaging in organoids' 和 Figure 4 legend
MEA记录
神经元与星形胶质细胞共培养比例(50k:25k)、多西环素浓度(2 µg/mL)、记录时间点(day 30–57)、尖峰检测阈值(6x RMS)
阅读提示:Methods 'Multielectrode array plating and recording of NEUROG2-derived neurons' 和 Figure 5 legend
突触定量
切片厚度(15–20 µm)、共定位分析参数(>10 pixels)、样本量(n=14–20切片)
阅读提示:Methods 'Synaptic quantifications in organoids' 和 Figure 4 legend