肿瘤进入后自然杀伤细胞功能的快速损伤限制了抗肿瘤免疫

Rapid functional impairment of natural killer cells following tumor entry limits anti-tumor immunity.

作者信息Isaac Dean, Colin Y C Lee, Zewen K Tuong, Zhi Li, Christopher A Tibbitt, Claire Willis, Fabrina Gaspal, Bethany C Kennedy, Veronika Matei-Rascu, Rémi Fiancette, Caroline Nordenvall, Ulrik Lindforss, Syed Murtuza Baker, Christian Stockmann, Veronika Sexl, Scott A Hammond, Simon J Dovedi, Jenny Mjösberg, Matthew R Hepworth, Gianluca Carlesso, Menna R Clatworthy, David R Withers
PMID38267402
发布时间2024-01
DOI10.1038/s41467-024-44789-z

实验完整度

高

多模型光转换追踪、scRNA-seq、流式功能验证、体内干预及人CRC样本分析

主要模型

MC38皮下肿瘤模型 CT26皮下及原位肿瘤模型 B16-F10-OVA及E0771/MMTV-PyMT肿瘤模型 人结直肠癌样本及scRNA-seq数据

重点核对

Kaede光转换标记后5、24、48、72小时分析肿瘤内KG+/KR+ NK细胞比例 流式检测CD11b/CD49a分群及CCL5、IFNγ、颗粒酶A/B/C、穿孔素、CD107a FACS分选CD11b+与CD49a+ NK细胞与B16-F10-OVA共培养4小时杀伤实验 IL-15:IL-15Rα复合物于肿瘤第7、12天腹腔注射(2.5 μg rIL-15:12.5 μg rIL-15Rα) 抗NK1.1(PK136,200 μg)或抗CD8α(53-6.7,400 μg)每3天腹腔注射

摘要

肿瘤微环境(TME)中的免疫细胞功能障碍削弱了对癌症进展的控制。已形成的肿瘤包含表型独特的肿瘤特异性自然杀伤(NK)细胞;然而,NK细胞区室的时间动态、机制基础及功能意义仍不完全清楚。在此,我们利用光标记结合纵向转录组和细胞分析,探究肿瘤内NK细胞的命运。我们揭示NK细胞迅速丧失效应功能,并采用一种具有组织驻留相关特征的独特表型状态。从已形成的肿瘤中去除NK细胞并未改变肿瘤生长,表明肿瘤内NK细胞不再主动参与抗肿瘤反应。给予IL-15可防止功能丧失并改善肿瘤控制,生成同时具有组织驻留特征和增强效应功能的肿瘤内NK细胞。总之,我们的数据揭示了NK细胞被招募到肿瘤后的命运,并为其功能如何可能被恢复提供了见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
进入肿瘤的NK细胞在TME中随时间如何改变表型和功能,其命运及功能意义是什么。
核心机制
循环cNK细胞进入肿瘤后迅速分化为CD49a+CD11b-的肿瘤驻留状态并丧失效应功能;增强IL-15信号可使其形成兼具CD49a+CD11b+表型和强细胞毒功能的NK细胞。
主要证据
Kaede光转换小鼠多肿瘤模型结合scRNA-seq和流式追踪显示NK细胞24小时内转录组重编程、3天内完成CD49a+转化;CD49a+ NK细胞杀伤B16-F10能力低于CD11b+;IL-15:IL-15Rα处理改善CT26等肿瘤控制并增加颗粒酶和穿孔素表达。
研究意义
揭示NK细胞进入肿瘤后的命运及可被IL-15信号恢复的功能,为设计恢复固有免疫抗肿瘤反应的策略提供依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

光转换标记追踪肿瘤内NK细胞时间动态

区分新进入与已驻留肿瘤的NK细胞并追踪其表型变化。

在Kaede光转换小鼠皮下种植MC38等肿瘤,第13天对肿瘤免疫区室进行405 nm光转换,不同时间点收获肿瘤分析KG+与KR+ NK细胞。

2

scRNA-seq解析NK细胞转录组轨迹

无偏描绘肿瘤内NK细胞进入后转录组变化及分化轨迹。

FACS分选KG+和KR+肿瘤浸润淋巴细胞进行液滴scRNA-seq,聚类、拟时序和PAGA分析NK细胞亚群。

3

流式验证NK细胞表型与功能变化

在蛋白水平验证CD49a/CD11b分群及效应分子产生随驻留时间的变化。

光转换后不同时间点流式检测CD49a、CD11b、CCL5、IFNγ、颗粒酶A/B/C、穿孔素和CD107a,并用Ifngcre/mKate2报告小鼠检测Ifng表达。

4

体外杀伤实验比较NK亚群细胞毒性

验证CD49a+肿瘤NK细胞是否比CD11b+细胞杀伤能力更低。

FACS分选MC38肿瘤CD11b+和CD49a+ NK细胞,与Cell Trace Violet标记的B16-F10-OVA共培养4小时检测靶细胞存活。

5

体内干预验证NK细胞功能与TME机制

检验已形成肿瘤中NK细胞是否仍控制肿瘤生长,以及TGFβ、PGE2、HIF-1α和IL-15的作用。

使用抗NK1.1去除NK细胞、抗OX40去除Treg、MC38ptgs-/-肿瘤、Ncr1cre×Hif1af/f×Kaede小鼠及IL-15:IL-15Rα复合物处理,评估肿瘤生长和NK细胞表型功能。

6

人结直肠癌样本验证NK细胞状态

确认小鼠发现是否适用于人肿瘤。

重新分析62例人CRC scRNA-seq的3521个NK细胞,并对10例患者PBMC、正常结肠和肿瘤进行流式分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI培养基----
L-谷氨酰胺Thermo Fisher Scientific21875034
胎牛血清Sigma-AldrichF9665
青霉素-链霉素Sigma-AldrichP4333
DMEM培养基----
杜氏磷酸盐缓冲液Sigma-AldrichD8662
胶原酶DRoche11088882001
DNase IRoche101104159001
LiberaseRoche5401119001
胶原酶VIIISigma-AldrichC2139
胶原酶VSigma-AldrichC9263
分散酶Gibco17-105-041
OptiPrep密度梯度液STEMCELL Technologies07820
Hank平衡盐溶液Sigma-Aldrich55037 C
NK细胞分离试剂盒Miltenyi Biotec130-115-818
Cell Trace Violet染料InvitrogenC34557
重组IL-2Peprotech--
重组IL-15Peprotech--
转化生长因子β----
16,16-二甲基前列腺素E2----
二甲基亚砜Sigma--
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯Sigma-AldrichP1585
离子霉素Sigma-AldrichI0634
布雷菲德菌素ASigma-AldrichB6542
莫能霉素BioLegend420701
BD CytoFix固定缓冲液BD Biosciences554655
eBioscience透化缓冲液Thermo Fisher Scientific00-8333-56
计数微球SpherotechACBP-100-10
抗CD16/32抗体BioLegend--
纯化抗CCL5抗体R&D Systems--
抗CD107a BV786抗体BioLegend--
抗CD11b PE-Dazzle594抗体BioLegend--
抗CD3 BV711或BUV737抗体BioLegend--
抗CD45 FITC或BV510抗体BioLegend--
抗CD49a BUV395抗体BD Bioscience--
抗CD49b BV711抗体BioLegend--
抗CD69 PE-Cy7或BV711抗体BioLegend--
抗DNAM-1 BV605抗体BioLegend--
抗EOMES PE或PE-Cy7抗体BioLegend--
纯化抗颗粒酶A抗体BD Biosciences--
抗颗粒酶B BV421抗体BioLegend--
抗颗粒酶C PE-Cy7抗体BioLegend--
抗IFNγ BUV737抗体BioLegend--
抗IL-7Rα BV605或BV421抗体BioLegend--
抗Ki-67 BV711或AF700抗体BioLegend--
抗KLRG1 BV605抗体BioLegend--
抗LAG3 BV786抗体BioLegend--
抗NK1.1 BV650或BV786抗体BioLegend--
抗NKG2A/C/E BV421抗体BioLegend--
抗NKp46 BV650或BV786抗体BioLegend--
抗OX40 BV711抗体BioLegend--
抗PD-1 PE-Cy7抗体BioLegend--
抗穿孔素APC抗体BioLegend--
抗T-bet e660抗体BioLegend--
抗TCRβ BUV737抗体BioLegend--
AF647标记多克隆驴抗山羊IgGThermo Fisher ScientificA32849
抗CD16-FITC抗体Biolegend--
抗NKG2A-APC抗体Beckman Coulter--
抗颗粒酶A-AF700抗体Biolegend--
抗CD49a-BV421抗体BD--
抗CD11b-BV510抗体BD--
抗CD3-BV570抗体Biolegend--
抗CD57-BV605抗体Biolegend--
抗CD103-BV650抗体BD--
抗穿孔素-BV711抗体Biolegend--
抗LAG3-BV786抗体BD--
抗T-bet-PE抗体BD--
抗颗粒酶B-PE-CF594抗体BD--
抗CD127-PE-Cy5抗体Biolegend--
抗CD69-PE-Cy5.5抗体Thermofisher--
抗EOMES-PE-Cy7抗体Thermofisher--
抗CD45-BUV395抗体BD--
抗CD56-BUV737抗体BD--
Live/Dead近红外活力染料Thermo Fisher ScientificL10119
抗Ter119-PE-Cy7抗体BioLegend--
Dymax BlueWave QX4配8 mm聚焦透镜IntertronicsDYM41572
BD LSR Fortessa X-20流式细胞仪BD Bioscience--
FACS Aria II细胞分选仪BD Biosciences--
Chromium控制器及单细胞3' GEM试剂盒v310x Genomics--
Illumina NovaSeq 6000测序平台Illumina--
抗NK1.1抗体AstraZeneca--
抗CD8α抗体AstraZeneca--
抗OX40抗体AstraZeneca--
InVivoMab小鼠IgG2a同型对照BioXCell--
InVivoMab大鼠IgG2a同型对照BioXCell--
重组IL-15Peprotech210-15
重组IL-15Rα--551-MR-100

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
光转换标记与时间点分析
肿瘤直径6–8 mm时光转换;405 nm LED 9轮20秒照射,间隔5秒;光转换后5、24、48、72小时分析
阅读提示:Methods“Tumor compartment photo-labeling”及图2E–G图注
scRNA-seq样本与聚类
光转换后48小时FACS分选KG+和KR+ TILs;46,342个细胞质控后分析;NK细胞11,808个;拟时序根植于NK_1
阅读提示:Results第一段、图1及Methods“Processing of scRNA-seq”
NK细胞功能流式检测
PMA 50 ng/ml与离子霉素1.5 µM刺激4小时;布雷菲德菌素A 10 µg/ml第一小时后加入;CD107a检测用莫能霉素2 µM替代布雷菲德菌素A
阅读提示:Methods“Flow cytometry”
体外杀伤实验
B16-F10-OVA经10 µM Cell Trace Violet标记;效靶比1:10、1:20、1:40;共培养4小时;n=3
阅读提示:Methods“In vitro assays”及图3I–J图注
IL-15:IL-15Rα处理
rIL-15与rIL-15Rα按1:5摩尔比37°C孵育30分钟;每只2.5 µg rIL-15:12.5 µg rIL-15Rα腹腔注射;肿瘤第7、12天给药
阅读提示:Methods“Administration of IL-15:IL-15Rα complexes”及图6A图注
NK细胞去除实验
抗NK1.1(PK136)200 µg每3天腹腔注射,自肿瘤第6天开始;同型对照200 µg
阅读提示:Methods“Cell depletion”及补充图13