建立KL肺癌小鼠模型并定义CACS
诱导肺癌并区分发生恶病质与未发生恶病质的小鼠。
成年FVB小鼠鼻内给予Ad5CMV-Cre诱导肿瘤,监测体重;体重较峰值下降>15%定义为+CACS,否则为-CACS。
Blocking ActRIIB and restoring appetite reverses cachexia and improves survival in mice with lung cancer.
使用KL肺癌小鼠模型、代谢笼、RNA-seq、组织学、离体肌肉功能及药物干预试验,包含功能与机制验证。
KL肺癌小鼠模型(KrasLSL-G12D/+;Lkb1flox/flox) 人肺腺癌患者肿瘤样本及临床数据库(TCGA、CPTAC、Lehtiö等) 离体骨骼肌(EDL、Soleus)
CACS定义:体重较峰值下降>15% ActRIIB-Fc剂量20 mg/kg每周皮下注射,Ana剂量30 mg/kg 治疗随机化:按体重下降10–15%时随机分组,区组大小6并按性别分层 代谢笼测定TEE、RER、活动和摄食,22°C或30°C环境 生存分析采用Log-rank Mantel-Cox检验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
诱导肺癌并区分发生恶病质与未发生恶病质的小鼠。
成年FVB小鼠鼻内给予Ad5CMV-Cre诱导肿瘤,监测体重;体重较峰值下降>15%定义为+CACS,否则为-CACS。
确定CACS是否伴随摄食减少、能量消耗降低和活动下降。
使用Promethion代谢笼系统在22°C或30°C下进行间接测热,记录摄食、饮水和活动,计算TEE和RER;用ANCOVA以瘦体重校正TEE。
验证CACS是否导致骨骼肌代谢功能障碍和运动能力下降。
测定EDL和Soleus中PFK和柠檬酸合酶活性,Western blot检测LDHA、PDHe1α磷酸化及OXPHOS复合物,测量线粒体DNA含量,进行跑步机耐力测试和血乳酸测定,质谱检测TCA中间产物。
寻找与CACS相关的肿瘤分泌因子。
对+CACS和-CACS小鼠肿瘤进行RNA-seq,差异表达分析发现Inhba;检测血清中IL-1α、Activin A和GDF-15水平;比较TCGA预后基因集。
测试阻断GDF-15和Activin A能否逆转CACS。
小鼠体重下降10–15%时随机分组,分别接受IgG对照、抗GDF-15 mAb或抗GDF-15 mAb联合ActRIIB-Fc,监测体重、摄食、体成分和生存。
测试恢复食欲联合阻断Activin A能否逆转CACS并改善生存。
小鼠随机接受IgG、Ana或Ana联合ActRIIB-Fc,监测摄食、体重、体成分、活动、生存和肿瘤负荷。
确定联合治疗雌性特异性效应是否依赖卵巢或雌激素受体。
雌性小鼠进行卵巢切除或假手术,或使用fulvestrant(雌激素受体降解剂),然后接受联合治疗或对照,评估摄食、体重和体成分。
评估Activin A表达与患者生存的关系是否具有性别特异性。
使用CPTAC、TCGA和Lehtiö等数据集,按BMI、性别和Activin A表达分析生存;ELISA检测肺癌患者血清Activin A。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物饲养 | PicoLab Rodent 20 5053饲料 | Lab Diet | 5053 |
| 肿瘤诱导 | 腺病毒CMV-Cre | University of Iowa Gene Transfer Vector Core | -- |
| 代谢笼分析 | Promethion代谢笼系统 | Sable Systems | -- |
| 体成分分析 | EchoMRI-100H 2n1体成分分析仪 | EchoMRI | -- |
| 运动能力测试 | 电动跑步机 | -- | -- |
| 血乳酸测定 | 即时检测设备 | Nova Biomedical | -- |
| 药物处理 | 苯甲酸阿那莫林 | BOC Sciences | -- |
| ActRIIB-Fc诱饵抗体 | Pfizer | -- | |
| GDF15单克隆抗体 | Pfizer | -- | |
| 血清检测 | 瘦素ELISA试剂盒 | Milipore | EZML-82K |
| Activin-A ELISA | R&D Systems | DAC00B | |
| GDF-15 ELISA | R&D Systems | MGD150 | |
| I125标记的T4 | MP Biomedicals | 06B257231 | |
| I125标记的T3 | MP Biomedicals | 06B254282 | |
| 抗T4抗体 | Sigma | T2652 | |
| 抗T3抗体 | Sigma | T2777 | |
| 组织学 | 抗UCP1抗体[EPR20381] | Abcam | ab209483 |
| Western blot | 抗PGC1 alpha抗体 | Abcam | ab54481 |
| 抗LDHA抗体 | Cell Signaling Technology | 2012 | |
| 抗磷酸化LDHA (Tyr10)抗体 | Cell Signaling Technology | 8176 | |
| 抗Pdhe1α (Ser293)抗体 | Abcam | ab92696 | |
| 总OXPHOS混合物 | Abcam | ab110413 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 抗VDAC抗体 | Cell Signaling Technology | 4661 | |
| 抗α-Tubulin (DM1A)抗体 | Cell Signaling Technology | 3873 | |
| RNA提取 | TRIzol | Thermo Fisher | -- |
| RNA纯化 | RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| RT-qPCR | SuperScript VILO Master Mix | Thermo Fisher | -- |
| TaqMan基因表达检测 | Thermo Fisher | -- | |
| SYBR Select Master Mix | Thermo Fisher | -- | |
| 线粒体DNA定量 | Dneasy血液和组织试剂盒 | Qiagen | -- |
| 脂解实验 | 游离甘油测定试剂盒 | Sigma-Aldrich | -- |
| 酶活性测定 | 柠檬酸合酶活性试剂盒 | Sigma-Aldrich | CS0720 |
| 6-磷酸果糖激酶活性测定 | Abcam | ab155898 | |
| Epoch 2微孔板分光光度计 | BioTek | -- | |
| 蛋白电泳 | NuPAGE Bis-Tris凝胶 | Thermo Fisher | -- |
| 蛋白转膜 | PVDF膜 | Bio-Rad Laboratories | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| KL肺癌小鼠模型与CACS定义 | 小鼠品系背景(FVB)、诱导时年龄(12–20周)、Ad5CMV-Cre剂量(2.5×10^7 pfu/75 μL)、CACS阈值(体重下降>15%) 阅读提示:Methods“Experimental model”及Results第一段 |
| 代谢笼与能量消耗测定 | 环境温度(22°C或30°C)、监测时长(3天)、TEE校正方法(ANCOVA以瘦体重校正)、REE/AEE/CCA估算模型 阅读提示:Methods“Metabolic cage analyses”及Fig. 1f, g |
| 药物干预试验RCT2(Ana±ActRIIB-Fc) | Ana剂量(30 mg/kg)、ActRIIB-Fc剂量(20 mg/kg QW SQ)、随机化时机(体重下降10–15%)、分组与样本量(IgG n=7, Ana n=8, 联合n=8,仅雌性)、主要终点(2周体重变化) 阅读提示:Methods“Therapeutic trials”及Fig. 5f–j |
| 卵巢切除与fulvestrant实验 | 卵巢切除时间(肿瘤诱导前4周)、sham手术对照(n=20 vs n=21)、fulvestrant给药方案(文中未明确说明剂量和途径) 阅读提示:Methods“Bilateral ovariectomy”及Fig. S7 |
| 人肺腺癌预后分析 | 数据集来源(TCGA、CPTAC、Lehtiö等)、BMI cutoff(≤20 kg/m²)、性别分层样本量(TCGA女性n=270,男性n=234) 阅读提示:Results“Activin A expression in human lung adenocarcinoma...”及Fig. 6 |