验证室管膜多纤毛含翻译机器和RNA
确认多纤毛中存在核糖体蛋白、eIF组分和RNA,为局部翻译提供物质基础。
纯化培养mEPC多纤毛进行shotgun质谱,免疫印迹检测Rpl4、Eif3d、Eif3h;免疫荧光检测Rpl10A、Rpl11、Rps3及GFP-Rpl11/Rps3;AO和PY染色检测RNA;smFISH和FISH检测18 S rRNA;免疫荧光检测Eif3各亚基、Eif4e和Eif4g,3D-SIM观察定位。
Cilia locally synthesize proteins to sustain their ultrastructure and functions.
体外培养mEPC多纤毛模型结合分离纤毛、嘌呤霉素标记、PLA、smFISH、RNAi敲低及线粒体锚定Fmrp挽救实验,包含功能与机制验证
原代培养小鼠室管膜细胞(mEPCs)多纤毛 分离的室管膜多纤毛 分离的纤毛干(含TZ、无基体)
Fmrp敲低使用Fmr-i1和Fmr-i2两条独立siRNA,并设Ctrl-i对照,siRNA每3天转染一次 嘌呤霉素标记浓度10 μg/ml,标记5或10分钟;CHX预处理10 μg/ml 30分钟作为翻译抑制对照 分离纤毛干中76.5%含Cep290(TZ)且缺少Odf2(基体),用于排除胞体扩散来源 PLA使用anti-α-tubF(1:800)或anti-α-tubC(1:100)与anti-Puro配对,以GapdhN和Tom20F作为阴性对照 Fmrp挽救实验使用GFP-Fmrp与线粒体锚定GFP-mtFmrp,并以Centrin1-GFP作为阴性对照
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认多纤毛中存在核糖体蛋白、eIF组分和RNA,为局部翻译提供物质基础。
纯化培养mEPC多纤毛进行shotgun质谱,免疫印迹检测Rpl4、Eif3d、Eif3h;免疫荧光检测Rpl10A、Rpl11、Rps3及GFP-Rpl11/Rps3;AO和PY染色检测RNA;smFISH和FISH检测18 S rRNA;免疫荧光检测Eif3各亚基、Eif4e和Eif4g,3D-SIM观察定位。
证明纤毛内存在活跃的蛋白质翻译,而非仅由胞体扩散而来。
对培养mEPC进行嘌呤霉素脉冲标记,免疫荧光检测嘌呤霉素化新生肽;分离含多纤毛的顶端皮层及无基体的纤毛干,分别进行嘌呤霉素标记,并以CHX抑制翻译作为对照。
寻找可能介导mRNA递送至纤毛的RNA结合蛋白,并确定其在纤毛内的分布。
将纤毛蛋白质组与RBPDB数据库比对,结合mTEC cDNA芯片筛选候选RBP;用3D-SIM免疫荧光检测Fmrp与中央对标记Hydin的共定位;在分离多纤毛中验证Fmrp定位。
区分Fmrp是作为翻译抑制因子还是mRNA递送因子,并检验其对纤毛局部翻译的影响。
在多纤毛形成前用两条独立siRNA敲低Fmrp,免疫印迹验证敲低效率,嘌呤霉素标记检测纤毛局部翻译;通过RNA深度测序比较Ctrl-i与Fmr-i1处理纯化多纤毛的mRNA,筛选候选纤毛mRNA;smFISH检测α/β-微管蛋白mRNA。
评估纤毛局部翻译对多纤毛维持的生理重要性。
在day 6和day 12对Fmrp敲低细胞进行多纤毛形态评分;用腺病毒表达Centrin1-GFP标记基体,从day 7开始进行24小时活细胞成像,每10分钟采集z-stack;检测细胞形态和紧密连接标记Zo-1以排除细胞死亡。
判断Fmrp的纤毛定位是否为其防止多纤毛退化所必需。
构建抗Fmr-i1的GFP-Fmrp和线粒体锚定GFP-mtFmrp腺病毒,在Fmrp敲低背景下表达,免疫荧光验证定位,day 12统计多纤毛退化发生率。
确认纤毛内α/β-微管蛋白mRNA确实被局部翻译为微管蛋白,并检验其对Fmrp的依赖。
嘌呤霉素标记后进行PLA,使用抗α-微管蛋白全长抗体或C端抗体与抗嘌呤霉素抗体配对检测嘌呤霉素化α-微管蛋白肽;以GapdhN和Tom20F抗体作为阴性对照;在分离纤毛干中重复PLA;在Fmrp敲低细胞中检测纤毛PLA信号。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | C11965500BT |
| 胎牛血清 | Ausbian | VS500T | |
| L-谷氨酰胺 | Sigma–Aldrich | G8540 | |
| 青霉素和链霉素 | Invitrogen | 15140122 | |
| 木瓜蛋白酶 | Worthington | LS003126 | |
| DNase I | Sigma | D5025 | |
| primocin | InvivoGen | -- | |
| 纤连蛋白 | Sigma | FC010 | |
| Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | ThermoFisher Scientific | 13778-150 | |
| Lipofectamine 2000转染试剂 | ThermoFisher Scientific | 11668-019 | |
| 质粒构建 | LR Clonase II酶混合物 | ThermoFisher Scientific | 11791020 |
| 免疫印迹 | 预制4–12% Bis-Tris凝胶 | Biofuraw | 180-8008H |
| 0.2 μm硝酸纤维素膜 | GE Healthcare | 10600001 | |
| Western Lightning Plus-ECL化学发光试剂 | PerkinElmer | NEL104001EA | |
| 抗体剥离缓冲液 | EpiZyme | PS107 | |
| 免疫荧光染色 | 多聚-L-赖氨酸 | Sigma–Aldrich | P1399 |
| ProLong封片剂 | ThermoFisher Scientific | 2273640 | |
| 吖啶橙染色 | siR-微管蛋白 | SPIROCHROME | CY-SC002 |
| RNase A | ThermoFisher Scientific | 12091021 | |
| 吖啶橙 | Sigma–Aldrich | 318337 | |
| Prolong Diamond抗淬灭封片剂 | ThermoFisher Scientific | P36970 | |
| 吡罗红Y染色 | 吡罗红Y | MedChemExpress | HY-D0971 |
| Hoechst 33342 | ThermoFisher Scientific | H3570 | |
| 驴正常IgG | Yeasen | 36108ES10 | |
| 免疫荧光染色 | 小鼠抗乙酰化微管蛋白抗体 | Sigma–Aldrich | T6793 |
| Alexa Fluor 488偶联驴抗小鼠IgG | ThermoFisher Scientific | A-21202 | |
| FISH | DIG RNA标记试剂盒 | Roche | 11175025910 |
| MEGAclear转录纯化试剂盒 | ThermoFisher Scientific | AM1908 | |
| Alexa Fluor 546偶联驴抗绵羊IgG | ThermoFisher Scientific | A-21098 | |
| smFISH | 荧光原位杂交试剂盒 | RiboBio | C10910 |
| 纤毛纯化 | OptiPrep密度梯度介质 | Sigma–Aldrich | D1556 |
| 振荡器 | Zhichu | ZQZY-AS9 | |
| 嘌呤霉素标记 | 嘌呤霉素 | Sigma–Aldrich | P8833 |
| 小鼠抗嘌呤霉素抗体 | Merk Millipore | MABE343 | |
| Cy3偶联驴抗兔IgG | Jackson ImmunoResearch | 711-165-152 | |
| PLA | 兔抗α-微管蛋白全长抗体 | Proteintech | 11224-1-AP |
| 兔抗α-微管蛋白C端抗体 | Abcam | ab15246 | |
| 兔抗Gapdh N端抗体 | Abcam | ab181603 | |
| 兔抗Tom20全长抗体 | Proteintech | 11802-1-AP | |
| 兔PLAplus探针 | Sigma–Aldrich | DUO92002 | |
| 小鼠PLAminus探针 | Sigma–Aldrich | DUO92004 | |
| Alexa Fluor 488偶联驴抗豚鼠IgG | Jackson ImmunoResearch | 706-545-148 | |
| Duolink红色荧光检测试剂 | Sigma–Aldrich | DUO92008 | |
| 含DAPI的Duolink原位封片剂 | Sigma–Aldrich | DUO82040 | |
| RNA测序 | TRIzol试剂 | ThermoFisher Scientific | 15596-018 |
| GlycoBlue | ThermoFisher Scientific | AM9515 | |
| Poly(A)磁珠分离模块 | NEB | E7490 | |
| NEBNext Ultra II定向RNA文库构建试剂盒 | NEB | E7760 | |
| 活细胞成像 | 转盘共聚焦显微镜 | Olympus | SpinSR10 |
| ORCA-Flash 4.0 V3数字CMOS相机 | Hamamatsu | -- | |
| 超分辨成像 | DeltaVision OMX SR成像系统 | GE Healthcare | -- |
| 共聚焦成像 | Leica TCS SP8 WLL系统 | Leica | -- |
| 免疫印迹 | MiniChemi化学发光成像仪 | Sagecreation | -- |
| RNA测序 | Agilent Bioanalyzer 2100 | Agilent Technologies | -- |
| Illumina HiSeq X测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| mEPC培养与多纤毛化 | 新生C57BL/6小鼠脑端取材日龄(P0–P1)、血清饥饿起始时间、多纤毛形成时间点(day 3后形成,day 10检测) 阅读提示:Methods“Cell culture, transfection, and viral infection”及Figure 1–8图注中的day标注 |
| Fmrp敲低 | siRNA序列、转染浓度40 pmol、每3天转染一次、从day −1开始、Fmr-i1和Fmr-i2两条独立siRNA及Ctrl-i对照 阅读提示:Methods“Cell culture, transfection, and viral infection”及Figure 4e、5a、6b |
| 嘌呤霉素标记 | 嘌呤霉素10 μg/ml、标记5/10/30分钟、CHX 10 μg/ml预处理30分钟、抗嘌呤霉素抗体1:200 阅读提示:Methods“Puromycin labeling assay”及Figure 3、4h、8图注 |
| 分离纤毛干 | 含Ca2+去纤毛缓冲液、37 °C 300 rpm水平振荡15分钟、纤毛干中TZ/基体标记比例(76.5% Cep290阳性/Odf2阴性) 阅读提示:Methods“Cilia isolation”及Supplementary Fig. 2c, d |
| PLA检测嘌呤霉素化α-微管蛋白 | anti-α-tubF 1:800、anti-α-tubC 1:100、anti-Puro 1:200、GapdhN和Tom20F阴性对照、PLA spots定量方法 阅读提示:Methods“Proximity ligation assay (PLA)”及Figure 8图注 |
| Fmrp挽救实验 | GFP-Fmrp与GFP-mtFmrp构建细节(线粒体锚定序列481-528 aa)、腺病毒感染滴度1:1000、day 12统计退化发生率 阅读提示:Methods“Plasmid construction”和“Cell culture, transfection, and viral infection”及Figure 6 |
| 纤毛RNA测序 | 多纤毛纯化iodixanol梯度浓度(15%/20%/25%)、300,000 × g 18小时、三次重复、差异表达分析筛选阈值 阅读提示:Methods“Cilia isolation”和“RNA sequencing”及Figure 7a–c |