构建Pten条件敲除FN-RMS小鼠模型
验证Pten丢失是否加速并改变FN-RMS肿瘤发生
将aP2-Cre;Ptenflox/+与SmoM2/M2;Ptenflox/+杂交,生成ASPWT、ASPcHet、ASPcKO小鼠,监测肿瘤发生、肿瘤负荷与组织学
Synthetic essentiality between PTEN and core dependency factor PAX7 dictates rhabdomyosarcoma identity.
包含条件敲除小鼠模型、细胞系/PDX体外功能验证、异种移植体内验证及机制实验(ChIP、荧光素酶报告)
aP2-Cre;SmoM2驱动的小鼠FN-RMS模型(ASPWT/ASPcHet/ASPcKO/ASPcKOP7cKO) 人FN-RMS细胞系SMS-CTR、RD、Rh18 人FN-RMS患者来源异种移植(PDX)SJRHB015721_X1、SJRHB012405_X1、SJRHB011_Y 小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)
小鼠基因型分组:ASPWT、ASPcHet、ASPcKO及ASPcKOP7cKO,在P12评估肿瘤质量 Ptenflox/flox与Pax7flox/flox条件性敲除及aP2-Cre;SmoM2/+遗传背景 人FN-RMS细胞系及PDX中PAX7、DBX1的shRNA敲低(两种独立shRNA与scramble对照) SCID/Beige小鼠原位(腓肠肌)注射PDX或细胞系后肿瘤体积与质量检测 ChIP-qPCR检测PAX7与DBX1启动子近端位点1结合,以及Dbx1启动子荧光素酶报告基因剂量依赖实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Pten丢失是否加速并改变FN-RMS肿瘤发生
将aP2-Cre;Ptenflox/+与SmoM2/M2;Ptenflox/+杂交,生成ASPWT、ASPcHet、ASPcKO小鼠,监测肿瘤发生、肿瘤负荷与组织学
判断Pten丢失是否使肿瘤分化降低、恶性程度增加
H&E与IHC检测DESMIN、MYOD1、MYOGENIN、Ki67、PTEN;real-time PCR检测肌源性基因;免疫荧光检测MyHC亚型;SCID/Beige皮下移植评估致瘤性
确定Pten丢失对PI3K/AKT/mTOR等信号的影响
RPPA检测350种抗体对应蛋白;免疫印迹检测AKT、S6、4E-BP1、p70S6K磷酸化;rhabdosphere药物敏感性实验(GDC-0941、MK-2206、everolimus、doxorubicin)
寻找介导Pten丢失表型的关键转录因子并在人FN-RMS中验证其功能
微阵列/RNA-seq比较ASPWT与ASPcKO肿瘤;real-time PCR验证差异基因;在人FN-RMS细胞系与PDX中shRNA敲低DBX1,检测细胞活力与体内肿瘤生长
确定Pten丢失如何上调Dbx1及PAX7是否为直接转录调控因子
Ptenflox MEF腺病毒Cre感染;Dbx1启动子荧光素酶报告基因实验;PAX7过表达与敲低实验;ChIP-qPCR检测PAX7与DBX1启动子结合
确认PAX7在已建立的人FN-RMS细胞和PDX中为依赖因子
在人FN-RMS细胞系(SMS-CTR、RD、Rh18)及PDX来源细胞中shRNA敲低PAX7,检测细胞活力、增殖及SCID/Beige小鼠原位肿瘤生长
确定Pax7缺失能否挽救Pten丢失表型并改变肿瘤命运
构建ASPcKOP7cKO小鼠;组织学、IHC(DESMIN、MYOD1、MYOG、SMA、CALDESMON)、电镜及流式分选后RNA-seq分析
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | SH32043 |
| 胎牛血清 | Hyclone | -- | |
| 抗生素/抗真菌剂 | Sigma | A5955 | |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo试剂 | Promega | G7570 |
| 药物处理 | 多柔比星 | LC Labs | D-4000 |
| 依维莫司 | LC Labs | E-4040 | |
| GDC-0941 | Selleck Chemicals | S1065 | |
| 曲美替尼 | Selleck Chemicals | S2673 | |
| MK-2206 | Selleck Chemicals | S1078 | |
| PAX7免疫荧光 | TSA-Plus花青素5 | PerkinElmer | NEL745001KT |
| 荧光素酶报告基因实验 | pGL4.25荧光素酶报告载体 | Promega | E8431 |
| FuGene转染试剂 | Promega | E2692 | |
| 荧光素酶检测系统 | Promega | E1501 | |
| LacZ/β-半乳糖苷酶定量试剂盒 | ThermoScientific | F-2905 | |
| 慢病毒转导 | Lenti-X浓缩试剂 | Takara | 631232 |
| RNA提取 | miRNeasy小型试剂盒 | Qiagen | 217004 |
| miRNeasy微量试剂盒 | Qiagen | 217084 | |
| 逆转录 | Superscript III第一链cDNA合成试剂盒 | ThermoFisher | 18080055 |
| 微阵列分析 | Mouse 2.0 ST微阵列芯片 | Affymetrix | 902118 |
| RNA-seq建库 | KAPA Hyper-Prep建库试剂盒 | Roche | KK8604 |
| 动物实验 | 基质胶 | Corning | 354234 |
| VetBond组织粘合剂 | 3M | 14695B | |
| Media 199培养基 | Gibco | 11150-067 | |
| 细胞培养 | 人骨骼肌成肌细胞 | Lonza | CC-2580 |
| 通用支原体检测试剂盒 | ATCC | 30-1012K |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠基因型与分组 | aP2-Cre;SmoM2/+;Ptenflox/flox(ASPcKO)等基因型;P12评估肿瘤质量;生存分析样本量ASPWT n=23、ASPcHet n=42、ASPcKO n=18 阅读提示:Methods 'Genetically engineered mouse models'及Fig. 1b、1c图注 |
| 肿瘤组织学与免疫组化 | 固定方式(新鲜冷冻或福尔马林固定石蜡包埋)、抗体种类及抗原修复条件;DESMIN、MYOD1、MYOGENIN、Ki67、PTEN染色 阅读提示:Methods 'Histology and immunostaining'及Supplementary Tables 1–2 |
| 人FN-RMS细胞系与PDX的shRNA敲低 | 细胞系SMS-CTR、RD、Rh18、SJRHB015721_X1、SJRHB011_Y;两种独立shRNA与scramble对照;转导后检测时间(如5天或8天) 阅读提示:Methods 'Molecular cloning, viral transduction, and luciferase assays'及Fig. 6d图注 |
| 原位异种移植 | 每只小鼠注射1×10^6 PDX细胞、100 μL基质胶、腓肠肌注射;SCID/Beige小鼠;肿瘤体积计算公式 阅读提示:Methods 'In vivo tumorigenesis'及Fig. 6g–l图注 |
| ChIP-qPCR检测PAX7结合 | 4 μg PAX7抗体、过夜4°C孵育、Covaris M220超声条件(峰值功率75、占空比15%、每 burst 200循环、7°C、12 min);引物序列 阅读提示:Methods 'Chromatin immunoprecipitation'及Supplementary Table 1 |
| Dbx1启动子荧光素酶实验 | 280 ng pGL4.25-Dbx1启动子、20 ng pCMV6-LacZ、Pax7剂量递增;FuGene转染;荧光素酶与β-半乳糖苷酶检测 阅读提示:Methods 'Molecular cloning, viral transduction, and luciferase assays'及Fig. 5i图注 |
| 流式分选与RNA-seq | tdTomato+/CD31−分选策略;每基因型n=4肿瘤;低输入RNA-seq建库(5 ng RNA、KAPA Hyper-Prep、4个PCR循环) 阅读提示:Methods 'Fluorescence-activated cell sorting'与'RNA isolation and gene expression analysis'及Fig. 8e图注 |