构建Akt亚型依赖的Ba/F3细胞系
建立可用于评估Akt亚型选择性抑制剂的细胞模型。
利用逆转录病毒载体将肉豆蔻酰化的Akt1、Akt2或Akt3转入小鼠Ba/F3细胞,通过western blot确认过表达和下游信号激活。
Cellular model system to dissect the isoform-selectivity of Akt inhibitors.
包含Ba/F3细胞模型、生化激酶活性、蛋白质谱、晶体结构和PANC1细胞验证,具功能与机制验证。
Ba/F3 myr-Akt1细胞系 Ba/F3 myr-Akt2细胞系 Ba/F3 myr-Akt3细胞系 PANC1细胞系(含AKT1或AKT2敲除)
Ba/F3 myr-Akt1、myr-Akt2、myr-Akt3细胞系的接种密度及CTG发光信号与亲本细胞比较 化合物处理浓度范围(如30 mM至0.1 nM)及处理时间(活力检测至第4天,免疫印迹4小时) HTRF生化IC50与细胞CTG EC50的选择性对数比值(Akt1/Akt2、Akt2/Akt3)比较 CETSA中不同抑制剂浓度(如1 μM、2.5 μM、0.3 μM)及温度梯度处理 PANC1细胞中AKT1/AKT2敲除的sgRNA及验证方法(western blot、qRT-PCR)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可用于评估Akt亚型选择性抑制剂的细胞模型。
利用逆转录病毒载体将肉豆蔻酰化的Akt1、Akt2或Akt3转入小鼠Ba/F3细胞,通过western blot确认过表达和下游信号激活。
验证细胞系能否响应Akt抑制并反映亚型选择性。
用borussertib、capivasertib及亚型选择性CAAIs 15a/16b处理细胞,检测细胞活力和Akt信号磷酸化变化。
利用Akt亚型变构口袋的结构差异设计亚型选择性抑制剂。
基于Akt1共晶结构(PDB: 6S9X)构建Akt2/Akt3同源模型,设计并合成23个吡啶核心的共价变构抑制剂。
测定抑制剂对Akt1/Akt2/Akt3的IC50、Ki、kinact及共价修饰。
采用HTRF激酶活性 assay测定IC50,PhosphoSens®连续荧光法测定动力学参数,蛋白质谱检测共价标记。
阐明抑制剂与Akt1的结合模式及共价修饰位点。
将Akt1选择性吡啶衍生物3和6与全长Akt1共结晶,收集X射线衍射数据并解析结构。
比较生化选择性与细胞水平选择性,验证模型系统的适用性。
用23个CAAIs处理Ba/F3 myr-Akt细胞系,测定CTG EC50,计算选择性对数比值并与HTRF IC50对数比值比较。
在更接近天然的癌细胞系中验证抑制剂亚型选择性。
用化合物1、14、20处理PANC1细胞(含AKT1或AKT2敲除),通过免疫印迹和CETSA检测Akt亚型磷酸化及热稳定性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Ba/F3 myr-Akt细胞系构建 | 逆转录病毒载体、嘌呤霉素筛选浓度、IL-3依赖培养条件 阅读提示:Methods中Myr-Akt expression constructs、Generation of the retrovirus、Cell lines小节 |
| 细胞活力检测 | 细胞接种数、化合物浓度范围、检测时间、重复数 阅读提示:Methods中Cell Viability Assay小节;Fig. 1c、1d和Fig. 4图注 |
| 生化HTRF活性检测 | ATP浓度、底物浓度、反应时间、酶浓度 阅读提示:Methods中Activity-based assay小节 |
| 动力学检测 | ATP浓度、酶浓度、反应缓冲液组成、检测频率 阅读提示:Methods中Kinetic Enzyme Assay小节 |
| CETSA | 化合物浓度、处理时间、温度梯度、细胞数 阅读提示:Methods中Cellular thermal shift assay小节;Fig. 5b和Supplementary Fig. 17 |