靶向RAGE的接头蛋白SLP76作为致死性脓毒症的治疗策略

Targeting adaptor protein SLP76 of RAGE as a therapeutic approach for lethal sepsis.

作者信息Zhengzheng Yan, Haihua Luo, Bingyao Xie, Tian Tian, Shan Li, Zhixia Chen, Jinghua Liu, Xuwen Zhao, Liyong Zhang, Yongqiang Deng, Timothy R Billiar, Yong Jiang
PMID33436632
发布时间2021-01-12
DOI10.1038/s41467-020-20577-3

实验完整度

高

包含体外结合、细胞信号、基因敲除小鼠、CLP模型及患者血清样本等多层级证据,并有功能与机制验证。

主要模型

RAW264.7巨噬细胞系 HEK293细胞系 C57BL/6小鼠CLP脓毒症模型 SLP76−/−和AGER−/−小鼠骨髓来源巨噬细胞

重点核对

AGEs-BSA处理剂量100 μg/ml及处理时间15 min(信号检测)或12 h(细胞因子检测) SLP76−/−和AGER−/−小鼠的基因型鉴定及BMDMs分离 CLP术后1 h尾静脉注射TAT-SAM 10 μM,观察7天生存率 Co-IP中anti-HA或anti-Flag beads的使用及500 μg输入蛋白量 患者脓毒症诊断依据Sepsis-3标准,血清AGEs用ELISA检测

摘要

越来越多的证据表明RAGE在脓毒症发病机制中具有重要功能。然而,RAGE在脓毒性休克过程中向下游激酶级联传递信号的机制尚不清楚。在此,我们鉴定出SLP76是RAGE胞质尾在体外和体内的结合伙伴,并证明SLP76通过其无菌α基序(SAM)与RAGE结合以介导下游信号传导。RAGE或SLP76的基因缺陷可减少AGE诱导的p38 MAPK、ERK1/2和IKKα/β磷酸化以及细胞因子释放。通过TAT细胞穿透肽将SAM结构域递送至巨噬细胞可阻断促炎细胞因子的产生。此外,给予TAT-SAM可减轻盲肠结扎穿刺(CLP)小鼠的炎性细胞因子释放和组织损伤,并保护这些小鼠免受脓毒症的致死性。这些发现揭示了SLP76在RAGE介导的促炎信号传导中的重要作用,并为开发靶向SLP76的脓毒症治疗药物提供了线索。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
RAGE在脓毒症中如何将信号传递至下游激酶级联,以及能否靶向该信号通路治疗脓毒症。
核心机制
SLP76通过其SAM结构域与RAGE胞质尾的DCT区域结合,介导AGE/RAGE诱导的p38 MAPK、ERK1/2和IKKα/β磷酸化及促炎因子释放;阻断该结合可抑制信号传导。
主要证据
T7噬菌体展示筛选出SLP76;Co-IP、FRET和SPRi证实SAM-DCT结合;SLP76或AGER基因缺陷及siRNA降低AGE诱导的激酶磷酸化和细胞因子释放;TAT-SAM肽抑制信号并改善CLP小鼠生存率、减少组织损伤。
研究意义
揭示SLP76在RAGE介导促炎信号中的重要作用,为开发靶向SLP76的脓毒症治疗策略提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

T7噬菌体展示筛选RAGE胞质尾结合蛋白

鉴定与RAGE胞质尾相互作用的候选蛋白。

以GST-RAGE(CT)为诱饵,对T7噬菌体人肺cDNA文库进行三轮生物淘选,回收噬菌体并测序鉴定候选结合蛋白。

2

验证SLP76与RAGE胞质尾的相互作用

确认SLP76与RAGE胞质尾在体外和细胞内的结合。

纯化GST-RAGE(CT)和His-SLP76进行体外pull-down;在HEK293细胞中共转染HA-RAGE和Flag-SLP76,用AGEs处理后进行Co-IP;在RAW264.7细胞中检测内源性结合。

3

鉴定RAGE与SLP76的结合结构域

确定介导RAGE-SLP76相互作用的关键结构域。

构建RAGE胞质尾缺失、D-domain缺失和DCT缺失突变体以及SLP76磷酸化位点突变体和SAM缺失突变体,通过Co-IP和FRET检测结合;用合成肽进行SPRi检测亲和力。

4

检测AGE/RAGE对巨噬细胞信号通路的激活

明确AGEs激活的下游激酶及其剂量和时间依赖性。

用AGEs处理RAW264.7细胞,western blot检测p38 MAPK、ERK1/2、JNK和IKKα/β的磷酸化。

5

验证SLP76在RAGE介导信号中的必要性

确定SLP76及其SAM结构域对RAGE下游信号传导的必要性。

在HEK293细胞中共过表达RAGE和SLP76或其突变体,用AGEs刺激后检测激酶磷酸化;用siRNA敲低RAW264.7细胞中AGER或SLP76;分离SLP76−/−和AGER−/−小鼠BMDMs进行验证。

6

评估SLP76在AGE诱导的细胞因子和趋化因子释放中的作用

确定SLP76对RAGE介导的促炎介质产生的影响。

用siRNA敲低RAGE或SLP76,或用SLP76−/−和AGER−/−小鼠BMDMs,经AGEs刺激后,用ELISA或LiquiChip检测细胞因子和趋化因子。

7

测试TAT-SAM肽对RAGE-SLP76相互作用的阻断效果

验证靶向SAM结构域能否抑制RAGE介导的促炎信号。

用TAT-SAM或对照TAT预处理RAW264.7细胞,再用AGEs刺激,检测激酶磷酸化和细胞因子释放。

8

评估TAT-SAM对CLP脓毒症小鼠的治疗效果

在体内验证靶向SLP76-SAM对脓毒症的保护作用。

CLP术后1 h尾静脉注射TAT-SAM或对照,观察7天生存率,检测血清细胞因子及肺、肝组织病理。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
AGEs-BSABiovision2221-10
重组小鼠HMGB1Abcamab181949
抗ERK1/2抗体Cell Signaling Technology9102
抗磷酸化ERK1/2 (Thr202/Tyr204)抗体Cell Signaling Technology9101
抗SAPK/JNK抗体Cell Signaling Technology9252
抗磷酸化SAPK/JNK (Thr183/Tyr185)抗体Cell Signaling Technology9251
抗p38 MAPK抗体Cell Signaling Technology9212
抗磷酸化p38 MAPK (Thr180/Tyr182)抗体Cell Signaling Technology9211
抗磷酸化IKKα/β (Ser176/180)抗体Cell Signaling Technology2679
抗SLP76抗体Cell Signaling Technology4958
抗HA标签 (C29F4)抗体Cell Signaling Technology3724
抗RAGE (N-16)多克隆抗体Santa Cruz Biotechnologysc-8230
抗IKKα/β (H-470)多克隆抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7607
抗Flag标签单克隆抗体SigmaF3165
ANTI-FLAG® M2亲和凝胶SigmaA2220
EZviewTM Red抗HA亲和凝胶SigmaE6779
SLP76 siRNASanta Cruz Biotechnologysc-36502
RAGE siRNASanta Cruz Biotechnologysc-36375
对照siRNASanta Cruz Biotechnologysc-142627
Protein G磁珠Roche11719416001
质粒Plus Midi试剂盒Qiagen12945
巨噬细胞集落刺激因子Miltenyi Biotec130-094-129
AGEs ELISA试剂盒MyBioSourceMBS267540
TNF ELISA试剂盒R&D SystemsMTA00B
IL-6 ELISA试剂盒R&D SystemsM6000B
TRIzol试剂Invitrogen15596026
PrimeScript逆转录预混液TakaraRR036A
细胞裂解液Cell Signaling Technology9803
硝酸纤维素膜GE HealthcareGE10600002
增强化学发光Thermo Fisher Scientific32109
GeneJammer转染试剂Agilent204130
HiPerFect转染试剂Qiagen301705
BCA试剂盒Thermo Fisher Scientific23227
T7Select®人肺cDNA文库Novagen70646-3
TAT肽Bootech BioScience & Technology--
TAT-SAM肽Bootech BioScience & Technology--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与刺激
AGEs处理浓度100 μg/ml,处理时间15 min(信号检测)或12 h(细胞因子检测)
阅读提示:Methods中Reagents and antibodies及Figure legends 1–5
基因敲除小鼠与BMDMs
SLP76−/−和AGER−/−小鼠来源、遗传背景及BMDMs分化条件(M-CSF 20 ng/ml,7天)
阅读提示:Methods中Mice and cell lines和Isolation of BMDMs
CLP模型与TAT-SAM给药
CLP手术细节(18-gauge针穿刺两次)、TAT-SAM剂量10 μM、术后1 h尾静脉注射、生存观察7天
阅读提示:Methods中Animal model of CLP和Survival study,Figure 6d
Co-IP与FRET
转染质粒量、Co-IP输入蛋白500 μg、FRET n=5及校正方法
阅读提示:Methods中Co-IP和FRET measurement
患者样本
脓毒症诊断标准Sepsis-3,患者n=9,健康对照n=3
阅读提示:Methods中Human blood samples,Figure 6a