通过药理学激活自噬在tauopathy神经元中实现tau的持久清除并挽救应激脆弱性

Prolonged tau clearance and stress vulnerability rescue by pharmacological activation of autophagy in tauopathy neurons.

作者信息M Catarina Silva, Ghata A Nandi, Sharon Tentarelli, Ian K Gurrell, Tanguy Jamier, Diane Lucente, Bradford C Dickerson, Dean G Brown, Nicholas J Brandon, Stephen J Haggarty
PMID32591533
发布时间2020-06-26
DOI10.1038/s41467-020-16984-1

实验完整度

高

包含患者iPSC来源神经元多种细胞模型、小分子筛选、功能验证(应激脆弱性)、机制验证(自噬抑制剂和mTOR激活剂)及大鼠CNS渗透性实验

主要模型

患者iPSC来源的tau-A152T神经元 患者iPSC来源的tau-P301L神经元 健康对照iPSC来源的tau-WT神经元 大鼠CNS渗透性模型

重点核对

神经元分化5-8周后处理 mTORi浓度10 μM(雷帕霉素3 μM)处理24 h 应激实验中先用mTORi预处理8 h,再加入30 μM Aβ(1-42)或400 μM NMDA处理16 h 自噬抑制剂(SAR405、3-MA、BAF.A1)预处理6 h后再加mTORi处理18 h 单次24 h处理后洗脱,追踪tau水平和毒性至20天

摘要

Tau蛋白病是与大脑中异常tau蛋白积累相关的神经退行性疾病。患者iPSC来源的神经元细胞模型在体外重现疾病相关表型,可作为药物发现的药理学靶点。在本研究中,我们探索了自噬作为减少人神经元中tau负担的机制,并通过小分子筛选鉴定出mTOR抑制剂OSI-027、AZD2014和AZD8055。这些化合物比雷帕霉素更有效,能强效下调磷酸化和不溶性tau,从而减少tau介导的神经元应激脆弱性。MTORC1抑制和自噬活性与tau清除直接相关。值得注意的是,单次给药后洗脱可导致tau水平和毒性持续降低12天,这与对mTORC1抑制和自噬的持续效应相一致。这一关于mTOR抑制剂调节神经元自噬药效学的新见解可能有助于tau蛋白病疗法的开发。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
药理学激活自噬能否减少tau蛋白病神经元中的tau负担并挽救疾病相关表型?
核心机制
mTOR抑制剂通过抑制mTORC1、激活自噬,促进tau被招募至自噬体和吞噬溶酶体进行降解,从而降低tau水平及毒性。
主要证据
在患者iPSC来源的tau-A152T和tau-P301L神经元中,mTORi降低总tau和磷酸化tau(尤其不溶性tau),该效应可被自噬抑制剂阻断、被mTOR激活剂MHY-1485逆转;亚细胞分级显示tau富集于溶酶体/吞噬溶酶体;单次给药后tau降低持续12-16天,并伴随应激脆弱性改善。
研究意义
支持mTOR抑制剂通过促进自噬介导的tau清除,可能用于tau蛋白病及相关神经退行性疾病的治疗开发。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立患者iPSC来源的tau蛋白病神经元模型并鉴定自噬相关表型

确认tau蛋白病神经元模型是否重现自噬-溶酶体通路异常和tau积累

将患者iPSC来源的NPC分化为神经元,在1-12周分化过程中检测ALP标志物(LC3-II、LAMP1、LAMP2、p62)和tau水平

2

小分子筛选鉴定自噬激活剂

从化合物库中筛选能在人NPC和神经元中激活自噬的化合物

在tau-WT NPC中进行LysoTracker和CYTO-ID荧光囊泡计数的高内涵显微筛选,并在分化5周的神经元中验证

3

验证mTORi在tau蛋白病神经元中降低tau的剂量效应

确定先导mTORi在患者神经元中降低tau的效力和有效浓度

用OSI-027、AZD2014、AZD8055或雷帕霉素处理tau-A152T和tau-P301L神经元,通过Western blot和ELISA检测总tau和P-tauS396

4

检测mTORi对tau溶解性的影响

确定mTORi是否优先降低不溶性tau种类

用Triton-X100和SDS对mTORi处理的A152T和P301L神经元进行蛋白分级分离,Western blot检测各组分tau

5

验证mTORi对应激脆弱性的保护作用

检验mTORi降低tau是否可挽救tau介导的神经元应激脆弱性

mTORi预处理A152T和P301L神经元后,用Aβ(1-42)或NMDA攻击,检测细胞活力

6

验证tau清除依赖于自噬

确定mTORi降低tau是否通过自噬途径

用自噬抑制剂预处理神经元后再加mTORi,检测tau水平;并检测自噬标志物变化

7

证明tau被招募至溶酶体/吞噬溶酶体

确认mTORi促进tau进入自噬体和吞噬溶酶体降解,而非外泌体分泌

mTORi处理神经元8 h后,进行密度梯度超速离心分离亚细胞组分和外泌体,Western blot检测tau和组分标志物

8

确定mTORC1为mTORi在神经元中的主要靶点

验证mTORi通过抑制mTORC1而非mTORC2或AMPK发挥作用

检测mTORC1底物磷酸化、mTORC2底物P-AKTS473和AMPK磷酸化;用mTOR激活剂MHY-1485共处理验证tau清除依赖于mTOR抑制

9

评估单次给药后mTORi对tau和毒性的持久效应

确定单次mTORi处理对tau水平和神经元活力的时间进程影响

mTORi处理24 h后洗脱,在20天内追踪tau水平、神经元活力和自噬标志物

10

评估持久效应期间对急应激的保护作用

确定单次mTORi处理后保护效应是否与tau降低持续时间一致

mTORi处理24 h洗脱后,在不同天数用Aβ(1-42)或NMDA攻击,检测细胞活力

11

分析AZD2014的暴露-活性关系及CNS渗透性

了解AZD2014在神经元中的胞内浓度和游离药物水平,并评估大鼠脑渗透性

用UHPLC-MS-MS测定神经元中AZD2014总浓度和游离药物比例;大鼠持续输注4 h后测定脑和血浆浓度

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
多聚鸟氨酸Sigma--
层粘连蛋白Sigma--
DMEM培养基Gibco--
Ham's F-12培养基Fisher Scientific Corning--
B27添加剂Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
表皮生长因子Sigma--
成纤维细胞生长因子Stemgent--
肝素Sigma--
LysoTracker Red DND-99Life TechnologiesL-7528
CYTO-ID GreenEnzo Life SciencesENZ-51031
Hoechst 33342----
P-Tau PHF1抗体----
Tau K9JA抗体----
MAP2抗体----
AlexaFluor偶联二抗Life Technologies--
Alamar Blue细胞活力试剂Life Technologies--
RIPA裂解液Boston Bio-Products--
蛋白酶抑制剂混合物Roche Complete Mini tablets--
磷酸酶抑制剂混合物Sigma--
Pierce BCA蛋白测定试剂盒ThermoFisher Scientific--
SDS上样缓冲液NEB--
Novex NuPAGE SDS-PAGE凝胶系统Invitrogen--
PVDF膜EMD Millipore--
HRP标记二抗Cell Signaling Technology--
SuperSignal West Pico化学发光底物ThermoFisher--
放射自显影胶片LabScientific by ThermoFischer--
人总Tau ELISA试剂盒Invitrogen--
P-Tau[pS396]人ELISA试剂盒Invitrogen--
Trizol试剂Ambion Life Technologies15596018
Direct-zol RNA小量制备试剂盒ZYMO ResearchR2052
高容量cDNA逆转录试剂盒Applied Biosystems, ThermoFisher Scientific4368814
TaqMan基因表达预混液ThermoFisher Scientific--
β-淀粉样蛋白(1-42)----
N-甲基-D-天冬氨酸----
组织和培养细胞溶酶体富集试剂盒Thermo Scientific--
OptiPrep细胞分离介质----
ExoQuick-TC外泌体沉淀溶液--EXOTC10A-1
AZD2014标准品Selleck--
氯氮平内标Sigma--
快速平衡透析装置Thermo Fisher--
MHY-1485----
SAR405----
3-甲基腺嘌呤----
巴弗洛霉素A1----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小分子筛选
细胞系、接种密度、化合物浓度(1 μM和10 μM)、CQ浓度(0.5 μM)、处理时间(24 h)、生物学重复数(n=5)
阅读提示:Methods 'Microscopy LysoTracker and CYTO-ID small-molecule screen'及Fig. 1图注
mTORi处理tau蛋白病神经元
神经元分化时间(6周)、mTORi浓度(10 μM,雷帕霉素3 μM)、处理时间(24 h)、检测方法(Western blot/ELISA)
阅读提示:Results 'mTORi reduce tau burden in FTD patient-derived neurons'及Fig. 2、Fig. 3图注
应激脆弱性实验
mTORi预处理时间(8 h)、应激物浓度(30 μM Aβ(1-42)或400 μM NMDA)、应激时间(16 h)、活力检测方法(Alamar Blue)
阅读提示:Methods 'Stress vulnerability assays'及Supplementary Fig. 4f
自噬依赖验证
自噬抑制剂种类(SAR405、3-MA、BAF.A1)、预处理时间(6 h)、mTORi处理时间(18 h)、总处理时间(24 h)
阅读提示:Results 'Evidence of autophagy activation in human ex vivo neurons'及Fig. 4i
单次给药持久效应
mTORi浓度(10 μM或100 nM,雷帕霉素3 μM)、处理时间(24 h)、洗脱后追踪时间点(1-20天)、检测指标(tau、P-tauS396、β-III-tubulin、活力)
阅读提示:Results 'mTORi have a prolonged effect on tau levels and toxicity'及Fig. 7a
亚细胞分级分离
处理时间(8 h)、mTORi浓度(10 μM)、密度梯度超速离心条件、组分标志物
阅读提示:Methods 'Sub-cellular fractionation of lysosomes'及Fig. 5图注
mTORC1靶点验证
mTORi浓度范围(0.1 nM–50 μM)、处理时间(24 h)、MHY-1485预处理浓度(1 μM、2.5 μM)和时间(6 h)
阅读提示:Results 'Tau clearance is a downstream effect of mTOR inhibition'及Fig. 6图注
大鼠CNS渗透性实验
大鼠品系(Han Wistar雄性)、周龄(8-10周)、体重(280-300 g)、给药剂量(2 μmol/kg/h)、输注时间(4 h)、n=3
阅读提示:Methods 'AZD2014 CNS penetration study in rat'