基于CRISPR-Cas9的诱变常引起靶向mRNA的错误调控

CRISPR-Cas9-based mutagenesis frequently provokes on-target mRNA misregulation.

作者信息Rubina Tuladhar, Yunku Yeu, John Tyler Piazza, Zhen Tan, Jean Rene Clemenceau, Xiaofeng Wu, Quinn Barrett, Jeremiah Herbert, David H Mathews, James Kim, Tae Hyun Hwang, Lawrence Lum
PMID31492834
发布时间2019-09-06
DOI10.1038/s41467-019-12028-5

实验完整度

高

使用多种细胞系进行 Western blot、RT-PCR、测序及功能实验,包含机制验证和功能验证。

主要模型

HAP1细胞系(商业获取的CRISPR编辑克隆) MIA PaCa-2细胞系(CRISPR编辑克隆) RMS13细胞系(CRISPR编辑克隆) HELA细胞系(用于cDNA表达)

重点核对

细胞系来源与编辑:HAP1购自Horizon Discovery,MIA PaCa-2、RMS13、HELA购自ATCC CRISPR编辑克隆的INDEL鉴定:基因组DNA测序确认靶向突变 mRNA剪接变化检测:RT-PCR及cDNA测序 蛋白质表达检测:Western blot使用两种针对不同表位的抗体 NMD抑制实验:环己酰亚胺(CHX)处理浓度与时间未明确说明

摘要

通过非同源末端连接(NHEJ)途径引入插入缺失(INDEL)是CRISPR-Cas9定向基因组编辑的机制基础。利用CRISPR-Cas9进行选择性基因消融是通过移码诱导性INDEL引入提前终止密码子(PTC),从而引发突变mRNA的无义介导降解(NMD)来实现的。在此,通过检查 presumed 基因敲除的细胞系面板中CRISPR靶向基因的mRNA和蛋白质产物,我们在约50%的细胞系中检测到外源mRNA或蛋白质的产生。我们证明这些异常蛋白质产物源于引入了促进内部核糖体进入、将假mRNA(带有PTC的选择性剪接mRNA)转化为蛋白质编码分子、或通过破坏外显子剪接增强子(ESE)诱导外显子跳跃的INDEL。我们的结果揭示了基于INDEL的诱变在操纵基因表达结果方面面临的挑战,以及有助于减轻其对预期基因组编辑结果影响的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CRISPR-Cas9引入的移码INDEL在靶基因中是否总能导致预期的基因敲除,还是会产生意外的mRNA和蛋白质产物?
核心机制
INDEL可促进内部核糖体进入、将假mRNA转化为蛋白质编码mRNA、或破坏ESE导致外显子跳跃,从而产生异常蛋白质;ATI可抑制NMD。
主要证据
在约50%的CRISPR编辑细胞系中检测到新mRNA或蛋白质;TOP1、LKB1、SUFU、LRP5等基因的编辑克隆中通过Western blot、RT-PCR和测序验证了外显子跳跃、ATI和假mRNA翻译。
研究意义
揭示了基于INDEL的诱变在操纵基因表达结果方面的挑战,并提出了CRISPinatoR工具等减轻影响的策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

商业CRISPR编辑细胞系面板分析

检测 presumed 基因敲除细胞系中是否产生意外的mRNA或蛋白质

对来自Horizon Discovery的HAP1 CRISPR编辑克隆进行Western blot(使用两种抗体)和RT-PCR分析,并通过cDNA测序鉴定新剪接变体。

2

TOP1突变克隆的功能验证

验证截短的TOP1蛋白是否保留催化活性及亚细胞定位

对TOP1 ΔE6克隆进行核质分离和Western blot,并使用酶学实验检测超螺旋DNA松弛活性。

3

LKB1基因编辑克隆的机制分析

探究LKB1 INDEL如何导致ATI和假mRNA翻译

对HAP1和MIA PaCa-2 LKB1编辑克隆进行Western blot、RT-PCR、cDNA克隆和测序,并在HELA细胞中表达携带INDEL的LKB1 cDNA。

4

SUFU外显子跳跃的ESE机制验证

验证INDEL破坏ESE导致外显子跳跃

在HAP1和RMS13细胞中利用sgRNA靶向SUFU外显子,通过Western blot和RT-PCR分析外显子跳跃。

5

LRP5外显子对称性对基因敲除效果的影响

测试CRISPinatoR设计的sgRNA靶向对称/不对称外显子的效果

在HAP1细胞中编辑LRP5外显子2(不对称)和外显子16(对称),通过Western blot、RT-PCR和WNT报告基因实验分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
嘌呤霉素Fisher ScientificICN10055225
NE-PER核质提取试剂ThermoFisher78833
蛋白酶抑制剂混合物SigmaS8820
BioRad Criterion TGX预制胶BioRad--
AXIN1抗体Cell Signaling Technology2087
AXIN1抗体Cell Signaling Technology2074
BAP1抗体Cell Signaling Technology13271
BCL2L2抗体Cell Signaling Technology2724
LRP6抗体Cell Signaling Technology2560
PTEN抗体Cell Signaling Technology9552
RICTOR抗体Cell Signaling Technology9476
SIRT1抗体Cell Signaling Technology2493
TBK1抗体Cell Signaling Technology3504
TLE3抗体Cell Signaling Technology4681
LKB1抗体Cell Signaling Technology3050
SUFU抗体Cell Signaling Technology2520
LRP5抗体Cell Signaling Technology5731
BAP1抗体Bethyl LaboratoriesA302-243A-T
RICTOR抗体Bethyl LaboratoriesA300-459A
SIRT1抗体Bethyl LaboratoriesA300-688A
TOP1抗体Bethyl LaboratoriesA302-589A
TOP1抗体Bethyl Laboratories302-590A
VPS35抗体Bethyl LaboratoriesA304-727A
TBK1抗体Abcam40676
PPM1A抗体Abcam14824
SUFU抗体Abcam52913
LRP6抗体Santa Cruz Biotechnologiessc-25317
TLE3抗体Santa Cruz Biotechnologiessc-9124
LKB1抗体Santa Cruz Biotechnologiessc-374334
LRP5抗体Santa Cruz Biotechnologiessc-390267
BCL2L2抗体LS BioScienceLS-C382259-100
PPM1A抗体LS BioScienceLS-C169090-100
CTNNB1抗体Sigma-AldrichC2206
PTEN抗体Invitrogen44-1064
CTNNB1抗体BD Biosciences610153
VPS35抗体GenetexGTC108058
Effectene转染试剂Qiagen--
基因组DNA迷你试剂盒Bioland Scientific--
GoTaq Green预混液PromegaM7122
QIA Quick PCR纯化试剂盒Qiagen--
TOPO TA克隆试剂盒ThermoFisher Scientific--
RNeasy迷你试剂盒Qiagen--
ProtoScript第一链cDNA合成试剂盒Promega--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
商业CRISPR编辑细胞系分析
细胞系来源(HAP1,Horizon Discovery)、克隆编号、INDEL类型(补充表1)
阅读提示:Methods 'Cell lines and reagents';Supplementary Table 1
Western blot检测
抗体品牌、货号、稀释度(如1:1000)、细胞裂解液配方(PBS/1% NP40+蛋白酶抑制剂)
阅读提示:Methods 'Western blot analysis';Supplementary Table 2
RT-PCR及cDNA测序
引物序列(补充表3)、PCR条件、测序方法
阅读提示:Methods 'RNA extraction and analysis';Supplementary Table 3
CHX处理实验
CHX浓度、处理时间(文中未明确说明)
阅读提示:Results 'ATI suppresses NMD';Supplementary Fig. 7
LRP5 WNT报告基因实验
WNT3A条件培养基制备、抑制剂浓度(WNT974、IWR1)、报告基因检测方法、重复数(三次独立实验,每次三重复)
阅读提示:Figure 5 legend;Results 'Targeting RNA-regulatory elements for gene knockout agendas'