建立休眠与增殖3D培养模型并检测自噬水平
验证休眠BC细胞是否激活自噬。
将D2.0 R细胞接种于BME(休眠)或BME+COL1(增殖)基质,通过免疫荧光检测LC3和LAMP1表达,并用mCherry-EGFP-LC3报告基因监测自噬流。
Autophagy promotes the survival of dormant breast cancer cells and metastatic tumour recurrence.
包含小鼠和人源细胞系3D体外模型、小鼠体内转移模型、转录组分析以及ATG7/BECN1基因敲低功能验证。
小鼠乳腺癌D2.0 R细胞系3D BME培养 小鼠乳腺癌D2A1细胞系3D BME培养 人乳腺癌MCF7和MDA-MB-231细胞系3D BME培养 CD1nu/nu裸鼠尾静脉注射转移模型
HCQ浓度50 μM用于体外处理,剂量反应分析见Supplementary Fig. 3a HCQ体内给药剂量50 mg/kg,腹腔注射,每周5天,持续3周 D2.0 R细胞尾静脉注射1×10^6个细胞/只,纤维化诱导后21天注射 D2A1-GFP细胞尾静脉注射1×10^6个细胞/只 腺病毒滴度5×10^8 PFU/只,鼻内滴注诱导肺纤维化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证休眠BC细胞是否激活自噬。
将D2.0 R细胞接种于BME(休眠)或BME+COL1(增殖)基质,通过免疫荧光检测LC3和LAMP1表达,并用mCherry-EGFP-LC3报告基因监测自噬流。
测试自噬抑制是否降低休眠细胞活力。
在D2.0 R、D2A1、MCF7和MDA-MB-231细胞3D培养中,于接种后立即或延迟加入HCQ、3-MA或Bafilomycin,通过细胞毒性、增殖和BrdU掺入实验评估细胞存活。
在体内验证抑制自噬是否减少休眠细胞转移爆发。
使用D2.0 R TGFβ纤维化肺休眠-增殖转换模型和D2A1尾静脉注射模型,给予HCQ或对照,通过荧光成像定量肺转移负荷。
探索休眠BC细胞依赖自噬的分子机制。
对D2.0 R细胞在BME第1天和第5天以及BME+COL1第5天的转录组进行RNAseq和通路分析。
确认ATG7和BECN1对休眠细胞转移能力的影响。
用shRNA敲低D2.0 R细胞中ATG7或BECN1,尾静脉注射小鼠,评估肺转移负荷。
验证自噬抑制是否通过线粒体ROS积累引发凋亡。
在D2.0 R细胞3D培养中,用HCQ抑制自噬,检测线粒体标记、ROS、膜电位、cCASP3和γH2Ax,并用MitoTEMPO挽救实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | 11965 |
| Cultrex基底膜提取物 | Trevigen | 3432-005-01 | |
| 低糖DMEM培养基 | Gibco | 11885 | |
| 药物处理 | 羟氯喹 | Sigma-Aldrich | -- |
| 3-甲基腺嘌呤 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 巴弗洛霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| MitoTEMPO | -- | -- | |
| 细胞培养 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Life Technologies | -- |
| Xtreme Gene 9转染试剂 | Roche | -- | |
| 细胞毒性检测 | Cytotox-Glo细胞毒性实验 | Promega | -- |
| 增殖检测 | CellTiter 96 AQueous One Solution细胞增殖实验 | Promega | -- |
| BrdU细胞增殖实验试剂盒 | Cell Signaling Technology | 6813 | |
| Western blot | NuPAGE 4–12% Bis–Tris蛋白凝胶 | Invitrogen | -- |
| 抗ATG7抗体 | Cell Signaling Technology | 8558 | |
| 抗p62抗体 | Cell Signaling Technology | 5114 | |
| 抗BECN1抗体 | Cell Signaling Technology | 3495 | |
| 抗LC3抗体 | Cell Signaling Technology | 12741 | |
| 抗CASP3抗体 | Cell Signaling Technology | 9662 | |
| 抗cleaved CASP3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| 抗γH2Ax (p139S)抗体 | Cell Signaling Technology | 2577 | |
| 抗PINK1抗体 | Abcam | ab75487 | |
| 抗MTOC-1抗体 | Abcam | ab14705 | |
| 抗TOM20抗体 | Abcam | ab56783 | |
| 抗亲环素B抗体 | Thermo Scientific | PA1-027A | |
| 免疫荧光 | 抗LAMP1抗体 | Novus Biologicals | NBP2-25154 |
| 抗Ki67抗体 | Cell Signaling Technology | 9449 | |
| Alexa fluor 488山羊抗兔二抗 | Invitrogen | -- | |
| Alexa fluor 568山羊抗小鼠二抗 | Invitrogen | -- | |
| 活细胞成像 | MitoTracker Red CMXRos | Invitrogen | M7512 |
| Hoechst 33342 | Invitrogen | R37605 | |
| 流式细胞术 | MitoTracker Green FM | Invitrogen | M7514 |
| MitoSox | Invitrogen | M36008 | |
| TMRM | Invitrogen | T-668 | |
| Pacific blue | Invitrogen | -- | |
| RNA提取 | RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| RNA测序 | NEBNext Ultra定向RNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- |
| Illumina HiSeq 2500测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 3D体外休眠模型建立 | BME浓度(2%)、COL1终浓度(2 mg/ml)、细胞接种密度(1.5×10^4 cells/ml)、培养基(DMEM低糖+2% FBS) 阅读提示:Methods 'Cell lines and cell culture'部分 |
| HCQ体外处理 | HCQ浓度(50 μM)、处理时间点(第0天、第5天或第7天)、处理持续时间 阅读提示:Results 'Autophagy inhibition decreases viability of dormant cells'及Figure 2 legend |
| 体内转移模型 | 小鼠品系(CD1nu/nu,雌性8周龄)、腺病毒滴度(5×10^8 PFU/只)、细胞注射数量(1×10^6个/只)、HCQ剂量(50 mg/kg)和给药方案(每周5天,持续3周) 阅读提示:Methods 'Animal studies'部分 |
| shRNA敲低实验 | shRNA克隆ID(ATG7: TRCN0000092163等;BECN1: TRCN0000087288等)、敲低效率验证方法 阅读提示:Methods 'Knockdown of ATG7 and BECN1'部分及Supplementary Fig. 8a |
| MitoTEMPO挽救实验 | MitoTEMPO浓度(20 μM)、预处理时间(5天)、HCQ处理时间(24小时) 阅读提示:Methods 'Cell lines and cell culture'及Figure 7d legend |