自噬促进休眠乳腺癌细胞的存活及转移性肿瘤复发

Autophagy promotes the survival of dormant breast cancer cells and metastatic tumour recurrence.

作者信息Laura Vera-Ramirez, Suman K Vodnala, Ryan Nini, Kent W Hunter, Jeffrey E Green
PMID29789598
发布时间2018-05-22
DOI10.1038/s41467-018-04070-6

实验完整度

高

包含小鼠和人源细胞系3D体外模型、小鼠体内转移模型、转录组分析以及ATG7/BECN1基因敲低功能验证。

主要模型

小鼠乳腺癌D2.0 R细胞系3D BME培养 小鼠乳腺癌D2A1细胞系3D BME培养 人乳腺癌MCF7和MDA-MB-231细胞系3D BME培养 CD1nu/nu裸鼠尾静脉注射转移模型

重点核对

HCQ浓度50 μM用于体外处理,剂量反应分析见Supplementary Fig. 3a HCQ体内给药剂量50 mg/kg,腹腔注射,每周5天,持续3周 D2.0 R细胞尾静脉注射1×10^6个细胞/只,纤维化诱导后21天注射 D2A1-GFP细胞尾静脉注射1×10^6个细胞/只 腺病毒滴度5×10^8 PFU/只,鼻内滴注诱导肺纤维化

摘要

癌症在初步诊断和治疗后的复发是乳腺癌(BC)死亡的主要原因,其源于休眠肿瘤细胞的转移性爆发。肿瘤微环境的改变可触发休眠细胞中的信号通路导致其增殖。然而,播散的休眠BC细胞初始及长期存活所涉及的过程仍 largely 未知。本文中我们显示自噬是播散的休眠BC细胞存活的关键机制。在休眠BC细胞中药理或遗传抑制自噬导致在小鼠和人3D体外和体内临床前休眠模型中细胞存活和转移负荷显著降低。体内实验确定自噬基因自噬相关7(ATG7)对自噬激活至关重要。机制上,抑制休眠BC细胞中的自噬流导致受损线粒体和活性氧(ROS)的积累,导致细胞凋亡。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
休眠乳腺癌细胞长期存活及转移复发的机制是什么?
核心机制
休眠BC细胞依赖自噬清除受损线粒体,维持氧化还原稳态;抑制自噬流导致受损线粒体和ROS积累,引发细胞凋亡,该过程依赖ATG7而非BECN1。
主要证据
在小鼠和人3D体外模型及小鼠体内转移模型中,药理(HCQ)或遗传(shATG7)抑制自噬显著降低休眠细胞存活和转移负荷;转录组分析显示休眠细胞中自噬通路上调;HCQ处理导致线粒体标记积累、ROS增加和cCASP3升高,MitoTEMPO可挽救细胞死亡。
研究意义
抑制自噬可能作为消除休眠肿瘤细胞、预防乳腺癌复发的潜在策略,或作为原发肿瘤治疗或辅助治疗的一部分。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立休眠与增殖3D培养模型并检测自噬水平

验证休眠BC细胞是否激活自噬。

将D2.0 R细胞接种于BME(休眠)或BME+COL1(增殖)基质,通过免疫荧光检测LC3和LAMP1表达,并用mCherry-EGFP-LC3报告基因监测自噬流。

2

药理学抑制自噬对休眠细胞存活的影响

测试自噬抑制是否降低休眠细胞活力。

在D2.0 R、D2A1、MCF7和MDA-MB-231细胞3D培养中,于接种后立即或延迟加入HCQ、3-MA或Bafilomycin,通过细胞毒性、增殖和BrdU掺入实验评估细胞存活。

3

体内验证自噬抑制对转移负荷的影响

在体内验证抑制自噬是否减少休眠细胞转移爆发。

使用D2.0 R TGFβ纤维化肺休眠-增殖转换模型和D2A1尾静脉注射模型,给予HCQ或对照,通过荧光成像定量肺转移负荷。

4

转录组分析揭示休眠细胞自噬通路激活

探索休眠BC细胞依赖自噬的分子机制。

对D2.0 R细胞在BME第1天和第5天以及BME+COL1第5天的转录组进行RNAseq和通路分析。

5

遗传学验证ATG7和BECN1在休眠细胞存活中的作用

确认ATG7和BECN1对休眠细胞转移能力的影响。

用shRNA敲低D2.0 R细胞中ATG7或BECN1,尾静脉注射小鼠,评估肺转移负荷。

6

机制验证:自噬抑制导致线粒体损伤和凋亡

验证自噬抑制是否通过线粒体ROS积累引发凋亡。

在D2.0 R细胞3D培养中,用HCQ抑制自噬,检测线粒体标记、ROS、膜电位、cCASP3和γH2Ax,并用MitoTEMPO挽救实验。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖DMEM培养基Gibco11965
Cultrex基底膜提取物Trevigen3432-005-01
低糖DMEM培养基Gibco11885
羟氯喹Sigma-Aldrich--
3-甲基腺嘌呤Sigma-Aldrich--
巴弗洛霉素Sigma-Aldrich--
MitoTEMPO----
Lipofectamine 3000转染试剂Life Technologies--
Xtreme Gene 9转染试剂Roche--
Cytotox-Glo细胞毒性实验Promega--
CellTiter 96 AQueous One Solution细胞增殖实验Promega--
BrdU细胞增殖实验试剂盒Cell Signaling Technology6813
NuPAGE 4–12% Bis–Tris蛋白凝胶Invitrogen--
抗ATG7抗体Cell Signaling Technology8558
抗p62抗体Cell Signaling Technology5114
抗BECN1抗体Cell Signaling Technology3495
抗LC3抗体Cell Signaling Technology12741
抗CASP3抗体Cell Signaling Technology9662
抗cleaved CASP3抗体Cell Signaling Technology9661
抗γH2Ax (p139S)抗体Cell Signaling Technology2577
抗PINK1抗体Abcamab75487
抗MTOC-1抗体Abcamab14705
抗TOM20抗体Abcamab56783
抗亲环素B抗体Thermo ScientificPA1-027A
抗LAMP1抗体Novus BiologicalsNBP2-25154
抗Ki67抗体Cell Signaling Technology9449
Alexa fluor 488山羊抗兔二抗Invitrogen--
Alexa fluor 568山羊抗小鼠二抗Invitrogen--
MitoTracker Red CMXRosInvitrogenM7512
Hoechst 33342InvitrogenR37605
MitoTracker Green FMInvitrogenM7514
MitoSoxInvitrogenM36008
TMRMInvitrogenT-668
Pacific blueInvitrogen--
RNeasy试剂盒Qiagen--
NEBNext Ultra定向RNA文库制备试剂盒Illumina--
Illumina HiSeq 2500测序仪Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
3D体外休眠模型建立
BME浓度(2%)、COL1终浓度(2 mg/ml)、细胞接种密度(1.5×10^4 cells/ml)、培养基(DMEM低糖+2% FBS)
阅读提示:Methods 'Cell lines and cell culture'部分
HCQ体外处理
HCQ浓度(50 μM)、处理时间点(第0天、第5天或第7天)、处理持续时间
阅读提示:Results 'Autophagy inhibition decreases viability of dormant cells'及Figure 2 legend
体内转移模型
小鼠品系(CD1nu/nu,雌性8周龄)、腺病毒滴度(5×10^8 PFU/只)、细胞注射数量(1×10^6个/只)、HCQ剂量(50 mg/kg)和给药方案(每周5天,持续3周)
阅读提示:Methods 'Animal studies'部分
shRNA敲低实验
shRNA克隆ID(ATG7: TRCN0000092163等;BECN1: TRCN0000087288等)、敲低效率验证方法
阅读提示:Methods 'Knockdown of ATG7 and BECN1'部分及Supplementary Fig. 8a
MitoTEMPO挽救实验
MitoTEMPO浓度(20 μM)、预处理时间(5天)、HCQ处理时间(24小时)
阅读提示:Methods 'Cell lines and cell culture'及Figure 7d legend