绝经后射血分数保留心力衰竭大鼠模型中的骨骼肌肌病

Skeletal myopathy in a rat model of postmenopausal heart failure with preserved ejection fraction

作者信息Rachel C Kelley, Lauren Betancourt, Andrea M Noriega, Suzanne C Brinson, Nuria Curbelo-Bermudez, Dongwoo Hahn, Ravi A Kumar, Eliza Balazic, Derek R Muscato, Terence E Ryan, Robbert J van der Pijl, Shengyi Shen, Coen A C Ottenheijm, Leonardo F Ferreira
PMID34792407
发布时间2022-01-01
DOI10.1152/japplphysiol.00170.2021

实验完整度

高

包含体内模型建立、功能验证(收缩功能、运动耐量)、机制验证(线粒体呼吸、ROS、谷胱甘肽)及多层级证据(组织学、免疫印迹)。

主要模型

去卵巢自发性高血压大鼠(SHR)HFpEF模型 Wistar-Kyoto(WKY)对照大鼠 SHR对照大鼠(长期队列) 骨骼肌(FDB、比目鱼肌、跖肌、胫骨前肌、膈肌)

重点核对

雌性SHR大鼠接受双侧卵巢切除及高脂高蔗糖饮食(Research Diets D12451) 对照组为假手术WKY大鼠(瘦素饮食D12450K)或假手术SHR大鼠 术后16周或28周进行终端实验 力测量使用Dual-Mode肌力系统(Aurora Scientific)及特定刺激频率(FDB:1 Hz和150 Hz;比目鱼肌:1-150 Hz) 线粒体呼吸测量使用O2K氧压计(Oroboros)及底物(苹果酸、丙酮酸、谷氨酸、ADP、琥珀酸)

摘要

射血分数保留的心力衰竭(HFpEF)约占所有心力衰竭患者的50%,且常影响绝经后女性。HFpEF具有表型特异性,骨骼肌肌病对其发展和进展至关重要。然而,目前大多数HFpEF临床前模型未涉及绝经后表型。我们试图推进一种绝经后HFpEF啮齿动物模型,并检查其中的骨骼肌异常。雌性、去卵巢的自发性高血压大鼠(SHRs)被喂以高脂肪、高蔗糖饮食以诱导HFpEF。对照组为喂以瘦素饮食的雌性假手术Wistar-Kyoto大鼠。在一个补充的、更长期的队列中,对照组为喂以瘦素饮食的雌性假手术SHRs,以评估模型中品系差异的影响。我们的模型再现了HFpEF的关键特征,包括体重增加、葡萄糖不耐受、高血压、心脏肥大、舒张功能障碍、运动不耐受和血浆细胞因子升高。在肢体骨骼肌中,HFpEF使比力降低15%–30%(P < 0.05),最大线粒体呼吸降低40%–55%(P < 0.05),氧化型谷胱甘肽增加约两倍(P < 0.05),并倾向于增加线粒体H2O2释放(P = 0.10)。在我们的短期队列中,肌纤维横截面积、线粒体含量标志物和毛细血管指数在对照和HFpEF之间没有差异。总的来说,我们的绝经后HFpEF临床前模型再现了该疾病的几个关键特征。这个新模型揭示了收缩和线粒体功能障碍以及氧化还原失衡,这些可能是绝经后HFpEF患者异常代谢、运动不耐受和生活质量下降的潜在促成因素。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
开发一种模拟绝经后HFpEF表型的啮齿动物模型,并检查其骨骼肌肌病的特征。
核心机制
骨骼肌肌病包括收缩功能障碍、线粒体功能障碍和氧化还原失衡,而非肌纤维萎缩或毛细血管稀疏。
主要证据
在该模型中,HFpEF大鼠与对照相比,肢体肌肉比力降低(FDB和比目鱼肌),线粒体最大呼吸降低,氧化型谷胱甘肽增加;肌纤维横截面积、线粒体含量标志物和毛细血管指数无差异。
研究意义
该模型可用于研究绝经后HFpEF骨骼肌异常的机制,并测试针对主要受影响人群(老年女性)的治疗干预。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立绝经后HFpEF大鼠模型

通过高血压、雌激素缺乏和饮食诱导的代谢异常,模拟绝经后HFpEF的多因素病因。

雌性SHR大鼠接受双侧卵巢切除术或假手术,并喂以高脂高蔗糖饮食或瘦素饮食。

2

验证模型的心血管和代谢特征

确认模型是否重现HFpEF的核心表型(高血压、肥胖、葡萄糖不耐受、心脏结构异常)。

测量体重、血糖、血压(尾袖法)、超声心动图(M型、脉冲多普勒)、血浆细胞因子(Luminex)。

3

评估骨骼肌收缩功能

确定HFpEF是否导致肢体和呼吸肌收缩功能障碍。

在FDB、膈肌和比目鱼肌上进行等长收缩测量,包括单收缩、强直收缩和力-频率关系。

4

评估骨骼肌形态和纤维类型

检查HFpEF是否引起肌纤维萎缩或纤维类型转变。

对TA、比目鱼肌和膈肌进行组织学染色,定量肌纤维横截面积和肌球蛋白重链亚型。

5

评估骨骼肌毛细血管化

确定HFpEF是否导致毛细血管稀疏。

使用凝集素染色在比目鱼肌中评估毛细血管密度和指数。

6

评估线粒体呼吸和ROS释放

确定HFpEF是否影响线粒体功能并导致氧化应激。

在透化肌纤维中测量线粒体呼吸(高分辨率呼吸测定)和H2O2释放(Amplex Ultra Red)。

7

评估氧化还原平衡和抗氧化酶

检查骨骼肌的氧化还原状态和抗氧化酶表达。

通过HPLC测定植物肌中GSH/GSSG,通过免疫印迹测定过氧化氢酶、SOD1、SOD2的表达。

8

评估全身炎症和运动耐量

确定HFpEF是否导致全身炎症和运动能力下降。

在长期队列中测量血浆细胞因子并进行跑步运动至力竭测试。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高脂高蔗糖饲料(D12451)Research DietsD12451
瘦素饲料(D12450K)Research DietsD12450K
d-葡萄糖----
FreeStyle Lite血糖仪Abbott Laboratories--
CODA无创小鼠/大鼠血压监测仪Kent Scientific--
Aplio超声系统Toshiba America Medical Systems--
ImageJ----
VetScan血液生化分析仪Abaxis--
Luminex Magpix多重分析仪----
定制大鼠多重检测面板Millipore--
Masson三色染色试剂盒Newcomer's Supply9179B
Permount封片剂Fisher--
Axio Observer倒置荧光显微镜Carl Zeiss Microscopy--
Axio ERc 5s彩色相机Carl Zeiss Microscopy--
Zen Pro软件Carl Zeiss Microscopy--
双模肌肉杠杆系统(300C-LR)Aurora Scientific300C-LR
双模肌肉杠杆系统(305B)Aurora Scientific305B
双相高功率刺激器(701C)Aurora Scientific701C
高功率双相刺激器(701B)Aurora Scientific701B
低温恒温器(CM3050S)LeicaCM3050S
小麦胚芽凝集素(WGA)Texas RedMolecular Probes--
MyHC I抗体(A4.840)Developmental Studies Hybridoma BankA4.840
MyHC IIa抗体(SC-71)Developmental Studies Hybridoma BankSC-71
山羊抗小鼠IgM Alexa 350Invitrogen--
山羊抗小鼠IgG Alexa 488Invitrogen--
Griffonia simplicifolia I异凝集素B4Thermo Fisher--
O2K氧压计Oroboros--
Amplex Ultra RedLife Technologies--
Fluorolog-3荧光分光光度计HORIBA Jobin Yvon--
Bullet blender(BBY24M)Next AdvanceBBY24M
Criterion TGX Stain-Free蛋白凝胶Bio-Rad--
Gel Doc EZ成像系统Bio-Rad--
Odyssey红外成像系统LI-COR--
OXPHOS抗体混合物(ab110413)Abcamab110413
柠檬酸合酶抗体(ab96600)Abcamab96600
过氧化氢酶抗体(GTX110704)GeneTexGTX110704
SOD1抗体(SC11407)Santa CruzSC11407
SOD2抗体(SC30080)Santa CruzSC30080
IR Dye二抗LI-COR--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
大鼠品系(SHR、WKY)、年龄(5周龄)、饮食(D12451或D12450K)、手术(双侧卵巢切除或假手术)、术后时间(16周或28周)
阅读提示:Methods: Animals, Diet, and Surgical Interventions
葡萄糖耐量测试
禁食时间(6小时)、葡萄糖剂量(2 g/kg)、给药途径(腹腔注射)、采血时间点(15, 30, 60, 90, 120分钟)
阅读提示:Methods: Glucose Tolerance Testing
血压测量
测量时间(0800-1100)、至少10次读取平均值
阅读提示:Methods: Blood Pressure
超声心动图
异氟烷麻醉水平(维持心率约400次/分),测量指标(LVIDd, LVIDs, E, DT, MCOT, ET)
阅读提示:Methods: Echocardiography
肌肉收缩功能测量
肌肉类型(FDB、膈肌、比目鱼肌)、温度(FDB 32°C, 膈肌37°C, 比目鱼肌25°C)、刺激参数(频率、电流、脉冲宽度)、力归一化方法
阅读提示:Methods: Skeletal Muscle Contractile Function
线粒体呼吸测量
透化方法(saponin浓度30 µg/mL,30分钟)、底物序列(malate, pyruvate, glutamate, ADP, succinate)、温度(37°C)、标准化(pmol O2/s/mg)
阅读提示:Methods: Mitochondrial Respiration and Reactive Oxygen Species Emission
ROS释放测量
Amplex Ultra Red浓度(10 µM)、blebbistatin(25 µM)、底物(10 mM succinate)、温度(37°C)、标准化(pmol H2O2/min/mg)
阅读提示:Methods: Mitochondrial Respiration and Reactive Oxygen Species Emission
谷胱甘肽测定
肌肉(plantaris)、组织重量(5-10 mg)、匀浆液(5%高氯酸,0.2 M硼酸,10 µM γ-谷氨酰谷氨酸)、离心条件(16,000 g, 20分钟, 4°C)
阅读提示:Methods: Glutathione Redox Balance
免疫印迹
抗体(OXPHOS cocktail、citrate synthase、catalase、SOD1、SOD2)、稀释度(1:1000)、归一化(总蛋白)
阅读提示:Methods: Gel Electrophoresis and Immunoblotting
运动力竭测试
适应期(3天)、测试时间(16周和28周术后)、速度梯度、判断标准(右翻正反射消失)、盲法
阅读提示:Methods: Exercise Time to Exhaustion Testing