受调控的HSPG信号指导心外膜行为以支持心脏形成

Regulated HSPG Signaling Directs Epicardial Behavior to Support Cardiac Formation

作者信息Andia N Redpath, Irina-Elena Lupu, Louis Haffreingue, Quang M Dang, Ian R McCracken, Tamara Carsana, Toin H van Kuppevelt, Joaquim Miguel Vieira, Nicola Smart
PMID42639658
期刊Circ Res
发布时间2026-09-25
DOI10.1161/CIRCRESAHA.125.327330

实验完整度

高

包含单细胞RNA-seq、谱系追踪、条件敲除小鼠、CUT&RUN-seq、荧光素酶报告及体外功能验证

主要模型

MEC1小鼠胚胎心外膜细胞系 Wt1敲除小鼠胚胎 Sulf1条件性诱导敲除小鼠 Wt1CreERT2;Rosa26tdTomato谱系追踪小鼠

重点核对

Wt1敲除胚胎在E11.5-E12.5心外膜中Sulf1表达显著下调,Sulf2上调 Sulf1 iKO小鼠在E11.5心室心外膜覆盖率显著降低46% MEC1细胞中Wt1 siRNA敲低48小时导致Sulf1表达降低69% CUT&RUN-seq鉴定WT1结合Sulf1内含子1增强子E1 Sulf1敲低增强TGF-β1诱导的SMAD2磷酸化

摘要

背景:控制心脏细胞行为的通路共同依赖于硫酸乙酰肝素蛋白聚糖(HSPG),其在细胞外位置严格调控信号传导。这种信号对心脏发育至关重要,然而HSPG在形成中的心脏中如何被调控尚不清楚。心外膜是HSPG依赖性信号和细胞祖细胞的丰富来源。我们假设细胞外硫酸乙酰肝素修饰酶,6-O-内硫酸酯酶,协调祖细胞行为以支持心脏发生。方法:我们使用单细胞RNA测序、显微镜和基于流式细胞术的单分子RNA原位杂交(ISH)系统分析胚胎小鼠心脏中的6-O-内硫酸酯酶和靶HSPG。随后,我们利用敲除和敲低模型鉴定了基因关联以及主要心外膜6-O-内硫酸酯酶同工型Sulfatase(Sulf)1的作用。使用转座酶可及染色质测定(ATAC)和 Cleavage Under Targets and Release Using Nuclease(CUT&RUN)结合测序、荧光素酶测定和siRNA评估Sulf1的转录调控,并在体内和使用体外功能测定确认了对心外膜细胞行为的影响。结果:尽管功能相同,我们发现Sulf1在胚胎心外膜中表达,而Sulfatase(Sulf)2在整个心肌中广泛表达。我们表明心外膜SULF1动态调节HSPG硫酸化以微调信号的幅度和持续时间,从而影响细胞命运和心脏形态发生。单细胞基因组学和谱系追踪研究揭示Sulf1与关键转录调节因子Wt1(Wilms tumor 1)在心外膜中强烈共表达,两者减少与上皮-间质转化和静止一致。CUT&RUN-seq揭示WT1对Sulf1的转录控制,直接影响必要的HSPG依赖性下游信号。配体-受体相互作用预测和功能测定表明FGF(成纤维细胞生长因子)-2和TGF-β(转化生长因子β)驱动的过程受这种调控相互作用控制。结论:我们的研究首次强调HSPG依赖性信号的 essential 微调以调节心脏形成中的关键过程,为治疗靶向先天性心脏病和增强心外膜促再生行为提供了潜在见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
胚胎心外膜中6-O-内硫酸酯酶如何被调控,以及它们如何影响HSPG依赖性信号和心外膜细胞行为以支持心脏形成。
核心机制
WT1直接结合Sulf1内含子增强子促进其转录;SULF1移除HS链6-O硫酸基团,动态调节HSPG硫酸化状态,从而微调心外膜细胞对FGF-2和TGF-β1信号的敏感性和响应强度与持续时间。
主要证据
单细胞RNA-seq和谱系追踪显示Sulf1与Wt1在心外膜共表达;Wt1和Sulf1敲除/敲低导致心外膜形成缺陷和HS硫酸化增加;CUT&RUN-seq和荧光素酶报告证实WT1直接调控Sulf1;体外功能实验表明Sulf1敲低增强FGF-2诱导的增殖和TGF-β1诱导的EMT及SMAD2磷酸化。
研究意义
首次将心外膜转录因子WT1与细胞外HSPG重塑及心脏发育中细胞行为协调直接联系,提出细胞外糖修饰是器官形成的动态调控层,为先天性心脏病治疗和心脏损伤后心外膜再激活提供潜在框架。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

胚胎心脏中HSPG及6-O-内硫酸酯酶表达谱分析

系统描绘HSPG和6-O-内硫酸酯酶在胚胎心脏不同发育阶段和细胞类型中的表达模式。

分析已发表和自产的E10.5、E13.5、E17.5小鼠心脏scRNA-seq数据,结合荧光原位杂交(ISH)验证Sulf1和Sulf2的细胞定位。

2

Wt1敲除对6-O-内硫酸酯酶表达的影响

验证WT1缺失是否导致心外膜中Sulf1和Sulf2表达失调。

构建Wt1敲除胚胎(Wt1CreERT2/CreERT2),在E11.5和E12.5通过荧光ISH和心外膜外植体量化Sulf1和Sulf2转录本。

3

Sulf1条件性敲除对心外膜形成的影响

确定Sulf1在心外膜形成中的功能必要性。

构建心外膜限制性诱导Sulf1敲除小鼠(Sulf1fl/fl;Wt1CreERT2/+;Rosa26tdTomato),在E9.5给予他莫昔芬,E11.5评估心室心外膜覆盖和WT1+心外膜细胞数量。

4

WT1与Sulf1表达相关性及细胞模型验证

在单细胞水平和体外验证WT1与Sulf1的表达关系及敲低效应。

分析E13.5心外膜谱系scRNA-seq数据,使用MEC1细胞进行Wt1 siRNA时间过程敲低,qRT-PCR检测Sulf1和Sulf2表达;在原代心外膜外植体中验证。

5

WT1直接结合Sulf1内含子增强子的鉴定

确定WT1是否直接转录调控Sulf1。

对E13.5分选心外膜细胞进行ATAC-seq和CUT&RUN-seq,结合荧光素酶报告基因实验验证WT1结合Sulf1内含子1增强子E1并驱动转录。

6

HSPG依赖性信号网络推断及功能验证

推断E13.5心外膜接收的HSPG依赖性信号,并验证WT1-Sulf1调控对心外膜增殖和EMT的影响。

使用CellChat分析scRNA-seq数据;在MEC1细胞中敲低Wt1或Sulf1,用候选因子处理,通过EdU掺入评估增殖,通过β-CATENIN和α-SMA免疫荧光评估EMT,Western blot检测SMAD2磷酸化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
Wt1敲除与Sulf1条件性敲除小鼠
他莫昔芬给药剂量(100 mg/kg)、给药途径(口服灌胃)、给药时间(E9.5)
阅读提示:Methods中Animal Models小节
心外膜细胞siRNA敲低
siRNA转染浓度、转染试剂、敲低效率验证时间点(48小时)
阅读提示:Results中Wt1 Positively Correlates With Sulf1 in the Epicardial Lineage小节及Figure 4图注
CUT&RUN-seq
WT1抗体货号、细胞数量、测序深度、重复数(WT1 n=3)
阅读提示:Figure 5图注及Supplemental Methods
荧光素酶报告基因实验
转染质粒量、内参、细胞接种密度、检测时间(转染后48小时)
阅读提示:Figure 5图注及Supplemental Methods
EdU增殖实验
EdU掺入时间、细胞因子处理浓度与时间(24小时)、重复数(n=11)
阅读提示:Figure 7图注及Supplemental Methods
TGF-β1诱导SMAD2磷酸化Western blot
TGF-β1浓度(10 ng/mL)、时间响应点、重复数(n=3)
阅读提示:Figure 7I-7K图注