CRISPR/Cas9构建POU3F2敲除iPSC并分化为NPC
建立POU3F2功能丧失的人类神经发育细胞模型
在三株人iPSC(YZ1、BR33、BR24)中用靶向POU特异性结构域的sgRNA进行CRISPR/Cas9突变,挑选野生型和突变克隆,经双SMAD抑制方案分化为NPC,并通过免疫细胞化学和Western blot验证POU3F2蛋白缺失。
POU3F2 regulates canonical Wnt signalling via SOX13 and ADNP to expand the neural progenitor population
包含CRISPR/Cas9突变iPSC-derived NPCs、脑类器官、患者来源NPCs队列、scRNA-seq、CUT&RUN、IP-MS及功能回补等多层验证
人iPSC来源的神经祖细胞(NPCs) POU3F2突变的人脑类器官 ROSMAP队列来源的遗传多样性NPCs CS14人胎儿脑scRNA-seq数据
在YZ1、BR33、BR24三株iPSC中利用CRISPR/Cas9靶向POU3F2的POU特异性结构域,每株选择1个野生型克隆和2个突变克隆 NPC分化采用双SMAD抑制经拟胚体中间体方案,含100 nM LDN193189和10 μM SB431542 SUPERTOPFLASH报告基因检测基线及Wnt3a激活的经典Wnt信号,n=9次分化 EdU掺入实验检测增殖,10 μM EdU处理6小时,n=4次分化 在33名ROSMAP个体来源NPCs中进行bulk RNA-seq和GSVA分析POU3F2与Wnt信号关联
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立POU3F2功能丧失的人类神经发育细胞模型
在三株人iPSC(YZ1、BR33、BR24)中用靶向POU特异性结构域的sgRNA进行CRISPR/Cas9突变,挑选野生型和突变克隆,经双SMAD抑制方案分化为NPC,并通过免疫细胞化学和Western blot验证POU3F2蛋白缺失。
鉴定POU3F2缺失后NPC中受影响的通路
对POU3F2WT和POU3F2MUT NPCs进行bulk RNA-seq和TMT-MS蛋白质组分析,发现Wnt相关通路下调。
检测POU3F2缺失是否影响基线经典Wnt信号和细胞增殖
用SUPERTOPFLASH报告基因检测基线和Wnt3a激活的Wnt信号,用EdU掺入实验检测增殖。
确定POU3F2缺失是否改变NPC亚型组成
对POU3F2WT和POU3F2MUT NPCs进行scRNA-seq,与iPSC来源神经元、星形胶质细胞、小胶质细胞snRNA-seq及CS14人胎儿脑scRNA-seq数据整合,分析细胞亚群比例和拟时序。
在3D模型中验证POU3F2缺失导致放射状胶质细胞增加
对POU3F2WT和POU3F2MUT脑类器官切片进行ANXA1、VIM、BLBP免疫染色,量化每个脑室的放射状胶质细胞数量。
判断Wnt信号降低是否先于放射状胶质细胞特化
在NPC分化关键时间点(D2拟胚体、D7神经玫瑰花环、D21晚期祖细胞)检测POU3F2表达、基线Wnt信号和ANXA1+放射状胶质细胞比例。
探究POU3F2自然表达变异是否影响Wnt信号和祖细胞身份
对33名ROSMAP个体来源iPSC分化的NPCs进行bulk RNA-seq和GSVA,并在6名高/低表达个体中验证SUPERTOPFLASH,Western blot检测POU3F2与β-catenin相关性。
寻找介导POU3F2对Wnt信号影响的效应分子
在NPCs中进行免疫共沉淀结合TMT-MS鉴定POU3F2相互作用蛋白,并进行CUT&RUN鉴定POU3F2直接结合位点。
确定SOX13和ADNP是否介导POU3F2对Wnt信号的调控
在POU3F2WT和POU3F2MUT NPCs中过表达SOX13、ADNP或GFP对照,进行SUPERTOPFLASH检测;并构建SOX13敲除NPCs进行RNA-seq和GSEA。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| iPSC基因编辑 | Cas9表达载体 | Addgene | -- |
| NPC分化 | LDN193189 | Stemgent | -- |
| SB431542 | STEMCELL | -- | |
| 层粘连蛋白 | Gibco | -- | |
| STEMdiff神经玫瑰花环选择试剂 | STEMCELL | -- | |
| NPC培养 | 成纤维细胞生长因子2 | Peprotech | -- |
| 生长因子减少型Matrigel | Corning | -- | |
| 脑类器官免疫染色 | ANXA1抗体 | Abcam | 214486 |
| SOX2抗体 | R&D Systems | AF2018 | |
| Nestin抗体 | Novus Biologicals | MAB1259 | |
| VIM抗体 | R&D Systems | MAB2105 | |
| BLBP抗体 | R&D Systems | AF3166 | |
| 免疫细胞化学 | POU3F2抗体 | CST | 12137S |
| PAX6抗体 | Biolegend | 901301 | |
| MAP2抗体 | Abcam | ab5392 | |
| CD44抗体 | Abcam | ab254530 | |
| ADNP抗体 | Abcam | ab300114 | |
| SOX13抗体 | Proteintech | 18902-1 | |
| β-catenin抗体 | CST | 8480S | |
| Western blot | GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig |
| TUJ1抗体 | Novus Biologicals | NB100-1612 | |
| HA标签抗体 | CST | C29F4 | |
| POU3F2抗体 | Santa Cruz | sc-393324 | |
| NuPAGE 4%–12% Bis-Tris凝胶 | ThermoFisher | -- | |
| SeeBlue Plus2标准品 | ThermoFisher | -- | |
| Odyssey封闭液 | LI-COR | -- | |
| RNA提取 | PureLink RNA迷你试剂盒 | ThermoFisher | -- |
| RNA质控 | Tapestation RNA ScreenTape | Agilent | -- |
| SUPERTOPFLASH报告基因实验 | pGL4.49(luc2P/TCF-LEF RE/Hygro)报告质粒 | Promega | -- |
| pRL-CMV海肾荧光素酶质粒 | Promega | -- | |
| Amaxa P3核转染试剂盒 | Lonza | -- | |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| 人FLAG标签SOX13表达载体 | Origene | RC210697 | |
| 人HA标签ADNP表达载体 | VectorBuilder | -- | |
| pmaxGFP质粒 | Lonza | -- | |
| 增殖实验 | EdU | Invitrogen | -- |
| Hoechst33342 | -- | -- | |
| 单细胞RNA-seq | 10x Chromium控制器 | 10x Genomics | -- |
| 30 μm过滤器 | Sysmex | -- | |
| CUT&RUN | H3K4me3抗体 | CST | 9751 |
| 刀豆蛋白A磁珠 | -- | -- | |
| Qubit双链DNA高灵敏度检测试剂盒 | ThermoFisher | -- | |
| 免疫共沉淀 | Protein G Dynabeads磁珠 | Invitrogen | -- |
| BS3交联剂 | ThermoFisher | -- | |
| 免疫球蛋白G | ThermoFisher | 02-6102 | |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | ThermoFisher | -- | |
| 细胞裂解 | RIPA裂解液 | ThermoFisher | -- |
| cOmplete迷你蛋白酶抑制剂 | Millipore Sigma | -- | |
| PhosSTOP磷酸酶抑制剂 | Millipore Sigma | -- | |
| 免疫荧光封片 | VECTASHIELD封片剂 | Vector Laboratories | -- |
| 免疫荧光封闭 | 驴血清 | Jackson ImmunoResearch | -- |
| 细胞培养 | IV型胶原酶 | -- | -- |
| Accutase细胞解离液 | Invitrogen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CRISPR/Cas9基因编辑与克隆选择 | iPSC株系(YZ1、BR33、BR24);每株系选1个野生型克隆和2个突变克隆;sgRNA靶向POU特异性结构域;突变类型为复合杂合蛋白破坏性突变 阅读提示:Materials and methods中Generation of CRISPR/Cas9-edited iPSCs小节及Supplementary Table 1 |
| NPC分化 | 双SMAD抑制经拟胚体方案;LDN193189 100 nM;SB431542 10 μM;D7添加laminin 1 μg/ml;D14神经玫瑰花环选择;D21后GFR Matrigel高密度扩增至最多三代 阅读提示:Materials and methods中Differentiation of iPSC-derived NPCs小节 |
| SUPERTOPFLASH报告基因实验 | 每百万细胞1.8 μg pGL4.49和0.2 μg pRL-CMV;核转染后24小时换Wnt3a或对照条件培养基;再24小时后检测;基线Wnt信号为Firefly/Renilla,激活Wnt信号为Wnt3a处理比值除以对照比值 阅读提示:Materials and methods中SUPERTOPFLASH luciferase Wnt reporter assay小节及Figure 2A |
| EdU增殖实验 | 30 k cells/well于96孔板;10 μM EdU处理6小时;Hoechst33342复染;CellProfiler计算阳性率 阅读提示:Materials and methods中Proliferation assay小节 |
| 单细胞RNA-seq分析 | 线粒体reads >10%或检测特征<200或>6000的细胞被排除;Harmony回归性别效应;与CS14胎儿脑数据整合时回归来源效应;卡方检验比较细胞类型比例 阅读提示:Materials and methods中Single-cell RNA-seq of POU3F2WT and POU3F2MUT NPCs小节及Figure 3F |
| CUT&RUN | 每反应100 k细胞;POU3F2抗体1:50;H3K4me3抗体1:50;Input经proteinase K和RNase A处理后超声(15循环,30秒开/关,高强度);测序2×75 bp;MACS2 call peaks,DiffBind评分,HOMER注释 阅读提示:Materials and methods中Cleavage under targets and release using nuclease小节 |
| 免疫共沉淀-质谱 | POU3F2抗体1:50;IgG 0.4 μg/reaction;抗体与Dynabeads交联使用BS3;每株系n=3个样本 阅读提示:Materials and methods中Immunoprecipitation followed by mass spectrometry小节及Figure 6C图注 |
| ROSMAP队列NPC分析 | 33名ROSMAP个体来源iPSC分化的NPCs;GSVA使用Wnt activated基因集;SUPERTOPFLASH在6名个体(3高3低)中验证,n=3次分化;Western blot 33株系,每株系2孔 阅读提示:Materials and methods中Gene set variation analyses小节及Figure 5图注 |