用于脊髓损伤后移植的工程化胸段脊髓类器官

Engineered thoracic spinal cord organoids for transplantation after spinal cord injury

作者信息Yanjing Zhu, Ruiqi Huang, Liqun Yu, Zhibo Liu, Yuchen Liu, Wenyong Fan, Gufa Lin, Zhaojie Wang, Xiaolie He, Xu Xu, Bei Ma, Youwei Chen, Yuxin Bai, Jing Li, Bairu Chen, Liming Cheng, Rongrong Zhu
PMID41136603
发布时间2025-10-24
DOI10.1038/s41551-025-01549-8

实验完整度

高

包含体外类器官构建与功能检测、小鼠胸段完全横断SCI移植模型、空间转录组、电生理、光遗传学及神经环路示踪等多层级功能与机制验证。

主要模型

成纤维细胞来源的诱导多能干细胞(iPSC)生成的胸段脊髓类器官(enTsOrg) 胸段(T9)完全横断脊髓损伤的雌性M-NSG小鼠模型

重点核对

类器官移植时机:选择体外培养21天的enTsOrg进行移植,并与42天成熟类器官比较 动物模型:雌性M-NSG小鼠(20±2 g,7–8周龄),T9椎板切除并完全横断2 mm脊髓 移植分组:enTsOrg组、sOrg组、Matrigel组、SCI组和sham组,每组n=25 神经电生理检测:MEA记录35天类器官的放电活动;全细胞膜片钳记录sAP、iAP及电压门控Na+/K+电流 体内功能与环路验证:MEP记录、光遗传抑制ChAT+神经元、BDA/PRV神经示踪及BMS评分

摘要

基于干细胞的神经组织工程和脊髓类器官在脊髓损伤修复方面显示出前景。然而,天然脊髓具有细胞异质性和刻板的的空间结构,使得在类器官结构中难以重现它们,这需要一种涵盖细胞组成、节段组织和背腹特征的组装。在这里,我们工程化了一个胸椎节段特异性脊髓类器官(enTsOrg)模型,该模型能够精确匹配移植部位,建立突触连接并增强体内神经电传导。该器官由成纤维细胞来源的诱导多能干细胞和层状双氢氧化物基质在基底膜水凝胶(Matrigel)中生成。在脊髓损伤小鼠模型中移植后,enTsOrg表现出高级的成熟、功能化以及关键神经元亚型的有序分布,具有胸段异质性,包括各种运动神经元和中间神经元亚型,这些主要有助于恢复运动功能。enTsOrg的移植可以重建瘫痪动物的神经回路并恢复后肢运动功能。enTsOrg强大的神经功能和治疗功效突显了为神经损伤治疗中特定解剖区域设计类器官的潜在途径。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否构建精确匹配胸段脊髓解剖区域异质性的脊髓类器官,并在胸段完全脊髓损伤移植后重建神经环路、恢复运动功能?
核心机制
LDH通过激活PTCH1调控SHH和RA信号通路,促进胸段特异性运动神经元分化;移植后LDH调控PI3K/GSK3β和MFN2表达,协同增强神经元存活并促进运动神经元和中间神经元的分化与成熟,从而改善功能整合。
主要证据
体外构建enTsOrg并证实其胸段Hox基因表达、运动神经元亚型和电生理活性;移植到T9完全横断SCI小鼠后,enTsOrg组BMS评分、步态、水平梯实验、MEP振幅、PSD95表达及BDA/PRV示踪均优于sOrg组;空间转录组显示移植后enTsOrg胸段特征spots比例更高且神经元更成熟。
研究意义
为神经损伤治疗中针对特定解剖区域设计类器官提供了潜在途径,并提示精确匹配损伤部位的类器官移植可促进脊髓损伤后的神经环路重建和运动功能恢复。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

胸段特异性脊髓类器官的构建与表征

构建具有胸段区域异质性和成熟神经元组成的enTsOrg,并验证其形态、基因表达和电生理功能。

将iPSC球体在神经分化阶段包埋于LDH–Matrigel或Matrigel中,经LDN-193189、CHIR99021、RA、purmorphamine及BDNF/GDNF诱导分化,于第14、21、42天收集类器官;通过SEM、RNA-seq、ST-seq、qPCR、免疫荧光、MEA、膜片钳和钙成像检测胸段标志物、神经元亚型及电生理活性。

2

胸段完全脊髓损伤小鼠模型建立与类器官移植

评估enTsOrg移植对胸段完全脊髓损伤后运动功能恢复的治疗效果,并确定最佳移植时机。

雌性M-NSG小鼠行T9椎板切除和2 mm完全脊髓横断,随机分为enTsOrg、sOrg、Matrigel、SCI和sham组,分别植入21天enTsOrg、21天sOrg、Matrigel或不做处理;通过BMS评分、步态分析、水平梯实验、von Frey和热板实验评估运动与感觉功能。

3

移植后移植物存活、成熟与宿主整合分析

验证移植类器官在体内的存活、神经发生、成熟及与宿主组织的结构连接。

于移植后1、3、5、7、14周取材,通过TUNEL、BrdU、免疫荧光检测Nestin、SOX2、NeuN、ChAT、ISL1、HOXC9等标志物;通过ST-seq分析移植区细胞组成和发育阶段;通过MEP、PSD95免疫荧光及BDA/PRV示踪评估结构功能连接。

4

移植后神经元亚型特化与神经环路功能验证

验证enTsOrg移植后是否形成胸段特异性运动神经元亚型、关键中间神经元,并参与宿主神经环路和运动控制。

通过ST-seq、免疫荧光和qPCR检测运动神经元柱亚型(PGC、HMC、MMC)、alpha/gamma运动神经元及Vsx2+/vGlut2+中间神经元;通过光遗传抑制ChAT+神经元并同步记录P-PN放电和MEP,结合行为轨迹分析验证ChAT+神经元对运动功能的贡献。

5

LDH调控胸段特化及神经保护机制解析

阐明LDH促进胸段运动神经元分化和移植后神经元存活、成熟的信号机制。

在移植前(21天)和移植后7周/14周检测SHH通路(PTCH1、GLI1、NKX6.1、SHH)、RA通路(CYP26A1、CRABP2、RARα)及PI3K/AKT/GSK3β、UCHL1、MFN2等表达;通过Western blot、qPCR和免疫荧光验证。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
基底膜基质胶Corning354277
mTeSR1培养基StemCell Technologies85850
Y-27632SelleckchemS1049
LDN-193189Stemgent04-0004-10
CHIR99021Tocris Bioscience4423
视黄酸Stemgent04-0021
purmorphamineStemgent04-0009
脑源性神经营养因子PeproTech450-02-10
胶质细胞源性神经营养因子PeproTech450-10-10
硝酸镁Sinopharm80075918
Fura-2/AMThermo FisherF1201
Hank平衡盐溶液BeyotimeC0218
多电极阵列板Axion BiosystemsM384-tMEA-6B
TUNEL检测试剂盒Yeasen40307
O.C.T.包埋剂SAKURA4583
驴血清Jackson017-000-121
Triton-XSigmaX100-100ML
DAPISigmaD9542-5MG
BCA蛋白浓度测定试剂盒BeyotimeP0012
牛血清白蛋白CELLGROGENC0500-3010
Tris缓冲盐-Tween溶液SolarbioT1087
RNAiso PlusTAKARA9108
Primer Script逆转录酶试剂盒Takara2690 A
TB Green Premix Ex TaqTakaraRR820A
生物素化葡聚糖胺Invitrogen--
rAAV-ChAT-eNpHR3.0-EGFPBrainCase--
PRV-CAG-3Ms病毒Brain Case--
热板仪Shanghai Yuyan InstrumentsYSL-21
DigiGait成像系统Mouse Specifics--
Keypoint II双通道诱发电位/肌电图仪AlphaLab SnR, Alpha Omage--
OmniPlex神经记录数据采集系统Plexon--
高密度柔性神经电极NeuroXessNSDS
Visium空间基因表达载玻片与试剂盒10× Genomics--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
类器官构建与诱导分化
iPSC接种密度(30,000个/孔)、LDN-193189(1 μM)和CHIR99021(3 μM)浓度、RA(0.1 μM)添加时间(第3天)、purmorphamine(1 μM)浓度、LDH–Matrigel中LDH浓度(10 μg/ml)、摇床转速(65 rpm)、BDNF/GDNF浓度(10 ng/ml)及添加时间(第17天)
阅读提示:Methods中“Cell culture and generation of sOrgs”及“Preparation of LDH and LDH-engineered Matrigel”小节
动物模型与移植
小鼠品系(雌性M-NSG)、体重和周龄(20±2 g,7–8周龄)、损伤节段(T9)、横断长度(2 mm)、移植类器官体外培养天数(21天)、每组样本量(n=25)、镇痛方案(布洛芬3 mg/kg)
阅读提示:Methods中“Animal model and organoid transplantation”小节
行为学评估
BMS评分观察时间(14周,每周)、步态分析时间(术后14周,每组4只)、水平梯实验时间(7周和14周)、von Frey和热板实验时间(术后3–7周)、热板温度(50°C)
阅读提示:Methods中“Kinematic assessment”和“Sensory behaviour assessment”小节及Fig. 2图注
电生理与光遗传学验证
MEA记录类器官培养天数(35天)、膜片钳记录模式与刺激参数(10 pA step,500 ms;ramp −80至+60 mV,1 s)、光遗传病毒注射量(300 nl)和滴度(5.0×10^12 vg/ml)、抑制光参数(590 nm,10 mA,200 s)、在体电生理采样率(40 kHz)
阅读提示:Methods中“Whole-cell membrane clamp electrophysiology”“MEA recording”“Electrophysiological procedures and optogenetics experiments”小节
空间转录组与数据分析
ST-seq时间点(移植后7周)、参考数据集(GSE171892、GSE136719、GSE188516)、分析软件(Space Ranger v.3.0、Seurat、Loupe browser 8)及统计方法
阅读提示:Methods中“10× Visium spatial transcriptomics”和“ST-seq data analysis and cell-type annotation”小节