代谢竞争驱动的glpX缺陷工程沙门氏菌通过葡萄糖剥夺和STING激活在膀胱癌中发挥抗肿瘤免疫作用

Metabolic Competition-Driven Antitumor Immunity of glpX-Deficient Engineered Salmonella via Glucose Deprivation and STING Activation in Bladder Cancer

作者信息Leyang Wu, Xinyue Qiao, Wanru Wang, Jiahui Qiu, Xiao Dong, Liyuan Qiao, Chengxuan Lei, Xiaoxin Zhang, Ying Sun, Chenyang Li, Bohao Wang, Zengzheng Du, Heng Liu, Zhengbing Lv, Xiaofeng Jiang, Zichun Hua
PMID42889276
发布时间2026-10-15
DOI10.34133/cancomm.0060

实验完整度

高

包含体外细胞模型、皮下及原位膀胱癌动物模型、转录组分析,并进行了STING通路机制验证和免疫细胞功能分析。

主要模型

MB49小鼠膀胱癌细胞系 MB49皮下膀胱癌同系小鼠模型 MB49原位膀胱癌小鼠模型 C57BL/6J小鼠骨髓来源树突状细胞(BMDCs)

重点核对

细菌给药剂量:皮下及原位模型为1×10^6或3×10^6 CFU/只,腹腔注射 细菌与肿瘤细胞共培养的感染复数(MOI)为100,处理时间3-8小时或6小时 葡萄糖浓度设置:低(1 mM)、中(5 mM)、高(25 mM) 肿瘤细胞接种量:皮下模型2×10^5 MB49细胞/只;原位模型2×10^5 MB49细胞/只,膀胱内保留>40分钟 TNF-α中和处理:抗小鼠TNFα-InVivo 0.5 mg/只或TNF-αnb 5 mg/kg,腹腔注射

摘要

背景:细菌介导的癌症治疗因其低成本、可扩展性和持续疗效而成为一种有前景的方法。尽管细菌免疫调节已被广泛研究,但细菌代谢竞争(尤其是对葡萄糖的竞争)在肿瘤抑制中的作用仍不清楚。我们旨在研究工程化沙门氏菌菌株如何利用代谢竞争触发抗肿瘤免疫并改善膀胱癌模型中的治疗效果。方法:利用遗传筛选,我们构建了一株糖异生缺陷的沙门氏菌菌株,即敲除glpX基因的AISIH菌株(GLA1),其葡萄糖摄取增强。通过体外和体内实验评估肿瘤细胞葡萄糖剥夺、线粒体应激、胞质线粒体DNA(mtDNA)释放以及cGAS/STING通路的激活。通过敲除glpX基因从AISIH菌株构建了工程菌株GLA2,并进一步改造使其在群体感应控制下局部递送抗肿瘤坏死因子-α(TNF-α)纳米抗体。在皮下和原位膀胱癌模型中评估疗效,并分析肿瘤浸润免疫细胞、树突状细胞(DC)成熟和T细胞 priming。结果:GLA1竞争性耗竭膀胱肿瘤微环境中的葡萄糖,诱导能量应激、线粒体损伤和mtDNA释放,从而非经典地激活STING通路。这促进了I型干扰素产生、DC成熟和抗肿瘤免疫应答。然而,TNF-α介导的血管异常限制了疗效。GLA2通过局部递送抗TNF-α使肿瘤血管正常化,增强营养竞争和免疫激活。两种菌株均显著抑制肿瘤生长,其中GLA2因代谢和免疫重编程的协同作用而显示出更优疗效。结论:本研究证明细菌对葡萄糖的竞争是膀胱癌抗肿瘤活性的关键机制,将代谢应激与STING依赖性免疫激活联系起来。将增强葡萄糖摄取与局部血管正常化相结合的工程化沙门氏菌菌株为膀胱癌提供了稳健的平台。这些发现突显了一种将微生物代谢工程与免疫调节相结合的新策略,为肿瘤学中的精准细菌治疗提供了基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
工程化沙门氏菌能否通过代谢竞争(特别是葡萄糖竞争)触发抗肿瘤免疫并改善膀胱癌治疗效果?
核心机制
glpX缺陷沙门氏菌(GLA1)通过竞争性消耗肿瘤微环境中的葡萄糖,诱导肿瘤细胞能量应激、线粒体损伤和mtDNA释放,从而激活cGAS/STING/TBK1/IRF3通路,促进I型干扰素和促炎因子分泌及DC成熟;GLA2进一步通过群体感应控制局部递送抗TNF-α纳米抗体,实现血管正常化,增强营养竞争和免疫激活。
主要证据
体外实验显示GLA1增强葡萄糖摄取、降低肿瘤细胞葡萄糖摄取、增加ROS和mtDNA释放、激活STING通路及下游细胞因子;皮下和原位膀胱癌模型中GLA1和GLA2均抑制肿瘤生长,GLA2效果更优,并伴随肿瘤血管正常化、DC成熟、T细胞活化及生存期延长。
研究意义
本研究揭示了细菌葡萄糖竞争作为抗肿瘤活性的关键机制,将代谢应激与STING依赖性免疫激活联系起来,为合理设计整合代谢、免疫和血管调节功能的下一代工程化微生物疗法提供了理论和实验基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建糖异生或糖酵解基因缺陷沙门氏菌株

探究细菌葡萄糖代谢基因对葡萄糖摄取能力及抗肿瘤活性的影响

利用CRISPR/Cas9技术构建AISIH菌株的yidA、yigL、glpX、ppsA(糖异生)以及ptsG、pfkB、pykF、cra(糖酵解)单基因敲除株,通过PCR和测序验证,并检测生长曲线、菌落形态和2-NBDG摄取。

2

评估工程菌株的葡萄糖竞争能力和抗肿瘤效果

验证增强葡萄糖摄取的菌株是否具有更强的肿瘤细胞葡萄糖剥夺和抗肿瘤活性

将各突变株与MB49细胞共培养,检测2-NBDG摄取和肿瘤细胞增殖;在MB49皮下荷瘤小鼠中腹腔注射各菌株(1×10^6 CFU/只),监测肿瘤体积、肿瘤倍增时间和生存期。

3

解析GLA1诱导肿瘤细胞线粒体应激和STING通路激活

探究GLA1通过葡萄糖剥夺诱导线粒体损伤和mtDNA释放,进而激活cGAS/STING通路的机制

在低、中、高葡萄糖浓度下共培养MB49细胞与菌株,检测ROS、线粒体膜电位、线粒体形态(TEM)、胞质mtDNA、STING通路蛋白磷酸化、Ifnb1/Cxcl10/Il-6表达及分泌,并评估肿瘤细胞上清对BMDC成熟的诱导。

4

构建并验证群体感应控制的抗TNF-α纳米抗体递送菌株GLA2

实现肿瘤局部血管正常化,增强GLA1的抗肿瘤效果

将TNF-αnb序列置于群体感应启动子pLuxI下游,电转入GLA1构建GLA2,通过免疫印迹验证TNF-αnb表达和分泌;在皮下荷瘤小鼠中比较GLA1和GLA2对肿瘤血管密度、肿瘤生长和生存期的影响。

5

评估GLA2在皮下及原位膀胱癌模型中的免疫重塑和疗效

验证GLA2通过STING激活和免疫细胞重塑增强抗肿瘤免疫,并在原位模型中评估疗效

在皮下荷瘤小鼠中给药后3天,流式细胞术分析肿瘤和引流淋巴结中DC成熟、T细胞亚群和巨噬细胞极化;在MB49原位膀胱癌模型中腹腔注射GLA1或GLA2(3×10^6 CFU/只),活体成像监测肿瘤生长,并分析生存期和膀胱组织病理。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
白细胞介素-4BioworldBK0246
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子MedChemExpressHY-P7361
2-NBDG葡萄糖类似物MKbioMX4511
Hoechst染料KeyGEN BioTECHKGA1804-10
洋地黄皂苷SigmaD141
BCA蛋白测定试剂盒BiosharpBL521A
QIAquick核苷酸去除试剂盒Qiagen28306
2',7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯SolarbioD6470
TMRE线粒体膜电位检测试剂盒BeyotimeC2001S
CCK-8细胞计数试剂盒VazymeA311-01
IFN-β ELISA试剂盒Multi SciencesEK2236
IL-6 ELISA试剂盒BYabscienceBY-EM220188
CXCL10 ELISA试剂盒Multi SciencesEK268
含蛋白酶抑制剂的RIPA裂解液ProteintechPK10014
磷酸酶抑制剂ABclonalRM02997
5×上样缓冲液Sangon BiotechC516031
抗FLAG一抗SigmaF1804
抗小鼠TNFα体内抗体SelleckA2124
生物素示踪剂VazymeDD1210
可固定活性染料BD Biosciences564407
BD Pharmingen转录因子缓冲液套装BD Biosciences562574
CD11c-APC抗体SelleckG0093
CD80-FITC抗体SelleckG0211
CD86-PE抗体Invitrogen12-0862-82
FreeZol RNA提取试剂VazymeR711-01
逆转录试剂盒Thermo Fisher ScientificM16315
qPCR预混液VazymeQ111-02

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细菌与肿瘤细胞共培养
MOI 100;处理时间3-8小时;葡萄糖浓度1、5、25 mM;培养基为无葡萄糖无酚红DMEM加10 μM 2-NBDG
阅读提示:Methods 'Glucose uptake assay'、'Apoptosis and proliferation assays'、'Mitochondrial damage assessment'及Figure 2、4图注
皮下膀胱癌模型构建与给药
MB49细胞2×10^5/只皮下注射;肿瘤体积80-120 mm3时给药;细菌剂量1×10^6或3×10^6 CFU/只腹腔注射;n=7或9
阅读提示:Methods 'Animal models'、Figure 3G、5L、5M图注
原位膀胱癌模型构建与给药
MB49细胞2×10^5/只膀胱内灌注,保留>40分钟;第6天给药3×10^6 CFU/只腹腔注射;n=7
阅读提示:Methods 'Animal models'、Figure 7A图注
STING通路激活检测
共培养MOI 100,低葡萄糖(1 mM)处理3小时(蛋白磷酸化)或6小时(qPCR/ELISA);Western blot抗体信息见表S3;ELISA检测时间2、4、8小时
阅读提示:Methods 'Western blotting'、'Cytokine quantification'、Figure 4G-4I图注
免疫细胞分析
给药后3天取肿瘤和引流淋巴结;流式抗体panel及浓度见表S3;BMDC成熟实验:肿瘤细胞4×10^6/ml与菌共培养8小时,上清与DC 2×10^5培养24小时
阅读提示:Methods 'FCM analysis'、Figure 6图注