编辑后的造血干祖细胞挽救弗里德赖希共济失调小鼠的frataxin缺陷和炎症驱动的多系统病理

Edited HSPCs rescue frataxin deficiency and inflammation-driven multisystemic pathology in Friedreich's ataxia mice

作者信息Anusha Sivakumar, Alexis N Corl, Keneth Jordan Muñoz, Subhashini Arumugam, Betul B Gunes, Angelyn B Solis, Rishika Murthy, Lilas Rony El-Hachem, Donald P Pizzo, Ian A Blair, Teerapat Rojsajjakul, Clementina Mesaros, Xinlong Wan, Joseph N Rainaldi, Rafael A Badell-Grau, Veenita Khare, Kevin Eric Thai, Kavya Biederman, Stephanie Cherqui
PMID42878077
发布时间2026-10-15
DOI10.1172/JCI209546

实验完整度

高

包含体外基因编辑、人源化小鼠模型体内移植、多组织植入与功能验证及转录组机制分析等多层级证据。

主要模型

人源化YG8JR FRDA小鼠模型 YG8JR小鼠来源的Sca1+骨髓造血干祖细胞 mPPL-001基因编辑造血干祖细胞

重点核对

mPPL-001的hFXN GAA切除效率为7.6%–30.5%,平均20.3% 移植后6.5–7个月分析植入和分布 mPPL-001剂量为每只小鼠1.5–1.75 × 106个细胞,尾静脉注射 受体小鼠2.0–2.5月龄,接受7 Gy致死剂量照射 mPPL-001切除效率>14%与一致的治疗获益相关

摘要

弗里德赖希共济失调(FRDA)是一种由frataxin(FXN)基因内含子1区GAA重复扩增引起的多系统神经退行性疾病,导致FXN缺乏和线粒体功能障碍。目前的疗法无法纠正潜在的遗传缺陷。在此,我们证明,在造血干祖细胞(HSPCs)中体外CRISPR/Cas9切除GAA扩增可提供持久、全身性的FRDA治疗。将基因编辑的Sca1+ HSPCs(mPPL-001)单次输注到清髓性人源化YG8JR小鼠中,可使供体来源细胞在造血组织和受FRDA影响的组织中长期植入。mPPL-001增加了FXN表达并纠正了FRDA的多个关键致病驱动因素,包括线粒体应激、小胶质细胞和巨噬细胞活化以及炎症信号传导。这些协同效应改善了运动功能、保护了小脑结构、减轻了心脏病理,并促进了朗格汉斯胰岛中产生胰岛素的β细胞的存活。总之,这些发现确立了FXN编辑的自体HSPCs作为FRDA的一次性、疾病修饰疗法,并支持推进首次人体试验。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
基因编辑的自体造血干祖细胞能否在体内纠正FRDA的FXN缺乏并缓解其多系统病理?
核心机制
切除hFXN内含子1的GAA扩增以恢复FXN表达,经供体来源小胶质样细胞和巨噬细胞植入组织,增加组织FXN并抑制线粒体应激和炎症信号。
主要证据
在人源化YG8JR小鼠中单次输注mPPL-001后,供体细胞在造血组织和脑、心、胰腺等组织植入;FXN表达升高;小脑转录组、Iba1+小胶质细胞形态、心脏线粒体hFXN和CD68+巨噬细胞、胰岛β细胞和CD206+细胞等指标改善。
研究意义
支持FXN编辑的自体HSPCs作为FRDA一次性、疾病修饰疗法,并推进PPL-001进入首次人体试验。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

mPPL-001的体外生成与基因编辑效率评估

验证CRISPR/Cas9切除hFXN GAA扩增的效率及产品特性

从YG8JR小鼠分离Sca1+ HSPCs,用RNP复合物电转生成mPPL-001;培养7天后检测GAA切除效率,并进行集落形成能力检测。

2

mPPL-001移植及长期植入分析

评估单次系统输注后供体细胞在造血组织和FRDA受累组织的植入

2.0–2.5月龄YG8JR受体经7 Gy致死照射后24小时,尾静脉输注mPPL-001或mock HSPCs;移植后6.5–7个月用ddPCR检测各组织嵌合。

3

运动功能和小脑结构及FXN表达评估

验证mPPL-001是否改善FRDA小鼠运动缺陷并保护小脑结构

Catwalk步态分析、H&E和NeuN免疫染色评估小脑GCL和ML厚度,免疫荧光检测小脑hFXN表达并与骨髓植入进行回归分析。

4

小脑转录组和神经炎症机制分析

评估mPPL-001对小脑基因表达、微胶质细胞活化和炎症通路的影响

移植后6个月取小脑进行bulk RNA-seq、差异表达分析、GSEA和leading-edge分析;Iba1免疫染色和Sholl分析微胶质细胞形态。

5

心脏结构和线粒体FXN及炎症评估

验证mPPL-001对FRDA小鼠心脏病理和线粒体FXN表达的作用

M模式超声心动图检测心脏功能,电镜分析心肌线粒体形态,质谱检测线粒体hFXN,免疫荧光检测CD68+巨噬细胞。

6

胰腺胰岛β细胞和炎症评估

验证mPPL-001是否保护朗格汉斯胰岛β细胞并调节胰腺炎症

H&E评价胰岛细胞结构,胰岛素免疫荧光检测β细胞,免疫荧光检测CD68+和CD206+巨噬细胞。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗Sca1+抗体Miltenyi Biotec130-123-124
StemSpan培养基Stem Cell Technologies9600
Alt-R-Cas9电转增强剂IDT1075915
SpyFi Cas9核酸酶Aldevron9214-0.25MG
sgRNA UP4和sgRNA DN4Synthego Corporation--
Neon转染系统Thermo Fisher Scientific--
MethoCult GF培养基StemCell TechnologiesM3434
AWG EVOS显微镜Thermo Fisher Scientific--
CVS Health高级血糖仪CVS Health--
CatWalk系统Nodulus Instruments--
Vevo 2100超声系统FUJIFILM VisualSonics--
Keyence BZX-800显微镜Keyence--
Durcupan树脂Sigma-Aldrich44610-1EA
JEOL 1400 Plus透射电子显微镜JEOL--
Quick ExtractLGC Biosearch TechnologiesQE0905T
DNeasy血液和组织试剂盒Qiagen69505
HindIII-HF限制酶New England BiolabsR3104S
ddPCR探针预混液Bio-Rad1863024
QX200微滴生成仪Bio-Rad--
QX200微滴读取仪Bio-Rad--
抗FXN抗体LS-BioLS-B15909-50
抗胰岛素抗体Proteintech66198-1-Ig
抗Iba1抗体Synaptic Systems234-017
抗NeuN抗体Thermo Fisher Scientific702022
抗CD68抗体Cell Signaling Technology97778S
抗CD206抗体Cell Signaling Technology76220
Alexa Fluor Plus二抗Thermo Fisher ScientificA32795, A32773, A48270, A32790
Bullet Blender 24 Gold组织匀浆器Next Advance--
Agilent 1290 Infinity II超高效液相色谱系统Agilent Technologies--
6495C三重四极杆质谱仪Agilent Technologies--
PureLink RNA小量提取试剂盒Thermo Fisher Scientific12-183-018A
NovaSeq X Plus测序仪Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
mPPL-001生成
RNP组成、sgRNA序列、电转参数、细胞数和切除效率
阅读提示:Methods中HSPC isolation, gene editing and transplantation小节
移植
照射剂量、移植细胞数、注射途径、小鼠年龄和性别
阅读提示:Methods中Transplantation小节和图1A
植入分析
分析时间、检测方法、组织类型和嵌合率
阅读提示:Results中Transplantation of mPPL-001部分和图1C
小脑转录组分析
测序平台、样本量、差异表达阈值和统计方法
阅读提示:Methods中Bulk mRNA sequencing and analysis小节和图3
心脏线粒体FXN检测
质谱方法、组织处理、重复数和检测指标
阅读提示:Methods中FXN mass spectrometry小节和图4C