鉴定并重编程软度驱动的癌症干样细胞可克服实体瘤中CAR-T细胞耐药性

Identifying and reprogramming softness-driven cancer stem-like cells overcomes CAR-T cell resistance in solid tumours

作者信息Yunjia Qu, Yuxuan Wang, Linshan Zhu, Fengyi Ma, Chi Woo Yoon, Xinyu Chen, Junhang Zhang, Carrie Bishop, Min Tang, Jiaxin Cui, Tianze Guo, Phuong Ho, W Martin Kast, Hongquan Xu, Qifa Zhou, Adam J Engler, Ning Wang, Longwei Liu, Shu Chien, Yingxiao Wang
PMID42410050
发布时间2026-07
DOI10.1038/s41551-026-01722-7

实验完整度

高

含二维/三维培养、患者来源细胞、小鼠移植瘤及RNA-seq,并有钙阻断、分选、杀伤等功能验证。

主要模型

MDA-MB-231乳腺癌细胞(含MDA-MB-231-CD19)与MCF7细胞 U87-MG、Panc-1、PC-3肿瘤细胞 患者来源乳腺癌细胞110-T、015-R、296-R NSG小鼠乳腺脂肪垫移植瘤模型

重点核对

CAR-T杀伤实验中癌细胞培养于coverslip、stiff或soft ECM,E:T比1:1共培养24 h,n=3独立重复 机械记录器检测中多西环素500 nM处理2 h,加入多西环素后6 h成像,并以miRFP670归一化mCherry 钙阻断处理:Ca2+ free DMEM + BAPTA 100 μM或2-APB 50 μM,预处理30 min并维持24 h共培养 体内重编程CAR-T杀伤中每只小鼠注射0.5×106记录器阴性或阳性MDA-MB-231细胞,尾静脉注射1.5×106 EGFR-CAR-T或混合CAR-T细胞 体内多西环素5 mg kg−1腹腔注射,自第5天起每3天一次,BLI监测肿瘤并归一化至第4天信号

摘要

实体瘤表现出显著的机械异质性,然而这种线索如何影响癌细胞对基于T细胞疗法的敏感性仍不清楚。在这里,我们发现生长在软基质上的癌细胞对嵌合抗原受体T细胞毒性较不敏感,并表现出细胞外三磷酸腺苷升高和持续的钙活性。为了理解这种杀伤减弱背后的机制,我们试图鉴定对机械软度作出反应的细胞。我们设计了一种多西环素门控的钙激活转录机械记录器,该记录器在界定记录窗口内整合软度诱导的钙活动,并将此前的信号历史转换为持续数天的稳定荧光输出。与仅在成像时刻报告瞬时钙活动的实时钙指示剂不同,这种记录器保留了可分选的转录标记,使得能够根据细胞过去的机械感知活动对其进行选择性标记和谱分析。转录组分析显示,记录器阳性细胞在多种癌细胞系和患者来源样本中采用干样程序,包括上皮–间质转化、缺氧反应、致癌信号传导以及升高的干性标志物。为了使这些耐药细胞可被靶向,我们通过用临床验证的抗原CD19替换荧光输出,将机械记录器重编程为机械重编程器,使软度响应细胞能够被CD19导向的T细胞识别。这种重编程系统提高了在培养物和动物模型中消除干样癌细胞的能力,将机械生物学耐药性转化为治疗脆弱性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
实体瘤中的机械软度如何影响癌细胞对CAR-T细胞杀伤的敏感性,以及能否据此识别并靶向耐药性癌症干样细胞?
核心机制
软ECM促进癌细胞细胞外ATP和钙信号升高,进而诱导记录器阳性细胞呈现癌症干样/机械干性程序;将软度相关钙活动重编程为CD19表达后,可把机械干性转化为CAR-T细胞可识别的“杀我”信号。
主要证据
在不同ECM硬度上进行的EGFR-CAR、CD19-CAR和GD2-CAR杀伤实验、GCaMP和exATP检测、遗传机械记录器分选结合RNA-seq、乳腺球形成和AFM测量,以及NSG小鼠移植瘤中记录器诱导和EGFR-CAR-T/CD19-CAR-T混合治疗实验。
研究意义
该研究提出通过记录并重编程癌细胞的机械干性,使与软微环境相关的耐药癌症干样细胞可被CAR-T细胞靶向和杀伤,为提高实体瘤CAR-T治疗效果提供了新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立不同硬度ECM培养并评估CAR-T杀伤

验证机械软度是否影响CAR-T细胞对癌细胞的杀伤敏感性。

使用不同Young’s modulus的聚丙烯酰胺水凝胶培养MDA-MB-231、MDA-MB-231-CD19和U87-MG细胞,并与相应EGFR-CAR、CD19-CAR或GD2-CAR-T细胞共培养,检测细胞死亡百分比和表面抗原表达。

2

检测软ECM下钙信号与细胞外ATP

探究软ECM增强CAR-T耐药是否伴随钙信号和细胞外ATP变化。

在coverslip、stiff或soft ECM上培养MDA-MB-231细胞,使用GCaMP检测钙水平并计算累积钙,检测exATP,并用blebbistatin、BAPTA-AM或2-APB进行干预。

3

设计并验证遗传机械记录器

建立可将既往钙活动转为稳定荧光标记的记录系统,用于标记不同机械经历的癌细胞。

构建Tet-On 3G与NFAT AND门控制的记录器,以DOX门控TRE启动mCherry报告基因;在MDA-MB-231、MCF7细胞中验证不同ECM硬度、细胞密度、ATP、apyrase、ionomycin、thapsigargin、BAPTA/2-APB等条件下的记录器表达。

4

分选记录器阳性细胞并进行转录组与干性验证

确定软度诱导的记录器阳性细胞是否具有癌症干样细胞特征和更强CAR-T耐药性。

从stiff或soft ECM培养细胞中分选记录器阳性和阴性细胞,进行RNA-seq、GO/GSEA分析、乳腺球形成实验、AFM刚度测量和EGFR-CAR-T杀伤实验。

5

在患者来源乳腺癌细胞中验证机械记录器

评估机械记录器能否检测不同患者来源乳腺癌细胞的机械干性。

将记录器构建体导入110-T、015-R和296-R患者来源细胞,在不同硬度ECM上培养并进行DOX诱导,检测记录器表达,并结合RNA-seq、GSEA和干性标志物分析。

6

将机械记录器重编程为CD19“杀我”信号

验证能否将软度相关机械干性转化为CAR-T细胞可识别的抗原信号。

将记录器荧光报告基因替换为截短CD19,在二维和三维ECM中检测CD19表达,并用CD19-CAR-T细胞进行杀伤实验和RNA-seq分析T细胞激活程序。

7

体内评估重编程后CAR-T对癌症干样细胞的杀伤

在动物模型中验证重编程策略是否能提高CAR-T对记录器阳性/软度相关肿瘤的清除效果。

将stiff记录器阴性或soft记录器阳性MDA-MB-231细胞注射入NSG小鼠乳腺脂肪垫,进行DOX诱导、BLI成像、超声弹性成像,并给予EGFR-CAR-T或EGFR-CAR-T+CD19-CAR-T混合治疗。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Q5 DNA聚合酶NEBM0491
Gibson组装试剂盒NEBE2611L
Lenti-X 293T细胞Clontech Laboratories#632180
ProFection哺乳动物转染系统PromegaE1200
0.45 μm PES滤器Genesee Scientific#25-246
Lenti-X浓缩试剂Takara Bio631231
BD Accuri C6流式细胞仪BD--
SONY SH800流式分选仪SONY--
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco11995115
胎牛血清Gibco10438026
青霉素–链霉素Gibco15140122
Advanced DMEM/F12 1XInvitrogen12634-010
氢化可的松SigmaH4001
重组人表皮生长因子InvitrogenPHG031
腺嘌呤SigmaA2786
L-谷氨酰胺Invitrogen25030-081
X-VIVO 15培养基LONZA04-418Q
重组人IL-2PeproTech200-02
淋巴细胞分离液Corning25-072-CV
Pan T细胞分离试剂盒Miltenyi130-096-535
Dynabeads人T细胞扩增CD3/CD28Gibco11141D
RetroNectinTakaraT100B
ONE-Glo荧光素酶检测系统PromegaE6110
RealTime-Glo细胞外ATP检测试剂盒PromegaGA5010
多西环素SigmaD1822-500MG
离子霉素SigmaI0634-1MG
毒胡萝卜素SelleckS7895
腺苷三磷酸双磷酸酶SigmaA6410-100UN
三磷酸腺苷SigmaA1852-1VL
2-氨基乙氧基二苯硼酸Sigma100065
完全无钙DMEMGibco21068028
BAPTA钙螯合剂Thermo ScientificB22258
blebbistatinSigmaB0560
大鼠尾I型胶原----
胶原酶Sigma11213857001
Park FX200原子力显微镜Park Systems--
AFM探针Nano World--
B27添加剂(1X)Life Technologies17504044
D-荧光素GoldBioLUCK-1G
腔肠素GoldBioCZ25
Lumina LT Series III成像系统PerkinElmer--
HS2系统配L18-4探头KONICA MINOLTA--
胶原酶PMillipore Sigma11213857001
DNase IRoche10104159001
eBioscience 1X红细胞裂解液Thermo Fisher00-4333-57
RNeasy迷你试剂盒Qiagen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ECM硬度与CAR-T杀伤实验
ECM类型为coverslip、stiff或soft聚丙烯酰胺水凝胶;靶细胞为MDA-MB-231、MDA-MB-231-CD19、U87-MG;CAR-T为EGFR-CAR、CD19-CAR、GD2-CAR;E:T比1:1;共培养24 h;n=3独立重复。
阅读提示:核对Fig. 1b图注及Methods中“Luciferase-based cytotoxicity assay”和图注中ECM条件说明。
机械记录器诱导与读取
记录期DOX孵育2 h,读取期为加入DOX后6 h;DOX浓度500 nM;记录器表达以mCherry/miRFP670归一化;不同实验使用coverslip、stiff、soft ECM或3D胶原1 mg ml−1与6 mg ml−1。
阅读提示:核对Methods中“Cell seeding and drug treatments in mechano-recorder testing”以及Fig. 2和图5相关图注。
钙与ATP机制干预
Ionomycin 1 μg ml−1、thapsigargin 2 μM、apyrase 15 U ml−1、ATP 100 μM;BAPTA 100 μM、2-APB 50 μM、Ca2+ free DMEM;部分处理与DOX共处理2 h,部分预处理30 min后洗出并维持共培养。
阅读提示:核对Methods中“Cell seeding and drug treatments in mechano-recorder testing”“Luciferase-based cytotoxicity assay”及补充图图注。
记录器阳性/阴性细胞分选与RNA-seq
在stiff或soft ECM培养后取记录器表达前20%阳性和后20%阴性细胞;RNA-seq使用Illumina NovaSeq 6000,每样本20 million paired-end reads(2×150 bp);差异基因阈值FDR<0.05且log2 fold change>0.5。
阅读提示:核对Methods中“Bulk RNA sequencing and data analysis”以及Fig. 3a–d图注。
体内重编程CAR-T杀伤实验
NSG小鼠6–8周龄;每只小鼠乳腺脂肪垫注射0.5×106记录器阳性或阴性MDA-MB-231细胞;尾静脉注射1.5×106 EGFR-CAR-T或1.5×106 EGFR-CAR-T + 1.5×106 CD19-CAR-T;DOX 5 mg kg−1腹腔注射,自第5天起每3天一次;杀伤实验n=5只/组,诱导实验n=7只/组。
阅读提示:核对Methods中“In vivo cytotoxicity of cocktail CAR-T cells”“Inducible gene activation in vivo”及Fig. 6a–g图注。