建立不同硬度ECM培养并评估CAR-T杀伤
验证机械软度是否影响CAR-T细胞对癌细胞的杀伤敏感性。
使用不同Young’s modulus的聚丙烯酰胺水凝胶培养MDA-MB-231、MDA-MB-231-CD19和U87-MG细胞,并与相应EGFR-CAR、CD19-CAR或GD2-CAR-T细胞共培养,检测细胞死亡百分比和表面抗原表达。
Identifying and reprogramming softness-driven cancer stem-like cells overcomes CAR-T cell resistance in solid tumours
含二维/三维培养、患者来源细胞、小鼠移植瘤及RNA-seq,并有钙阻断、分选、杀伤等功能验证。
MDA-MB-231乳腺癌细胞(含MDA-MB-231-CD19)与MCF7细胞 U87-MG、Panc-1、PC-3肿瘤细胞 患者来源乳腺癌细胞110-T、015-R、296-R NSG小鼠乳腺脂肪垫移植瘤模型
CAR-T杀伤实验中癌细胞培养于coverslip、stiff或soft ECM,E:T比1:1共培养24 h,n=3独立重复 机械记录器检测中多西环素500 nM处理2 h,加入多西环素后6 h成像,并以miRFP670归一化mCherry 钙阻断处理:Ca2+ free DMEM + BAPTA 100 μM或2-APB 50 μM,预处理30 min并维持24 h共培养 体内重编程CAR-T杀伤中每只小鼠注射0.5×106记录器阴性或阳性MDA-MB-231细胞,尾静脉注射1.5×106 EGFR-CAR-T或混合CAR-T细胞 体内多西环素5 mg kg−1腹腔注射,自第5天起每3天一次,BLI监测肿瘤并归一化至第4天信号
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证机械软度是否影响CAR-T细胞对癌细胞的杀伤敏感性。
使用不同Young’s modulus的聚丙烯酰胺水凝胶培养MDA-MB-231、MDA-MB-231-CD19和U87-MG细胞,并与相应EGFR-CAR、CD19-CAR或GD2-CAR-T细胞共培养,检测细胞死亡百分比和表面抗原表达。
探究软ECM增强CAR-T耐药是否伴随钙信号和细胞外ATP变化。
在coverslip、stiff或soft ECM上培养MDA-MB-231细胞,使用GCaMP检测钙水平并计算累积钙,检测exATP,并用blebbistatin、BAPTA-AM或2-APB进行干预。
建立可将既往钙活动转为稳定荧光标记的记录系统,用于标记不同机械经历的癌细胞。
构建Tet-On 3G与NFAT AND门控制的记录器,以DOX门控TRE启动mCherry报告基因;在MDA-MB-231、MCF7细胞中验证不同ECM硬度、细胞密度、ATP、apyrase、ionomycin、thapsigargin、BAPTA/2-APB等条件下的记录器表达。
确定软度诱导的记录器阳性细胞是否具有癌症干样细胞特征和更强CAR-T耐药性。
从stiff或soft ECM培养细胞中分选记录器阳性和阴性细胞,进行RNA-seq、GO/GSEA分析、乳腺球形成实验、AFM刚度测量和EGFR-CAR-T杀伤实验。
评估机械记录器能否检测不同患者来源乳腺癌细胞的机械干性。
将记录器构建体导入110-T、015-R和296-R患者来源细胞,在不同硬度ECM上培养并进行DOX诱导,检测记录器表达,并结合RNA-seq、GSEA和干性标志物分析。
验证能否将软度相关机械干性转化为CAR-T细胞可识别的抗原信号。
将记录器荧光报告基因替换为截短CD19,在二维和三维ECM中检测CD19表达,并用CD19-CAR-T细胞进行杀伤实验和RNA-seq分析T细胞激活程序。
在动物模型中验证重编程策略是否能提高CAR-T对记录器阳性/软度相关肿瘤的清除效果。
将stiff记录器阴性或soft记录器阳性MDA-MB-231细胞注射入NSG小鼠乳腺脂肪垫,进行DOX诱导、BLI成像、超声弹性成像,并给予EGFR-CAR-T或EGFR-CAR-T+CD19-CAR-T混合治疗。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 质粒构建 | Q5 DNA聚合酶 | NEB | M0491 |
| Gibson组装试剂盒 | NEB | E2611L | |
| 慢病毒生产 | Lenti-X 293T细胞 | Clontech Laboratories | #632180 |
| ProFection哺乳动物转染系统 | Promega | E1200 | |
| 0.45 μm PES滤器 | Genesee Scientific | #25-246 | |
| Lenti-X浓缩试剂 | Takara Bio | 631231 | |
| 流式分析 | BD Accuri C6流式细胞仪 | BD | -- |
| 流式分选 | SONY SH800流式分选仪 | SONY | -- |
| 细胞培养 | Dulbecco改良Eagle培养基 | Gibco | 11995115 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10438026 | |
| 青霉素–链霉素 | Gibco | 15140122 | |
| 患者来源细胞培养 | Advanced DMEM/F12 1X | Invitrogen | 12634-010 |
| 氢化可的松 | Sigma | H4001 | |
| 重组人表皮生长因子 | Invitrogen | PHG031 | |
| 腺嘌呤 | Sigma | A2786 | |
| L-谷氨酰胺 | Invitrogen | 25030-081 | |
| T细胞培养 | X-VIVO 15培养基 | LONZA | 04-418Q |
| 重组人IL-2 | PeproTech | 200-02 | |
| T细胞分离 | 淋巴细胞分离液 | Corning | 25-072-CV |
| Pan T细胞分离试剂盒 | Miltenyi | 130-096-535 | |
| T细胞激活 | Dynabeads人T细胞扩增CD3/CD28 | Gibco | 11141D |
| T细胞转导 | RetroNectin | Takara | T100B |
| 细胞毒性检测 | ONE-Glo荧光素酶检测系统 | Promega | E6110 |
| 细胞外ATP检测 | RealTime-Glo细胞外ATP检测试剂盒 | Promega | GA5010 |
| 机械记录器诱导 | 多西环素 | Sigma | D1822-500MG |
| 钙信号调控 | 离子霉素 | Sigma | I0634-1MG |
| 毒胡萝卜素 | Selleck | S7895 | |
| ATP水解 | 腺苷三磷酸双磷酸酶 | Sigma | A6410-100UN |
| ATP处理 | 三磷酸腺苷 | Sigma | A1852-1VL |
| 钙信号阻断 | 2-氨基乙氧基二苯硼酸 | Sigma | 100065 |
| 完全无钙DMEM | Gibco | 21068028 | |
| BAPTA钙螯合剂 | Thermo Scientific | B22258 | |
| 药理软化 | blebbistatin | Sigma | B0560 |
| 3D胶原培养 | 大鼠尾I型胶原 | -- | -- |
| 3D胶原回收 | 胶原酶 | Sigma | 11213857001 |
| AFM测量 | Park FX200原子力显微镜 | Park Systems | -- |
| AFM探针 | Nano World | -- | |
| 乳腺球培养 | B27添加剂(1X) | Life Technologies | 17504044 |
| 体内生物发光成像 | D-荧光素 | GoldBio | LUCK-1G |
| 腔肠素 | GoldBio | CZ25 | |
| Lumina LT Series III成像系统 | PerkinElmer | -- | |
| 超声弹性成像 | HS2系统配L18-4探头 | KONICA MINOLTA | -- |
| 肿瘤组织消化 | 胶原酶P | Millipore Sigma | 11213857001 |
| DNase I | Roche | 10104159001 | |
| 红细胞裂解 | eBioscience 1X红细胞裂解液 | Thermo Fisher | 00-4333-57 |
| RNA提取 | RNeasy迷你试剂盒 | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ECM硬度与CAR-T杀伤实验 | ECM类型为coverslip、stiff或soft聚丙烯酰胺水凝胶;靶细胞为MDA-MB-231、MDA-MB-231-CD19、U87-MG;CAR-T为EGFR-CAR、CD19-CAR、GD2-CAR;E:T比1:1;共培养24 h;n=3独立重复。 阅读提示:核对Fig. 1b图注及Methods中“Luciferase-based cytotoxicity assay”和图注中ECM条件说明。 |
| 机械记录器诱导与读取 | 记录期DOX孵育2 h,读取期为加入DOX后6 h;DOX浓度500 nM;记录器表达以mCherry/miRFP670归一化;不同实验使用coverslip、stiff、soft ECM或3D胶原1 mg ml−1与6 mg ml−1。 阅读提示:核对Methods中“Cell seeding and drug treatments in mechano-recorder testing”以及Fig. 2和图5相关图注。 |
| 钙与ATP机制干预 | Ionomycin 1 μg ml−1、thapsigargin 2 μM、apyrase 15 U ml−1、ATP 100 μM;BAPTA 100 μM、2-APB 50 μM、Ca2+ free DMEM;部分处理与DOX共处理2 h,部分预处理30 min后洗出并维持共培养。 阅读提示:核对Methods中“Cell seeding and drug treatments in mechano-recorder testing”“Luciferase-based cytotoxicity assay”及补充图图注。 |
| 记录器阳性/阴性细胞分选与RNA-seq | 在stiff或soft ECM培养后取记录器表达前20%阳性和后20%阴性细胞;RNA-seq使用Illumina NovaSeq 6000,每样本20 million paired-end reads(2×150 bp);差异基因阈值FDR<0.05且log2 fold change>0.5。 阅读提示:核对Methods中“Bulk RNA sequencing and data analysis”以及Fig. 3a–d图注。 |
| 体内重编程CAR-T杀伤实验 | NSG小鼠6–8周龄;每只小鼠乳腺脂肪垫注射0.5×106记录器阳性或阴性MDA-MB-231细胞;尾静脉注射1.5×106 EGFR-CAR-T或1.5×106 EGFR-CAR-T + 1.5×106 CD19-CAR-T;DOX 5 mg kg−1腹腔注射,自第5天起每3天一次;杀伤实验n=5只/组,诱导实验n=7只/组。 阅读提示:核对Methods中“In vivo cytotoxicity of cocktail CAR-T cells”“Inducible gene activation in vivo”及Fig. 6a–g图注。 |