神经元SPI1抑制通过下调Rassf10增强脊髓损伤后的轴突再生

Neuronal SPI1 suppression enhances axonal regeneration after spinal cord injury through Rassf10 downregulation

作者信息Dexia Kong, Roujia Kong, Yingying Yan, Haokun Zheng, Xiaowei Qian, Xu Chen, Yan Liu, Mei Liu, Ronghua Wu
PMID42818563
发布时间2026-08-13
DOI10.1093/burnst/tkag054

实验完整度

高

包含体外原代神经元、斑马鱼突变体及大鼠半切模型等多个独立证据层级,并进行荧光素酶、ChIP、Cut&Tag及功能挽救等机制验证。

主要模型

原代大鼠E14脊髓神经元 CRISPR/Cas9介导的斑马鱼spi1a/spi1b突变体 大鼠T10脊髓半切AAV9-Syn-shSPI1模型

重点核对

原代大鼠E14脊髓神经元中siRNA敲低或质粒过表达SPI1后轴突长度变化 斑马鱼spi1a/spi1b sgRNA与Cas9共注射后的轴突生长及SCI后功能恢复 大鼠T8脊髓注射AAV9-Syn-EGFP-shSPI1(3.59×10^12 vg/ml)后T10半切模型的BBB评分、CatWalk、Hargreaves及电生理 荧光素酶报告基因验证SPI1结合Rassf10启动子−327至−311 bp位点 ChIP–qPCR和Cut&Tag验证SPI1与Rassf10启动子结合,以及p38 MAPK磷酸化变化

摘要

背景:脊髓损伤(SCI)后的轴突再生受到脊髓神经元内在抑制特性的阻碍。转录因子SPI1(PU.1)在髓系细胞中的作用已被充分确立,但其在神经元中,特别是在调控轴突发生中的功能,仍不明确。近期单细胞测序研究的数据表明,SPI1在脊髓神经元中明确表达。因此,我们旨在探究SPI1对轴突生长的影响及其潜在分子机制。方法:利用原代培养的大鼠脊髓神经元、CRISPR/Cas9介导的斑马鱼SPI1突变以及大鼠脊髓半切术后神经元特异性AAV9–shRNA递送,来操控SPI1表达。采用RNA-seq、荧光素酶报告基因实验、ChIP–qPCR和Cut&Tag实验来鉴定并验证Rassf10为SPI1的候选靶基因。在体外和体内评估损伤后轴突生长和功能恢复。结果:神经元SPI1表达在脊髓发育过程中逐渐下降,但在SCI后显著上调。SPI1敲低促进轴突生长,而SPI1过表达显著降低轴突长度。转录组分析揭示Rassf10是SPI1的靶基因,随后通过荧光素酶报告基因、ChIP–qPCR和Cut&Tag实验结果得到验证。在体内,斑马鱼spi1突变和大鼠神经元特异性SPI1敲低促进了SCI后轴突再生和功能恢复,表现为GAP43、NF200和5-HT表达显著增加以及运动功能改善,与对照动物相比。SPI1或Rassf10的缺失增加了p-p38丝裂原活化蛋白激酶水平并促进轴突生长,而p38抑制消除了这些效应。结论:SPI1通过转录激活Rassf10表达来损害轴突生长和再生长,这种抑制作用由p38 MAPK信号传导的抑制所介导。这些发现表明,靶向SPI1–Rassf10通路是改善SCI后神经修复的一种有前景的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经元SPI1是否调控脊髓损伤后的轴突生长及其潜在分子机制是什么。
核心机制
SPI1直接结合Rassf10启动子并转录激活Rassf10表达,升高的Rassf10抑制p38 MAPK磷酸化,从而抑制轴突生长;SPI1或Rassf10缺失则增加p38 MAPK磷酸化并促进轴突生长。
主要证据
在原代大鼠脊髓神经元中,SPI1敲低增加轴突长度而过表达降低轴突长度;荧光素酶、ChIP–qPCR和Cut&Tag证明SPI1直接结合Rassf10启动子;斑马鱼spi1突变和大鼠神经元特异性SPI1敲低促进轴突再生及功能恢复;SPI1或Rassf10缺失增加p-p38水平,p38抑制剂SR318和PD169316消除轴突生长增加效应。
研究意义
研究将SPI1重新定义为免疫反应和神经元可塑性的双重调节因子,并提示靶向SPI1–Rassf10轴及p38 MAPK是促进SCI后神经修复的潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

脊髓发育与损伤后SPI1表达动态分析

明确SPI1在脊髓神经元中的表达模式及其在发育和SCI后的变化。

分析公开小鼠脊髓单细胞RNA-seq数据GSE172167,并在大鼠E18、P1W、P3W、P8W取材,通过qPCR、Western blot和免疫荧光检测SPI1表达及亚细胞定位;SCI后检测SPI1上调。

2

体外调控SPI1表达对轴突生长的影响

验证SPI1对原代脊髓神经元轴突生长的调控作用。

培养E14大鼠脊髓神经元,通过siRNA敲低或过表达质粒调控SPI1,并使用SPI1特异性抑制剂PU.1-IN-1处理,免疫荧光检测Tuj1标记的轴突长度和长度分布。

3

斑马鱼spi1突变对轴突生长和功能恢复的影响

跨物种验证spi1在轴突生长及SCI后恢复中的作用。

在Tg(hb9:eGFP)斑马鱼中利用CRISPR/Cas9共注射spi1a和spi1b sgRNA,评估30 hpf轴突长度;3 dpf进行脊髓损伤,1 d/SCI评估越过损伤位点轴突数,4 d/SCI进行运动行为学分析。

4

大鼠神经元特异性SPI1敲低及SCI后功能评估

验证神经元特异性SPI1敲低能否促进SCI后轴突再生和功能恢复。

成年SD大鼠T8脊髓注射AAV9-Syn-EGFP-shSPI1或shCtrl,5天后T10右侧半切,进行BBB评分、CatWalk、Hargreaves、电生理及免疫荧光检测GAP43、NF200、5-HT。

5

SPI1下游靶基因Rassf10的鉴定与验证

筛选并验证SPI1调控轴突生长的下游靶基因。

整合发育转录组、Cut&Tag和siSPI1 RNA-seq数据取交集,鉴定Rassf10;通过qPCR、荧光素酶报告基因、ChIP–qPCR、Cut&Tag–qPCR验证SPI1结合Rassf10启动子,并通过敲低/过表达及联合干预验证功能。

6

p38 MAPK通路在SPI1–Rassf10轴调控轴突生长中的作用验证

明确p38 MAPK是否为SPI1–Rassf10下游介导轴突生长的信号通路。

对siSPI1神经元进行转录组测序和KEGG分析;Western blot检测SPI1或Rassf10敲低后p-Erk1/2、p-p38水平;使用PD169316和SR318处理并检测轴突长度;在大鼠SPI1敲低后检测p38和Erk磷酸化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RNA快速纯化试剂盒Yibin BioES-RN001
HiScript III第一链cDNA合成试剂盒(含gDNA wiper)VazymeR312-02
AceQ qPCR SYBR Green预混液(High ROX)Vazymeq142-02
qTower3G平台Analytik Jena--
SPI1抗体Proteintech66618-2-Ig
p-p44/42 MAPK抗体CST4370
总p44/42 MAPK抗体CST4695 T
总p38 MAPK抗体CST8690
p-p38 MAPK抗体CST4511 T
β-actin抗体Proteintech60008-1-Ig
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
化学发光底物NCM BiotechP10300
Tanon 5200成像系统Tanon--
抗PU.1多克隆抗体InvitrogenPA5-80066
NeuN抗体Abcamab104224
Iba1抗体Abcamab283346
GAP43抗体Proteintech16971-1-AP
GFAP抗体Abcamab4674
NF200抗体SigmaN4142
5-HT抗体Immunostar20079
NeuroCult™ SM1STEMCELL5711
L-谷氨酰胺BeyotimeC0212
纯化小鼠抗TUBB3抗体BioLegend801202
Cas9蛋白GenScript Biotech CorporationZ03388
Lipofectamine 8000转染试剂BeyotimeC0533
双荧光素酶报告基因检测试剂盒MeilunBio®MA0518-1
SimpleChIP®酶解染色质IP试剂盒(磁珠)CST9005
TruSeq链特异性mRNA LT试剂盒Illumina--
Hyperactive通用Cut&Tag检测试剂盒(Illumina)VazymeTD904
CatWalk XT系统Noldus Information Technology--
IITC Model 390抬高玻璃平台IITC390
Keypoint 2便携式肌电图仪Dantec--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
原代神经元培养与转染
大鼠品系(SD)、胚胎日龄(E14)、siRNA终浓度(200 nM)、电转参数(275 V,0.7 ms)、轴突定义(>20 μm)
阅读提示:Methods中Primary neuron culture和Cell transfection小节,以及Figure 2图注
斑马鱼spi1突变与SCI模型
斑马鱼品系(Tg(hb9:eGFP))、sgRNA靶向spi1a/spi1b、注射体积(1 nL)、SCI时间(3 dpf)、行为学温度(28.5°C)
阅读提示:Methods中Single-guide RNA synthesis and zebrafish embryo microinjection、Establishment of the zebrafish tissue injury model及Zebrafish behavioral assays小节
大鼠AAV9注射与脊髓半切
大鼠体重(200-220 g)、AAV9滴度(shSPI1 3.59×10^12 vg/ml,shCtrl 3.63×10^12 vg/ml)、注射体积(2 μl)、流速(0.5 μl/min)、半切节段(T10)
阅读提示:Methods中Adeno-associated virus injection和Rat SCI小节,以及Figure 4a图注
SPI1与Rassf10启动子结合验证
Rassf10启动子区域(−1000至+1 bp)、SPI1结合基序(−327至−311 bp)、荧光素酶转染时间(48 h)、ChIP片段大小(150-900 bp)
阅读提示:Methods中Luciferase reporter assay and chromatin immunoprecipitation和Cut&Tag小节,以及Figure 6i和6j图注
p38 MAPK通路功能挽救
p38抑制剂种类(PD169316和SR318)、浓度(PD169316 10 μM;SR318 7和10 μM)、处理时间(48 h)、p38磷酸化定量(Western blot n=3)
阅读提示:Results中p38 MAPK通路相关段落,以及Figure 7d、7e和Supplementary Fig S4c-d图注