肠道菌群来源的5-HTP穿透宿主血脑屏障并改善自闭症症状

Gut microbiota-derived 5-HTP penetrates the host blood-brain barrier and ameliorates autism symptoms

作者信息Bei Li, Qianqian Yang, Min Li, Junqing He, Zhiqi Zhang, Xuchun Wan, Zihao Mo, Ruizhen Li, Shihan Li, Weirong Xu, Man Gu, Hanning Huang, Wei Li, Ziming Huang, Hongju Yang, Wei-Hua Chen, Zhi Liu
PMID42764917
发布时间2026-09
DOI10.1016/j.apsb.2026.06.025

实验完整度

高

含ASD患者粪便宏基因组与代谢组、多种小鼠模型(FMT、MeCP2-TG、BTBR)、工程菌干预、行为学、树突棘形态、Western blot、RNA-seq及示踪验证

主要模型

ASD儿童粪便样本(n=20)与TD儿童粪便样本(n=20) ASD儿童粪便移植C57BL/6J小鼠模型(ASD-FMT) MeCP2-TG转基因自闭症小鼠模型 BTBR自发性自闭症小鼠模型

重点核对

ASD-FMT小鼠分组:生理盐水、EcN WT、EcN_5-HTP、EcN_5-HT,n=12/组 MeCP2-TG小鼠EcN灌胃剂量:1×10^9 CFU/100 μL,每两天一次,持续21天(或两周) ERK抑制剂SL-327给药:20 mg/kg腹腔注射,持续三周 TrkB激活剂LM22B-10给药:22 mg/kg腹腔+10 mg/kg鼻内;EGFR激活剂NSC 228155经海马齿状回脑内递送 5-HTP-d3/5-HT-d4示踪:口服灌胃后0、1、3、5 h采集血清和脑组织,n=3/组

摘要

自闭症谱系障碍(ASD)是一种高度流行的神经发育疾病,人们越来越认识到其与肠道微生物组的密切关联。然而,由于对共生细菌与宿主神经系统相互作用的分子机制了解有限,针对肠道菌群的疗法开发一直受到阻碍。在本研究中,鸟枪法宏基因组测序和UPLC-MS/MS靶向代谢分析鉴定了人类ASD患者和ASD小鼠模型肠道菌群中色氨酸代谢物的改变。值得注意的是,我们证明共生细菌来源的5-羟色氨酸(5-HTP),即色氨酸的代谢物,可改善这些小鼠模型中的焦虑、刻板重复行为以及社交缺陷。此外,5-HTP能够穿过血脑屏障并抑制受体酪氨酸激酶(RTK)配体的过表达,从而抑制下游的RTK/MAPK/ERK信号级联。这种抑制随后使MeCP2小鼠海马中树突棘的过度稳定正常化。我们的研究表明,产生5-HTP的肠道菌群可改善多种ASD动物模型的ASD症状,阐明了肠道菌群与ASD发病和治疗之间的分子机制,并提供了一种通过肠道原生细菌表达神经元调节小分子来改善ASD的有前景的治疗方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肠道菌群来源的色氨酸代谢物5-HTP是否能够穿过血脑屏障并改善自闭症相关行为,其分子机制是什么?
核心机制
肠道菌群来源的5-HTP穿过血脑屏障,抑制RTK配体(BDNF、NRG3)过表达,进而抑制下游RTK受体(TrkB、EGFR)/MAPK/ERK信号级联,使海马树突棘过度稳定正常化。
主要证据
在ASD-FMT、MeCP2-TG和BTBR小鼠模型中,EcN_5-HTP干预改善社交、重复刻板及焦虑行为;Western blot显示EcN_5-HTP抑制ERK、TrkB和EGFR过度磷酸化;高尔基染色显示树突棘密度恢复正常;氘代示踪证实5-HTP-d3进入血清和脑组织,而5-HT-d4未在脑中检出。
研究意义
研究阐明了肠道菌群与ASD发病和治疗之间的分子机制,证明通过肠道原生细菌表达神经元调节小分子是改善ASD的有前景的治疗方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ASD患者与小鼠模型肠道菌群及色氨酸代谢物分析

鉴定ASD中肠道菌群组成和色氨酸代谢途径的改变

对20名未用药ASD儿童和20名TD儿童粪便进行宏基因组测序和UPLC-MS/MS靶向代谢分析,并在MeCP2-TG小鼠模型中检测粪便和血清色氨酸代谢物。

2

构建产5-HTP/5-HT工程菌EcN

建立可在体内递送5-HTP和5-HT的微生物平台

敲除EcN的tanA基因以阻断吲哚合成,导入5-HTP生物合成途径,并将来自Oryza sativa的TDC整合入基因组构建EcN_5-HT;检测培养上清中5-HTP和5-HT产量。

3

ASD-FMT小鼠模型行为学验证

验证菌群来源5-HTP对ASD儿童粪便移植小鼠行为异常的作用

六周龄C57BL/6J受体小鼠经抗生素混合物处理两周后,接受ASD儿童粪便上清灌胃14天,再分别给予EcN WT、EcN_5-HTP、EcN_5-HT或生理盐水,进行三箱社交、埋珠、高架十字迷宫和旷场测试。

4

MeCP2-TG及BTBR小鼠模型行为学与工程菌干预

验证菌群来源5-HTP在不同ASD小鼠模型中的行为改善效果

抗生素处理MeCP2-TG小鼠后口服EcN WT、EcN_5-HTP或EcN_5-HT,进行三箱社交、埋珠、高架十字迷宫和旷场测试;在BTBR小鼠中重复实验;并直接口服5-HTP试剂观察行为变化。

5

海马树突棘形态及ERK通路检测

验证5-HTP对海马神经元树突发育和MAPK/ERK通路的影响

高尔基染色分析海马神经元树突分支复杂度和树突棘密度;Western blot检测海马ERK和磷酸化ERK水平;RNA-seq分析海马转录组。

6

ERK抑制剂行为学验证

验证ERK通路抑制是否足以改善ASD相关行为

对MeCP2-TG小鼠腹腔注射ERK抑制剂SL-327三周后进行行为学测试。

7

RTK配体及受体活性检测与激活剂阻断验证

验证5-HTP通过RTK配体/RTK受体/MAPK/ERK轴发挥作用

检测RTK配体基因表达和TrkB、EGFR磷酸化水平;在EcN_5-HTP干预同时给予TrkB激活剂LM22B-10或EGFR激活剂NSC 228155,观察行为改善是否被阻断。

8

5-HTP穿越血脑屏障的示踪验证

验证肠道来源5-HTP能否穿过血脑屏障进入脑组织

八周龄MeCP2-TG雄性小鼠口服5-HTP-d3或5-HT-d4,在0、3、5 h处死,采集血清和脑组织,UPLC-MS/MS检测氘代标记物;同时用免疫荧光检测海马5-HTP和5-HT水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
磁珠土壤和粪便DNA提取试剂盒TIANGEN--
VAHTS DNA纯化磁珠Vazyme--
Qubit 3.0荧光定量仪Thermo Fisher Scientific--
DNBSEQ-T7测序平台MGI--
新霉素BBI--
甲硝唑BBI--
聚乙二醇Aladdin--
异氟烷Sigma−Aldrich--
甲醇Sinopharm--
AB Sciex 4500 UPLC-MS/MS系统AB Sciex--
Waters BEH C18色谱柱Waters--
链霉素BBI--
卡那霉素BBI--
色氨酸Sigma–Aldrich--
酪蛋白水解物BBI--
胰蛋白胨Oxoid--
酵母提取物Oxoid--
氯化钠Sinopharm--
磷酸盐缓冲液BBI--
活性炭溶液Rhawn--
QIAamp粪便DNA提取试剂盒Qiagen--
AxyPrep DNA凝胶回收试剂盒Axygen--
QuantiFluor-ST荧光定量仪Promega--
Illumina MiSeq测序平台Illumina--
氘代3个氢的5-HTPBePure--
氘代4个氢的5-HTBePure--
Trizol试剂Vazyme--
Agilent Bioanalyzer 2100Agilent Technologies--
Hieff NGS® mRNA分离试剂盒YEASEN--
DNBSEQ-T7测序平台MGI--
Golgi-Cox OptimStainTM试剂盒----
Olympus BX-50显微镜Olympus--
牛血清白蛋白Beyotime--
抗5-HTP抗体Abcam--
抗5-HT抗体Abcam--
抗Iba1抗体Abcam--
HRP偶联二抗Abcam--
DAPISigma−Aldrich--
Nikon Eclipse CI荧光显微镜Nikon--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
GAPDH抗体AffinityAF7021
ERK1/2抗体AffinityAF0155
磷酸化ERK1/2 (Thr202/Tyr204)抗体AffinityAF1015
TrkB抗体AffinityAF6461
磷酸化TrkB (Tyr515)抗体Absinabs131087
EGFR抗体AffinityAF6452
磷酸化EGFR (Ser1070)抗体AffinityAF3044
抗兔IgG HRP抗体Abcamab6721
IVIS成像系统----
TRIzol试剂Invitrogen--
HiScript II第一链cDNA合成试剂盒Vazyme--
CFX Connect实时PCR检测系统Bio-Rad--
SYBR Green预混液Yeasen--
不锈钢双极电极Plastics One--
Digital Lynx 16通道采集系统Neuralynx--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ASD患者与TD儿童粪便样本采集
ASD诊断标准(DSM-5、ABC≥53、CARS≥30)、样本量(各20例)、排除标准(近一个月使用补充剂/抗生素/药物)、粪便保存条件(−80°C)
阅读提示:Methods 2.1 Study subject recruitment;Fig. 1A–B;Supporting Information Table S1
ASD-FMT小鼠模型构建与EcN干预
ABX混合物配方及处理时间(两周)、PEG处理(10% w/v,3天)、粪便上清浓度(0.2 g/mL)及灌胃量(200 μL/天,14天)、EcN剂量(1×10^9 CFU/100 μL,每两天一次,21天)、分组(n=12/组)
阅读提示:Methods 2.4 FMT and co-house;Methods 2.8 EcN administration;Fig. 2B–E′
MeCP2-TG小鼠模型EcN干预
小鼠来源(The Jackson Laboratory, Stock No: 008679)、性别(仅雄性)、ABX预处理(7天)、EcN剂量与给药频率(1×10^9 CFU/100 μL,每两天一次,21天)、行为测试分组(n=12)
阅读提示:Methods 2.3 Animal model;Methods 2.8 EcN administration;Fig. 2F–J′
5-HTP穿越血脑屏障示踪实验
示踪剂(5-HTP-d3、5-HT-d4)、给药方式(口服灌胃)、采样时间点(0、3、5 h;图注描述为1、2、5 h,存在差异)、每组时间点小鼠数(n=3)、检测方法(UPLC-MS/MS)
阅读提示:Methods 2.11 Tracing experiment;Fig. 5K–O;Supporting Information Fig. S7A
RTK受体激活剂阻断实验
LM22B-10给药方式与剂量(22 mg/kg腹腔+10 mg/kg鼻内)、NSC 228155给药方式(海马齿状回脑内递送)、行为测试分组(n=10)
阅读提示:Methods 2.8相关描述;Results 3.4;Fig. 4H–L′