肝细胞因子FGL1通过整合素β1介导的内皮-间充质转化驱动内皮损伤和动脉粥样硬化形成

Hepatokine FGL1 drives endothelial injury and atherogenesis via integrin β 1-mediated endothelial-mesenchymal transition

作者信息Yixiu Zhao, Huan Chen, Liuqing Yin, Ruirui Meng, Jiangfei Zheng, Yue Zhang, Zhiqi Wang, Yi Chen, Rui Xu, Jing Liu, Yanxi Li, Na An, Houwei Li, Yan Zhang
PMID42765063
发布时间2026-09
DOI10.1016/j.apsb.2026.06.005

实验完整度

高

含患者血浆样本、Apoe−/−小鼠模型、多种内皮细胞系体外实验,并进行了功能验证和机制通路验证。

主要模型

52例动脉粥样硬化患者及52例健康对照血浆样本 雄性Apoe−/−小鼠高脂饮食动脉粥样硬化模型 HUVECs、HAECs和MAECs内皮细胞

重点核对

患者血浆样本:非ASCVD对照52例,ASCVD患者52例,年龄35–65岁,排除空腹血糖≥7.0 mmol/L或HbA1c≥6.5%者。 Apoe−/−小鼠:雄性,20–22 g,高脂饮食16周或12周诱导动脉粥样硬化。 FGL1重组蛋白处理:HUVECs使用50、100、200 ng/mL处理24 h;小鼠静脉注射15 μg/kg,每周一次。 整合素β1阻断抗体P5D2:HUVECs使用10 μg/mL预处理1 h;小鼠静脉注射15 μg/kg,每周一次,共12周。 RGD肽:小鼠静脉注射5 mg/kg,每周两次,共12周。

摘要

动脉粥样硬化由代谢紊乱和内皮功能障碍驱动;然而其发病机制的确切分子机制尚未完全阐明。纤维蛋白原样蛋白1(FGL1)是一种成熟的肝细胞因子,在调节肿瘤发生和代谢功能障碍中起关键作用,而其参与动脉粥样硬化形成尚不清楚。我们的临床和临床前研究揭示,动脉粥样硬化患者和小鼠血浆FGL1水平升高,与动脉狭窄严重程度相关。长期高脂饮食暴露特异性上调肝脏FGL1表达。肝脏FGL1过表达加速动脉粥样硬化,而肝脏特异性敲低减少斑块负荷。外源性给予FGL1加速内皮损伤和动脉粥样硬化进展。机制上,肝脏来源的FGL1通过纤维蛋白原C端结构域Trp225介导与整合素β1的vWFA结构域结合,在血管内皮中积累。这种相互作用促进整合素β1的构象变化和整合素β1/ILK1复合物形成,共同激活FAK/ERK和Smad信号,驱动内皮细胞的转录重编程。通过整合素β1阻断抗体、FGL1中和抗体或RGD肽靶向FGL1-整合素β1轴的治疗干预,在鼠模型中有效减轻内皮损伤和动脉粥样硬化进展。这些发现确立肝脏FGL1作为血管病理生理学的新型内分泌调节因子,突出FGL1-整合素β1轴作为内皮保护和动脉粥样硬化管理的有前景的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肝细胞因子FGL1是否参与动脉粥样硬化形成,及其驱动内皮损伤的分子机制是什么?
核心机制
肝脏来源的FGL1通过其FReDs结构域Trp225与内皮细胞整合素β1的vWFA结构域结合,促进整合素β1构象变化及整合素β1/ILK1复合物形成,依次激活FAK/ERK和Smad信号通路,驱动内皮-间充质转化(EndoMT),导致内皮损伤和动脉粥样硬化进展。
主要证据
临床患者和小鼠血浆FGL1水平升高并与动脉狭窄严重程度相关;肝脏FGL1过表达加速动脉粥样硬化,肝脏特异性敲低减少斑块负荷,外源FGL1逆转敲低保护效应;体外FGL1剂量依赖性诱导HUVECs、HAECs和MAECs发生EndoMT;Co-IP、Pull-down、SPR和Duolink PLA证实FGL1与整合素β1直接结合及Trp225关键作用;整合素β1抗体、FGL1中和抗体和RGD肽在鼠模型中减轻内皮损伤和斑块进展。
研究意义
研究将FGL1确立为血管病理生理学的新型内分泌调节因子,提示血浆FGL1可作为早期动脉粥样硬化诊断生物标志物,FGL1–整合素β1轴可作为内皮保护和动脉粥样硬化管理的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本与动物模型分析FGL1与动脉粥样硬化的相关性

验证循环FGL1水平与动脉粥样硬化进展及内皮功能障碍的关联。

检测52例动脉粥样硬化患者和52例健康对照血浆FGL1水平,分析其与SYNTAX评分和CRP的相关性;建立Apoe−/−小鼠高脂饮食模型,检测血浆FGL1动态变化、主动脉血流动力学及内皮FGL1积累和EndoMT标记物。

2

肝脏FGL1过表达和敲低对动脉粥样硬化的功能验证

验证肝脏来源FGL1在动脉粥样硬化进展中的因果作用。

使用AAV8-TBG-Fgl1或AAV8-TBG-shFgl1载体分别过表达或敲低小鼠肝脏FGL1,检测血浆FGL1、主动脉EndoMT、斑块负荷、坏死核心和胶原沉积;外源给予重组FGL1蛋白验证逆转效应。

3

体外验证FGL1诱导内皮细胞EndoMT

确认FGL1对内皮细胞表型、屏障功能和细胞骨架的直接作用。

用不同浓度FGL1处理HUVECs、HAECs和MAECs,检测细胞形态、F-actin重构、增殖、胶原分泌、通透性和EndoMT标记物及转录因子表达。

4

验证FGL1与整合素β1的相互作用及ILK1依赖的激活机制

明确FGL1是否直接结合并激活内皮整合素β1,以及ILK1在其中的作用。

通过Western blot检测FGL1处理后整合素β1磷酸化动态;Co-IP验证FGL1与整合素β1相互作用;Duolink PLA检测整合素β1与ILK1相互作用;siRNA敲低ILK1后检测整合素β1激活。

5

解析FGL1下游FAK/ERK和Smad信号通路

确定FGL1诱导EndoMT的细胞内信号级联顺序。

Western blot检测FGL1处理后FAK、ERK1/2、Smad2/3磷酸化及Smad4核转位;使用FAK抑制剂GSK2256098、MEK抑制剂PD98059和ALK抑制剂SB431542进行药理学干预;体内检测主动脉内皮FAK/ERK/Smad激活。

6

鉴定FGL1与整合素β1结合的关键位点

确定FGL1与整合素β1相互作用的关键氨基酸残基。

通过分子对接分析预测FGL1的Trp225与整合素β1的vWFA结构域结合;构建FGL1W225A突变体和ITGB1K368A突变体;Co-IP、Pull-down和SPR验证结合能力;检测突变体对下游信号和EndoMT的影响。

7

靶向FGL1–整合素β1轴在体内验证治疗效果

评估整合素β1抗体、RGD肽和FGL1中和抗体对动脉粥样硬化进展的治疗效果。

在Apoe−/−小鼠高脂饮食12周模型中,分别给予整合素β1抗体、RGD肽或FGL1中和抗体,检测血浆FGL1、内皮FGL1积累、整合素β1激活、EndoMT标记物、主动脉血流动力学、斑块负荷、坏死核心和胶原沉积。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
人FGL1 ELISA试剂盒CusbioCSB-EL008653HU
CRP ELISA试剂盒ProteintechKE00004
小鼠FGL1 ELISA试剂盒CusbioCSB-EL008653MO
全自动生化分析仪Hitachi7180
重组FGL1蛋白R&D Systems10285-HE-050
FGL1抗体Bio X CellBE0332
整合素β1抗体R&D SystemsMAB17781
RGD肽MCEHY-P1740A
OCT包埋剂Sakura4683
油红OSigmaO0625
DAPIBeyotimeC1006
辣根过氧化物酶BeyotimeA0308
TMB显色底物溶液BeyotimeP0206
TMB终止液BeyotimeP0215
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0012
免疫沉淀试剂盒(Protein A/G磁珠)BeyotimeP2179S
Pierce Pull-Down PolyHis蛋白试剂盒Thermo Scientific21277
Trizol试剂Life Technologies15596018
ReverTra Ace qPCR逆转录试剂盒TOYOBOFSQ-101
SYBR Green实时PCR预混液TOYOBOQPK-201
Sircol可溶性胶原检测试剂盒BiocolorS1000
Triton X-100BiosharpBS084
Duolink邻位连接实验试剂盒Sigma-AldrichDUO921012
胎牛血清LonseraS711-001
青霉素/链霉素HaigeneS0198
蛋白酶抑制剂混合物SigmaP8340
磁珠BeyotimeFMS012
胆固醇检测试剂盒Solarbio Life ScienceBC1985
甘油三酯检测试剂盒Solarbio Life ScienceBC0625
改良Masson三色染色试剂盒SolarbioG1346
Davidson固定液SolarbioG2340
GSK2256098TopscienceT2281
PD98059TopscienceT2623
SB431542TopscienceT1726
重组FGL1蛋白R&D Systems10285-HE

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
患者和对照数量各52例;年龄35–65岁;排除空腹血糖≥7.0 mmol/L或HbA1c≥6.5%;无他汀使用史;血浆离心条件3000×g,15 min。
阅读提示:回看Materials and methods 2.1 Human blood samples and ethics statement;Table 1。
Apoe−/−小鼠动脉粥样硬化模型建立
雄性Apoe−/−小鼠,20–22 g;高脂饮食配方(63.6%基础饲料,20%蔗糖,15%猪油,1.2%胆固醇,0.2%胆酸钠);喂养时间16周或12周;随机分组。
阅读提示:回看Materials and methods 2.2 Mice, antibody, peptide, recombinant protein, virus and virus infection;Figure 1F。
肝脏FGL1过表达和敲低
AAV8-TBG-Fgl1或AAV8-TBG-shFgl1载体构建和注射;空载体作为阴性对照;处理4周后检测。
阅读提示:回看Materials and methods 2.2;Results 3.2和3.3;Figure 2A和Figure 3A。
FGL1重组蛋白和抗体体内给药
FGL1重组蛋白15 μg/kg,静脉注射,每周一次;FGL1抗体15 μg/kg,静脉注射,每周一次;整合素β1抗体15 μg/kg,静脉注射,每周一次;RGD肽5 mg/kg,静脉注射,每周两次;给药时长12周。
阅读提示:回看Materials and methods 2.2;Figure 3A、Figure 6E、Figure 9A、Figure 9H和Figure 10A。
体外FGL1处理内皮细胞
HUVECs、HAECs、MAECs来源;FGL1浓度50、100、200 ng/mL;处理时间24 h;TGFβ1 10 ng/mL作为阳性对照;细胞传代数3–8代。
阅读提示:回看Materials and methods 2.10 Cell culture;Figure 4A和Figure 4F。
信号通路抑制剂处理
GSK2256098 0.5 μmol/L预处理1 h;PD98059 30 μmol/L预处理1 h;SB431542 1 μmol/L;整合素β1抗体10 μg/mL预处理1 h。
阅读提示:回看Materials and methods 2.10;Results 3.6;Figure 6B和Figure 6C;Figure 7A。
FGL1与整合素β1结合位点验证
FGL1W225A和ITGB1K368A突变体构建;SPR检测FGL1浓度31.25–500 nmol/L,KD=4.15×10−12 mol/L;Pull-down使用His标签FGL1和Flag标签ITGB1。
阅读提示:回看Results 3.8;Figure 8;Supporting Information Fig. S9和S10。