髓系Cdc42缺陷介导的巨噬细胞焦亡加重1型糖尿病中的糖尿病心肌病

Myeloid Cdc42 deficiency-mediated macrophage pyroptosis exacerbates diabetic cardiomyopathy in type 1 diabetes mellitus

作者信息Li-Xin Liu, Jing He, Feng Zhang, Xin-Qiao Li, Xin-Yu Xiao, Xiao-Ying Zhou, Qi-Kun Yang, Ming-Hui Wu, Xu-Hui Qiao, Bing-Qian Lu, Zhe-Yu Pang, Hong-Wei Sun, Zhao-Xia Chen, Ying-Jie HongShu, Hong-Bo Xin, Ke-Yu Deng
PMID42363173
发布时间2026-06
DOI10.1186/s12933-026-03268-z

实验完整度

高

包含STZ诱导T1DM小鼠模型、髓系特异性Cdc42敲除小鼠、体外巨噬细胞与心肌细胞/成纤维细胞共培养、scRNA-seq分析等多个独立证据层级,并进行了功能与机制验证。

主要模型

髓系特异性Cdc42敲除(Cdc42Mye)和Cdc42Flox雄性小鼠STZ诱导的T1DM模型 小鼠腹腔巨噬细胞(MPMs) H9c2大鼠心肌细胞 NIH/3T3小鼠成纤维细胞 公开小鼠心脏scRNA-seq数据集(GSE213337和GSE244475)

重点核对

STZ注射剂量与方案:50 mg/kg/day,连续6天腹腔注射 小鼠周龄与观察时间:10-12周龄雄性小鼠,STZ后观察16周 高糖/脂多糖刺激条件:HG 33.3 mM + LPS 100 ng/mL 抑制剂使用浓度与时间:ML141或U0126 10 µM;Anakinra 100 nM预处理30分钟 样本量:每组3-12只小鼠,具体见各图注

摘要

背景:糖尿病心肌病(DCM)是1型糖尿病(T1DM)患者的严重并发症之一,表现为心功能受损和因收缩功能障碍而更快进展为心力衰竭。已有研究表明,巨噬细胞介导的慢性炎症与DCM密切相关。细胞分裂周期42(Cdc42)在调节巨噬细胞的极化、迁移和吞噬作用中起关键作用,然而Cdc42在DCM中的潜在机制仍有待阐明。方法:使用髓系特异性Cdc42敲除(Cdc42Mye)和Cdc42Flox/Flox(Cdc42Flox)雄性小鼠(10–12周龄),通过连续6天注射链脲佐菌素(STZ,50 mg/kg/天)并随后观察16周,建立T1DM小鼠DCM模型。通过超声心动图在体内评估心脏功能,并分别通过苏木精和伊红(HE)、Masson三色染色、天狼星红染色和免疫组织化学染色评估心脏形态学和组织病理学改变。通过多重免疫荧光酪胺信号放大(TSA)检测或Rosa mTmG荧光髓系追踪报告小鼠检查髓系巨噬细胞的浸润。通过Western blot和免疫荧光分析评估巨噬细胞焦亡、心肌细胞损伤和肌成纤维细胞活化。此外,使用来自STZ诱导的T1DM小鼠的公开GSE数据集进行单细胞RNA测序(scRNA-seq)数据分析,以探索DCM中巨噬细胞介导的信号传导。结果:髓系Cdc42缺失加重了T1DM诱导的心脏功能障碍和组织病理学改变(包括心脏纤维化),并促进了T1DM诱导的巨噬细胞浸润和巨噬细胞M1极化,且通过激活小鼠心脏中的NLRP3炎症小体促进了T1DM诱导的焦亡。值得注意的是,在正常条件下,Cdc42Mye和Cdc42Flox小鼠之间没有显著差异。此外,scRNA-seq数据的基因集富集分析(GSEA)表明,DCM中巨噬细胞Cdc42低表达与NF-κB信号通路正相关。机制上,我们证明Cdc42缺陷或抑制通过激活ERK1/2-NF-κB-白细胞介素-1β信号通路介导的巨噬细胞焦亡,加重了T1DM诱导的心肌细胞损伤和心脏纤维化。结论:本研究表明,髓系Cdc42缺陷或抑制通过促进巨噬细胞焦亡和炎症反应,加重了T1DM诱导的DCM心肌细胞损伤和心脏纤维化,这可能为1型糖尿病DCM的免疫调节干预提供一个新的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Cdc42如何调节巨噬细胞功能以介导1型糖尿病中的糖尿病心肌病?
核心机制
髓系Cdc42缺陷通过激活ERK1/2-NF-κB信号通路促进巨噬细胞焦亡和M1极化,释放IL-1β等促炎细胞因子,进而加重心肌细胞损伤和心脏纤维化。
主要证据
在STZ诱导的T1DM小鼠模型中,髓系Cdc42缺失加重心脏功能障碍和纤维化,增加巨噬细胞浸润和M1极化,上调焦亡相关蛋白(NLRP3、GSDMD-N、cleaved-IL-1β等)和p-ERK1/2、p-NF-κB;体外实验使用MPMs和H9c2/3T3共培养系统,通过ERK抑制剂U0126和IL-1R拮抗剂Anakinra验证了该机制。
研究意义
本研究提示Cdc42可作为1型糖尿病DCM免疫调节干预的潜在治疗靶点,为减轻炎症驱动的心脏损伤提供了新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

T1DM小鼠模型建立与Cdc42敲除验证

建立1型糖尿病心肌病模型并确认髓系Cdc42敲除效率

对10-12周龄雄性Cdc42Mye和Cdc42Flox小鼠连续6天腹腔注射STZ(50 mg/kg/day),观察16周;通过RT-qPCR和Western blot验证Cdc42敲除。

2

心脏功能与组织病理学评估

评估髓系Cdc42缺失对T1DM诱导的心脏功能障碍和纤维化的影响

通过超声心动图评估LVEF、LVFS等心功能参数;通过HE、Masson、Picrosirius red染色和免疫组化检测心脏形态和纤维化;通过ELISA检测血清BNP。

3

巨噬细胞浸润与极化分析

检测髓系Cdc42缺失对心脏巨噬细胞浸润和M1/M2极化的影响

使用Rosa mTmG/LyzCre报告小鼠追踪髓系来源细胞;通过TSA多重免疫荧光检测CD11b、iNOS、CD86、CD163、CD206等标志物。

4

焦亡与信号通路检测

探究髓系Cdc42缺失对心脏焦亡和ERK1/2-NF-κB信号通路的影响

通过Western blot和免疫荧光检测焦亡相关蛋白(NLRP3、Caspase 1 p25、IL-1β p17、GSDMD-N等)及p-ERK1/2、p-NF-κB p65表达。

5

体外巨噬细胞焦亡与心肌细胞/成纤维细胞交互验证

验证Cdc42缺陷通过ERK1/2-NF-κB通路促进巨噬细胞焦亡并导致心肌细胞损伤和成纤维细胞活化

分离培养小鼠腹腔巨噬细胞(MPMs),用HG/LPS刺激,加入ML141或U0126;收集条件培养基处理H9c2心肌细胞和3T3成纤维细胞,通过PI/Hoechst染色评估细胞死亡,Western blot检测焦亡蛋白。

6

scRNA-seq数据分析

探索DCM中巨噬细胞Cdc42表达与炎症信号通路的相关性

整合分析GSE213337和GSE244475数据集,进行质量控制、批次校正、聚类注释,比较Cdc42-high和Cdc42-low巨噬细胞的差异基因和通路富集。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
链脲佐菌素SigmaS0130
葡萄糖SigmaG6152
天狼星红SolarbioG1473
Masson三色染色LeageneDC0033
iNOS抗体Proteintech22226-1-AP
α-SMA抗体CST19245
TSA试剂盒Ai Fang biologicalAFIHC025
DAPIServicebioG1407
胰岛素抗体Proteintech66198-1-Ig
胰高血糖素抗体AffinityAF0166
Alexa Fluor 488二抗ProteintechSA00013-2
Alexa Fluor 594二抗ProteintechSA00013-3
蛋白酶抑制剂混合物MCEHY-K0010
磷酸酶抑制剂混合物MCEHY-K0023
BCA蛋白测定试剂盒SharebioSB-WB013
硝酸纤维素膜GE Healthcare--
牛血清白蛋白SigmaB2064
Trizol试剂TIANGENDP424
PrimeScript逆转录试剂盒AGAG11728
2×SYBR Green qPCR预混液(低ROX)ServicebioG3321-05
糖化血红蛋白ELISA试剂盒JianglaibioJL20567
B型利钠肽ELISA试剂盒JianglaibioJL12884
IL-6 ELISA试剂盒JianglaibioJL20268
TNF-α ELISA试剂盒JianglaibioJL10484
IL-1β ELISA试剂盒JianglaibioJL18442
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco--
胎牛血清Cell-BoxAUS-01 S-02-S
青霉素-链霉素SolarbioP1400
RPMI-1640培养基Gibco--
脂多糖SigmaL2880
ML141MCEHY-12755
U0126MCE109511-58-2
阿那白滞素MCEHY-108841
重组HMGB1MCEHY-P700182AF
Hoechst 33342/碘化丙啶混合物SolarbioCA1120

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
T1DM小鼠模型建立
STZ剂量(50 mg/kg/day)、注射途径(腹腔注射)、持续天数(6天)、小鼠周龄(10-12周龄雄性)、糖尿病判定标准(FBG≥13.3 mM)、观察时间(16周)、对照组处理(等体积柠檬酸钠缓冲液)
阅读提示:Methods中Animals小节;Fig.1A模型流程图
超声心动图
麻醉剂(1.5%异氟烷)、设备(Vevo 3100)、探头(MX400,18-38 MHz)、分析软件(VevoLab-3.2.6)
阅读提示:Methods中Echocardiography小节;Fig.1H-L
体外巨噬细胞刺激与抑制剂处理
HG浓度(33.3 mM)、LPS浓度(100 ng/mL)、ML141或U0126浓度(10 µM)、Anakinra浓度(100 nM)、刺激时间(24 h)、预处理时间(U0126 1 h,Anakinra 30 min)
阅读提示:Methods中Isolation and culture of peritoneal macrophage小节;Fig.8和图9图注
条件培养基共培养
CM与DMEM比例(1:1,含5 mM葡萄糖)、培养时间(MPMs 12 h,H9c2 24 h)、细胞密度
阅读提示:Fig.9A和H示意图及图注
scRNA-seq数据分析
数据集(GSE213337和GSE244475)、质量控制标准(MAD ±3,线粒体基因<20%)、批次校正方法(CCA)、聚类分辨率(0.8)、差异基因阈值(adjusted P<0.05,|log2FC|>log2(1.5))
阅读提示:Methods中Single-cell RNA-seq data processing and analysis小节;Fig.7