建立前瞻性泛癌ICB队列并分型
评估CMV血清状态和抗CMV IgG滴度与临床协变量的关系,并构建发现与验证队列。
前瞻性招募接受ICB的泛癌患者,采集治疗前血浆和PBMC,测定抗CMV IgG滴度,按中位滴度92.9 a.u.mL−1将CMV+患者分为高滴度和低滴度组,并进行发现队列和验证队列匹配。
Anti-CMV IgG titer determines organ-specific protection toward immune checkpoint blockade-induced toxicities
前瞻性泛癌队列472例,含血浆血清学、PBMC流式、CD8+ T细胞bulk RNA-seq及单细胞RNA/V(D)J测序,进行功能与机制验证
OxCITE前瞻性泛癌ICB治疗患者队列(n=472,含黑色素瘤及非黑色素瘤) 患者外周血血浆与PBMC样本 分选CD8+ T细胞及单细胞RNA/V(D)J测序样本 44例转移性黑色素瘤配对治疗前后样本
CMV血清分型:血浆抗CMV IgG抗体滴度<4 a.u.mL−1为CMV−,>250 a.u.mL−1饱和值记为250 a.u.mL−1,中位值92.9 a.u.mL−1,非结肠炎irAEs最佳cut-off为95.2 a.u.mL−1(未稀释血浆190.4 a.u.mL−1) 分组与样本量:发现队列n=250、验证队列n=222;CMV− n=254、CMV+Low titer n=109、CMV+High titer n=109 统计模型:采用半竞争风险模型,死亡作为竞争风险;多变量分析校正年龄、性别、肿瘤类型、治疗意图、队列及ICB方案 流式细胞术:使用冻存PBMC,活力染料eFluor780或440UV,表面染色30 min 4°C,Foxp3/Transcription Factor缓冲液破膜,FACSSymphony A5或Fortessa X-20采集 单细胞RNA/V(D)J测序:10X Chromium,每个partitioning反应加载60,000细胞,5’ GEX和V(D)J文库,NovaSeq6000 150 bp双端测序,深度25,000 reads/cell
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估CMV血清状态和抗CMV IgG滴度与临床协变量的关系,并构建发现与验证队列。
前瞻性招募接受ICB的泛癌患者,采集治疗前血浆和PBMC,测定抗CMV IgG滴度,按中位滴度92.9 a.u.mL−1将CMV+患者分为高滴度和低滴度组,并进行发现队列和验证队列匹配。
验证抗CMV IgG滴度是否在全器官及器官特异性水平影响严重irAEs风险。
使用半竞争风险模型,以死亡为竞争风险,分析CMV−、CMV+Low titer和CMV+High titer患者3级及以上irAEs、结肠炎和非结肠炎irAEs的累积发生率,并进行多变量校正。
分析CMV滴度是否影响irAE相关类固醇和二级免疫抑制需求,以及保护效应是否限于特定ICB方案。
在半竞争风险模型中分析类固醇需求和二级免疫抑制使用,并按cICB和sICB分层分析3级及以上irAEs累积发生率。
识别与抗CMV IgG滴度相关的免疫学关联。
分析治疗中淋巴细胞计数和中性粒细胞:淋巴细胞比值;对分选CD8+ T细胞进行bulk RNA-seq并比较CMV+Low、CMV+High与CMV−的差异表达基因;对PBMC进行流式细胞术分析CD8+和CD4+ T细胞亚群及Treg比例;对HLA-A*02:01阳性患者进行pp65多聚体染色。
评估抗CMV IgG滴度是否与ICB前后CD8+ T细胞克隆组成和持续性相关。
对44例转移性黑色素瘤配对治疗前后样本进行单细胞RNA/V(D)J测序,鉴定CD8+ T细胞亚群,追踪最大克隆和持续克隆的库占据及表型。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 血浆采集与处理 | EDTA真空采血管 | -- | -- |
| PBMC分离 | Ficoll-Paque密度梯度分离液 | Cytiva | -- |
| CMV血清分型 | Abbott Architect i2000 | Abbott | -- |
| CD8+ T细胞分离 | Miltenyi Biotech磁珠分选 | Miltenyi Biotech | -- |
| RNA提取 | RLTplus缓冲液 | Qiagen | -- |
| QIAshredder试剂盒 | Qiagen | -- | |
| AllPrep Universal DNA/RNA/miRNA试剂盒 | Qiagen | -- | |
| 文库构建 | NEBNext Poly(A) mRNA磁性分离模块试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| NEBNext Ultra II定向RNA文库构建试剂盒(Illumina) | New England Biolabs | -- | |
| 流式细胞术 | eBioscience可固定活力染料eFluor780 | Invitrogen | 65-0865-14 |
| 可固定活力染料440UV | BD Biosciences | -- | |
| BD Horizon Brilliant染色缓冲液 | BD Biosciences | 563794 | |
| 细胞染色缓冲液 | BioLegend | 420201 | |
| 链霉亲和素(BV785) | BioLegend | 405249 | |
| Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | Invitrogen | 00-5523-00 | |
| 转录因子缓冲液套装 | BD Biosciences | 562574 | |
| 流式分析 | FACSSymphony A5细胞分析仪 | BD Biosciences | -- |
| Fortessa X-20 | BD Biosciences | -- | |
| Attune NxT | Thermo Fisher | -- | |
| HLA分型 | Illumina Global Screening Array 24 V.3 | Illumina | -- |
| 单细胞测序 | 10X Chromium系统 | 10X Genomics | -- |
| Chromium Next GEM单细胞5’试剂盒v2(双索引) | 10X Genomics | -- | |
| 测序 | NovaSeq6000 | Illumina | -- |
| NovaSeq XPlus | Illumina | -- | |
| HiSeq-4000 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CMV血清分型与滴度分组 | 血浆稀释比例1:2 HBSS;滴度<4 a.u.mL−1为CMV−;>250 a.u.mL−1记为250 a.u.mL−1;中位值92.9 a.u.mL−1;非结肠炎irAEs cut-off 95.2 a.u.mL−1 阅读提示:Methods Sample collection;Figure 1f;Results CMV titer alters organ specificity of severe irAEs |
| 半竞争风险模型分析 | 死亡作为竞争风险;Gray检验;Fine-Gray亚分布风险;多变量校正年龄、性别、肿瘤类型、治疗意图、队列及ICB方案 阅读提示:Methods Statistical analysis;Figure 2、Figure 3、Figure 4图注 |
| 流式细胞术T细胞亚群分析 | 冻存PBMC 1×10^6;活力染色30 min 4°C;表面染色30 min 4°C;破膜30 min;采集设备FACSSymphony A5、Fortessa X-20或Attune NxT;抗体列表见online supplemental material 阅读提示:Methods Flow cytometry;online supplemental material;Figure 6图注 |
| CD8+ T细胞bulk RNA测序 | CD8+ T细胞positive selection;RNA提取试剂盒AllPrep Universal;文库NEBNext Ultra II;测序平台NovaSeq 6000/XPlus或HiSeq-4000;DESeq2 v.1.48.1;校正年龄、性别、肿瘤类型、治疗意图及第一主成分;基因平均表达>10 阅读提示:Methods Bulk RNA-sequencing;Figure 5d–f图注 |
| 单细胞RNA/V(D)J测序 | PBMC n=39、CD3+分选n=14、CD8+分选n=35;5–8例患者等量混合;每孔60,000细胞;5’ GEX和V(D)J文库;NovaSeq6000 150 bp双端,25,000 reads/cell;质控阈值:UMI<500、features<300、线粒体基因>20%剔除;Harmony整合;聚类分辨率0.8–2.0 阅读提示:Methods Single-cell RNA/V(D)J sequencing;Figure 7、Figure 8图注 |