抗CTLA-4抗体通过增强瘤内IL-18R1+CD8+ T细胞增强武装溶瘤病毒OVM18的抗肿瘤效果

Anti-CTLA-4 antibody potentiates the antitumor effect of armed oncolytic virus OVM18 via enhancing intratumoral IL-18R1+CD8+ T cells

作者信息Xueying Lin, Jifu Zhang, Zhen Fan, Jingyu Yang, Shiming Yi, Hanrui Wang, Huizhen Zou, Linyi Hu, Wenbo Zhu, Yuan Lin, Jun Hu, Jing Cai, Guangmei Yan, Jiankai Liang
PMID42705862
发布时间2026-09-07
DOI10.1136/jitc-2025-014273

实验完整度

多模型转录组、单细胞、流式、TCR及Batf3⁻/⁻、FTY720功能验证,含机制链体内确认

主要模型

B16-F10和B16-F10-OVA小鼠黑色素瘤模型 RM1小鼠前列腺癌模型 CT26、MC38、EMT6、LLC和GL261小鼠肿瘤模型 Batf3⁻/⁻和C57BL/6、BALB/c小鼠

重点核对

OVM18静脉注射剂量3×10⁶ CCID50/只,连续5天,肿瘤体积约100 mm³时开始 抗CTLA-4抗体(克隆9H10)和抗PD-1抗体(克隆RMP1-14)腹腔注射300 µg/只,每3天一次 FTY720腹腔注射20 µg/只,每日一次 IL-18R1+CD8+ T细胞流式检测时间点:第4天、第7天、第14天等 Batf3⁻/⁻小鼠用于cDC1功能验证;样本量多数n=5-7

摘要

背景:编码突变型IL-18诱饵(OVM18)的溶瘤病毒M1代表一种新型病毒疗法,将选择性溶瘤与IL-18通路的局部激活相结合。然而,治疗反应的异质性提示宿主免疫决定因素影响其疗效。方法:为阐明这些决定因素,我们使用bulk和单细胞转录组学、流式细胞术和T细胞受体(TCR)库分析进行了整合免疫分析。特定免疫亚群的功能贡献通过Batf3⁻/⁻小鼠和FTY720介导的淋巴细胞运输阻断进行验证。通过转录组数据库筛选鉴定潜在的协同免疫疗法,并在接受OVM18和免疫检查点阻断联合治疗的荷瘤小鼠中确认。结果:我们鉴定瘤内IL-18R1+CD8+ T细胞为重要的效应群体,其IL-18R1表达和瘤内丰度与OVM18疗效正相关。整合单细胞RNA测序和流式细胞术分析显示,IL-18R1+CD8+ T细胞是克隆扩增的、肿瘤抗原富集的多功能细胞毒性T细胞。它们的生成需要肿瘤引流淋巴结内常规1型树突状细胞(cDC1)依赖性致敏,随后运输到肿瘤中介导抗肿瘤反应。值得注意的是,CTLA-4阻断增强cDC1来源的IL-12并促进IL-18R1+CD8+ T细胞扩增,从而克服对OVM18治疗的耐药性。OVM18和抗CTLA-4联合治疗增强瘤内IL-18R1+CD8+ T细胞浸润,延缓肿瘤进展,并延长低反应模型的生存期。结论:我们的发现确立IL-18R1+CD8+ T细胞为OVM18治疗中的重要效应群体,从而为结合OVM18与CTLA-4阻断以克服治疗耐药性和实现持久抗肿瘤反应提供了强有力的依据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
OVM18治疗反应异性的宿主免疫决定因素是什么?如何克服低反应肿瘤的耐药性?
核心机制
cDC1在TDLNs中通过IL-12依赖机制驱动IL-18R1+CD8+ T细胞致敏和扩增,这些细胞运输至TME介导细胞毒性;抗CTLA-4通过增强cDC1的IL-12产生进一步扩增该群体,形成正反馈环路。
主要证据
多模型bulk RNA-seq和scRNA-seq显示IL-18R1表达与疗效正相关;流式和TCR测序证实IL-18R1+CD8+ T细胞克隆扩增、肿瘤抗原富集和高细胞毒性;Batf3⁻/⁻和FTY720实验证明cDC1和TDLN来源的必要性;联合治疗在RM1、LLC和B16-F10模型中抑制肿瘤生长并延长生存。
研究意义
确立IL-18R1+CD8+ T细胞为OVM18治疗的重要效应群体,提供将OVM18与CTLA-4阻断联合以克服耐药性的合理策略,并提示IL-18R1可作为预测标志物和药效学标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

OVM18治疗疗效异质性评估

验证OVM18在多模型中的抗肿瘤效果及反应差异

在LLC和RM1等模型中静脉注射OVM18,监测肿瘤生长和生存,计算完全缓解率;进行bulk RNA-seq分析基因表达与疗效相关性

2

IL-18R1+CD8+ T细胞表型与功能特征鉴定

明确IL-18R1+CD8+ T细胞的克隆性、抗原特异性和细胞毒性功能

scRNA-seq和scTCR-seq分析B16-F10肿瘤CD45+细胞;流式细胞术检测IFN-γ、TNF-α、GZMB和多功能性;使用B16-F10-OVA模型检测SIINFEKL四聚体和CD39+CD44+细胞;ELISpot检测肿瘤反应性

3

cDC1依赖性IL-18R1+CD8+ T细胞生成验证

验证TDLNs中cDC1对IL-18R1+CD8+ T细胞致敏和扩增的必要性

使用FTY720阻断淋巴细胞运输,Batf3⁻/⁻小鼠缺失cDC1,流式检测TDLNs和肿瘤中IL-18R1+CD8+ T细胞频率和功能

4

抗CTLA-4增强IL-18R1+CD8+ T细胞浸润机制研究

探究抗CTLA-4通过cDC1增加IL-18R1+CD8+ T细胞浸润的机制

抗CTLA-4或抗PD-1治疗荷瘤小鼠,流式检测肿瘤和TDLNs中IL-18R1+CD8+ T细胞、DC浸润、CD80/CD86和IL-12表达;使用Batf3⁻/⁻小鼠验证cDC1依赖性

5

OVM18联合抗CTLA-4治疗体内疗效评估

评估联合治疗在低反应模型中的抗肿瘤效果和生存获益

RM1荷瘤小鼠接受抗CTLA-4和OVM18联合治疗,监测肿瘤生长和生存;流式检测TDLNs和肿瘤中IL-18R1+CD8+ T细胞

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素溶液Life Technologies--
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco--
病毒生产无血清培养基(VP-SFM)Gibco11681020
最低必需培养基非必需氨基酸溶液Gibco11140050
GlutaMAX添加剂Gibco35050079
TRIzol试剂Life Technologies--
FastKing一步法试剂盒TIANGEN Biotech--
细胞计数试剂盒-8TargetMolC0005
可固定活力染料700BD564997
Fc受体阻断抗体BD553142
白细胞激活混合物含Golgi-plugBD550583
脂多糖SigmaL4391
莫能菌素BD554724
转录因子缓冲液套装BD562574
CytoFLEX流式细胞仪Beckman Coulter--
重组小鼠IFN-γ蛋白MCEHY-P7071
IFN-γ酶联免疫斑点试剂盒Mabtech3321–4 APT
抗PD-1抗体(克隆RMP1-14)Bio X Cell--
抗CTLA-4抗体(克隆9H10)Bio X Cell--
FTY720SigmaSML0700

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立与OVM18治疗
肿瘤细胞接种数量(B16-F10、EMT6、CT26、RM1为1×10⁶,LLC、MC38为2×10⁶)、OVM18剂量(3×10⁶ CCID50/只)、给药途径(静脉注射)、给药频率(每日一次连续5天)、治疗起始肿瘤体积(约100 mm³)
阅读提示:Methods 'Animal experiments';Figure 1 legend
免疫检查点阻断治疗
抗PD-1和抗CTLA-4抗体克隆号(RMP1-14和9H10)、剂量(300 µg/只)、给药途径(腹腔注射)、频率(每3天一次)、治疗起始时间点(不同实验设计不同,需核对图注)
阅读提示:Methods 'Animal experiments';Figure 4I, 4P, 5E, 6A legends
FTY720淋巴细胞运输阻断
FTY720剂量(20 µg/只)、给药途径(腹腔注射)、频率(每日一次)、起始时间(第7天)
阅读提示:Methods 'Animal experiments';Figure 3A legend
流式细胞术免疫表型分析
抗体克隆号(CD45 30-f11, CD3e 145-2C11, CD8α 53-6.7, IL-18Rα A17071D等)、刺激条件(Leukocyte Activation Cocktail 4小时,LPS 1 µg/mL联合Monensin 4小时)、固定破膜试剂盒
阅读提示:Methods 'Analysis of immunophenotype';Supplementary figure legends
ELISpot肿瘤反应性检测
分选细胞数(1,000个IL-18R1+或IL-18R1⁻CD8+ T细胞)、靶细胞数(330个IFN-γ预刺激B16-F10细胞)、效靶比(3:1)、共培养时间(24小时)
阅读提示:Methods 'ELISpot';Supplementary figure 11