建立Sendai病毒传播模型并评估CD8 TRM保护效果
验证疫苗诱导的CD8 TRM能否降低传播概率和感染程度
小鼠i.n.免疫LAIV-SenNP或Ad-SenNP,35天后与Sendai-Luc感染指示鼠共居,通过鼻洗脱和体内生物发光成像纵向监测传播
Upper respiratory tract CD8+ tissue-resident memory T cells protect against viral transmission
包含小鼠传播模型、多种基因敲除及抗体清除模型、流式细胞术、单细胞RNA测序、体内生物发光成像等多个独立证据层级,并有功能验证
C57BL/6J雌性小鼠 μMT−/− B细胞缺陷小鼠 Nur77GFP报告小鼠 Sendai virus传播模型
免疫策略:i.n. 30 μl Ad-SenNP(2×10^7 PFU)或5 μl Ad-SenNP(2×10^7 PFU)或LAIV-SenNP(20,000 PFU) 传播模型:免疫后35天与Sendai-Luc感染指示鼠共居,通过鼻洗脱和体内成像监测 细胞清除验证:FTY720 150 μg/天 i.p.,anti-CD4或anti-CD8抗体200 μg i.n.+200 μg i.p.后每3天200 μg i.p. 检测终点:鼻洗脱病毒滴度、生物发光通量、鼻组织SenNP+ CD8+ TRM数量及激活标志物 对照组:LAIV-WT、Ad-FluNP、同型抗体、PBS载体
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证疫苗诱导的CD8 TRM能否降低传播概率和感染程度
小鼠i.n.免疫LAIV-SenNP或Ad-SenNP,35天后与Sendai-Luc感染指示鼠共居,通过鼻洗脱和体内生物发光成像纵向监测传播
确定CD8 TRM介导的保护是否独立于其他免疫细胞
使用FTY720抑制S1P依赖性细胞迁移,使用μMT−/−小鼠缺乏B细胞,使用anti-CD4抗体清除CD4 T细胞,观察传播后感染概率
确定传播病毒主要激活哪个呼吸道区域的T细胞
使用Nur77GFP报告小鼠和EdU标记,在共居后不同时间点检测鼻组织、BAL和肺中SenNP特异性CD8 T细胞的GFP表达和EdU掺入
揭示传播后URT CD8 TRM的激活动力学和效应程序
从PR8-SenNP免疫共居小鼠鼻组织分选SenNP+ IV− CD8+ T细胞,在D35+0、D35+3、D35+6进行单细胞RNA测序和RNA速率分析
确定URT TRM单独是否能提供充分保护
使用5 μl低体积i.n.免疫Ad-SenNP仅诱导URT TRM,比较其与30 μl全呼吸道免疫的保护效果,并在FTY720和anti-CD4处理下验证
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 异氟烷 | Patterson Veterinary | -- |
| T细胞清除 | 抗CD4单克隆抗体克隆GK1.5 | BioXcell | -- |
| 抗CD8单克隆抗体克隆2.43 | BioXcell | -- | |
| 细胞迁移抑制 | FTY720 | Cayman Chemical | -- |
| 增殖检测 | EdU | Cayman Chemical | -- |
| 体内成像 | IVISbrite D-荧光素 | Revvity | -- |
| IVIS Lumina LT Series III | PerkinElmer | -- | |
| 组织消化 | 胶原酶D | Roche | -- |
| DNase | Sigma-Aldrich | -- | |
| Dispase | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 流式细胞术 | 抗CD3ε-PECF594克隆145-2C11 | BioLegend | -- |
| CD45.2-BV650克隆104 | -- | -- | |
| Sendai-NP (Kb324-332)四聚体-PE或APC | NIH Tetramer Core Facility | -- | |
| 抗CD8α-BV711克隆53–6.7 | -- | -- | |
| CD4-UV496克隆GK1.5 | -- | -- | |
| CD4-A700克隆RM4-4 | -- | -- | |
| CD103-BV421克隆2E7 | -- | -- | |
| CD69-A488/PE-Cy7克隆H1.2F3 | -- | -- | |
| CD62L-BV605克隆MEL-14 | -- | -- | |
| CD44-BV510克隆IM7 | -- | -- | |
| CD19-APC eFluor780克隆1D3 | -- | -- | |
| CD3-APC克隆17A2 | -- | -- | |
| CD45-A700/PerCPCy5.5克隆30-F11 | -- | -- | |
| Zombie NIR | -- | -- | |
| EdU检测 | Click-iT Plus EdU流式细胞术试剂盒–Alexa Fluor 647 | Invitrogen | -- |
| 单细胞RNA测序 | Chromium单细胞5′试剂盒 | 10x Genomics | -- |
| 流式细胞术 | Fortessa X20流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 流式分选 | FACSAriaII | BD Biosciences | -- |
| 细胞计数 | LUNA-II自动细胞计数仪 | Logos Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 免疫与传播模型建立 | 免疫途径和剂量(i.n. 30 μl或5 μl,Ad-SenNP 2×10^7 PFU或LAIV-SenNP 20,000 PFU)、免疫后共居时间(35天)、指示鼠Sendai-Luc剂量(1,500 PFU i.n.)、共居方式(直接接触和共享空气) 阅读提示:Methods 'Viruses'小节和Figure 1A实验示意图 |
| 细胞清除与迁移抑制 | FTY720剂量(150 μg/天 i.p.,共居前3天开始)、anti-CD4/anti-CD8抗体剂量和给药频率(200 μg i.n.+200 μg i.p.,后每3天200 μg i.p.)、同型对照抗体相同剂量 阅读提示:Methods 'Chemical treatments and antibody depletion'小节 |
| URT-only免疫模型 | 5 μl与30 μl i.n.免疫体积、Ad-SenNP剂量(2×10^7 PFU)、URT和LRT中TRM数量的验证 阅读提示:Methods 'Viruses'小节和Figure 5及Figure S3 |
| T细胞激活与增殖检测 | Nur77GFP报告小鼠品系、EdU剂量(1 mg i.p.,处死前1天)、检测时间点(D35+0、D35+3、D35+6) 阅读提示:Methods 'Chemical treatments and antibody depletion'和Figure 3 |
| 单细胞RNA测序 | 分选细胞群(SenNP+ IV− CD8+ T细胞)、时间点(D35+0、D35+3、D35+6)、测序平台和试剂盒版本(10x Genomics Chromium Single Cell 5′ v2)、分析软件和参数 阅读提示:Methods 'Single-cell RNA sequencing'小节和Figure 4 |