动物模型与样本采集
建立顺铂诱导肾毒性模型,获取不同时间点的肾脏样本。
12只雄性Sprague-Dawley大鼠随机分为对照和顺铂处理组,顺铂组给予5 mg/kg尾静脉单次注射,在第1、6、29天处死,收集肾脏并制备冰冻切片。
Detecting drug-induced nephrotoxicity using simultaneous label-free autofluorescence multiharmonic microscopy
包含动物模型(大鼠肾组织)的体内实验,并通过H&E组织学、血清生化(BUN/sCr)验证,且进行了图像特征提取、PCA和SVM分类等多层级分析。
Sprague-Dawley大鼠肾组织切片(皮质和外髓)
肾组织切片厚度100 μm SLAM图像采集区域(皮质和外髓) 时间点(第1、6、29天)及对照组(第1天处死) 顺铂剂量(5 mg/kg,静脉单次注射) H&E组织学验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立顺铂诱导肾毒性模型,获取不同时间点的肾脏样本。
12只雄性Sprague-Dawley大鼠随机分为对照和顺铂处理组,顺铂组给予5 mg/kg尾静脉单次注射,在第1、6、29天处死,收集肾脏并制备冰冻切片。
获取肾皮质和外髓的无标记多模态图像。
使用SLAM显微镜对100 μm厚肾切片进行成像,捕获THG、3PF、SHG和2PF信号。
量化图像特征。
计算光学氧化还原比,分割肾小管区域,提取形态、强度、纹理和通道相关性等特征。
区分不同时间点并识别驱动分类的特征。
使用线性核SVM分类器对图像进行分类,计算平衡准确率,并使用置换重要性评估特征贡献。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物处理 | 顺铂 | Teva | -- |
| 组织固定 | 10%福尔马林 | -- | -- |
| 冰冻切片包埋 | Tissue-TEK O.C.T.包埋剂 | Sakura | -- |
| 图像获取 | 25倍,1.05 NA水浸物镜 | Olympus | XLPLN25XWMP2 |
| 低温恒温器 | Leica | CM3050 S | |
| 生化分析 | cobas c501分析仪 | Roche Diagnostics GmbH | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 动物品系、性别、周龄、体重、随机分组方式、对照组数量 阅读提示:Methods: Animals and tissue preparation |
| 药物处理 | 顺铂剂量、给药途径、给药体积、溶剂、对照组处理 阅读提示:Methods: Animals and tissue preparation |
| 样本收集与制备 | 组织固定方法、包埋方法、切片厚度 阅读提示:Methods: Animals and tissue preparation |
| SLAM成像 | 激光波长、重复频率、物镜倍数和数值孔径、每个视野大小、成像区域数量 阅读提示:Methods: SLAM imaging |
| 组织学验证 | H&E染色的切片类型、放大倍数、病理学评估标准 阅读提示:Results: Identification of morphological changes... |