建立胃癌动物模型及血清TFF水平检测
验证胃癌是否导致血清TFF1-3水平升高,并评估其诊断性能。
使用H. pylori感染联合MNU处理C57BL/6小鼠(n=15)和对照组(n=10),50周后处死;使用MNNG处理Jcl:SD大鼠(对照组5只,处理组25只),25周造模,第37周取血,部分大鼠行全胃切除。通过ELISA测定血清TFF1-3浓度,并绘制ROC曲线。
Hepatic origin of increased serum TFF3 in gastric cancer bearing subjects
包含体外细胞实验(Huh7细胞IL-6处理与洗脱)和体内动物模型(MNU小鼠、MNNG大鼠),并进行了功能验证(如STAT3激活、ChIP-qPCR表观遗传分析)和机制验证(IL-6-STAT3-TFF3通路)。
MNU诱导的C57BL/6小鼠胃癌模型 MNNG诱导的Jcl:SD大鼠胃癌模型 Huh7人肝癌细胞系
MNU小鼠模型:H. pylori感染后,MNU 120 ppm隔周给药,共11周,总暴露5周,50周后处死(图1A) MNNG大鼠模型:MNNG 150 ppm饮水给药25周,第37周取血,第38周全胃切除,术后7天取血(图2A) 大鼠分组样本量:对照组无切除n=4,对照切除n=4,MNNG未切除n=11,MNNG切除n=8(图2A) Huh7细胞实验:IL-6处理3天,或再撤除IL-6培养2天,第4天或第6天收获(图6A) 血清TFF3在胃癌组显著升高,且全胃切除后不降低(图2C)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证胃癌是否导致血清TFF1-3水平升高,并评估其诊断性能。
使用H. pylori感染联合MNU处理C57BL/6小鼠(n=15)和对照组(n=10),50周后处死;使用MNNG处理Jcl:SD大鼠(对照组5只,处理组25只),25周造模,第37周取血,部分大鼠行全胃切除。通过ELISA测定血清TFF1-3浓度,并绘制ROC曲线。
评估全胃切除后血清TFF3水平是否下降,以确定其是否来源于胃。
对MNNG诱导的胃癌大鼠及对照组实施全胃切除术,术后7天收集血液,比较术前和术后血清TFF1-3水平。
确定在胃癌小鼠中哪些器官的TFF3表达上调,以定位血清TFF3的来源。
对胃癌小鼠和对照小鼠的多种器官(食管、前胃、胃底、胃窦、十二指肠、空肠、回肠、结肠、肝、脾、胰、肾、肺、心、骨髓)进行RT-PCR检测TFF3 mRNA表达,并比较两组差异。
验证胃部IL-6是否通过门脉循环激活肝脏STAT3,从而诱导TFF3表达。
通过免疫组化检测小鼠肝脏中TFF3和pSTAT3蛋白表达;Western blot验证肝脏pSTAT3水平;RT-PCR检测胃组织中IL-6 mRNA表达。
探究IL-6刺激是否导致TFF3位点组蛋白修饰的持续变化,解释胃切除术后TFF3持续表达。
使用Huh7细胞(人肝癌细胞系)进行IL-6处理实验,通过ChIP-qPCR检测TFF3基因增强子、启动子、基因本体及下游区域的H3K27ac富集水平,并在IL-6撤除后评估其持续性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 蛋白提取 | T-PER组织蛋白提取试剂 | Thermo Fisher Scientific | 78510 |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Thermo Fisher Scientific | 78442 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23228 |
| Western blot | 10% 预制胶 | Bio-Rad | 456-1035 |
| PVDF膜 | Merck Millipore | -- | |
| β-肌动蛋白抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA1-16889 | |
| 磷酸化STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145 | |
| Trident femto-ECL Western印迹底物 | GeneTex | GTX14689 | |
| MYECL成像系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 免疫组织化学 | TFF3抗体 | eBioscience | 14-4758 |
| 磷酸化STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145 | |
| VECTASTAIN Elite ABC HRP试剂盒 | Vector Laboratories | -- | |
| DAB底物溶液 | Vector Laboratories | SK-4105 | |
| 细胞因子检测 | Bio-Plex Pro小鼠细胞因子23重检测试剂盒 | Bio-Rad Laboratories | M60009RDPD |
| Luminex MAGPIX系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| RNA提取 | ISOGEN RNA提取试剂 | Nippon Gene | -- |
| RT-PCR | 随机引物 | Promega | -- |
| Powerscript逆转录酶 | Clontech | -- | |
| Eco实时PCR系统 | Illumina | -- | |
| Thunderbird qPCR预混液(含SYBR) | TOYOBO | -- | |
| ChIP | Bioruptor超声破碎仪 | Cosmo Bio | -- |
| H3K27ac抗体 | Abcam | ab4729 | |
| Dynabeads Protein A磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| ELISA | 镍螯合树脂 | Invitrogen | -- |
| 生物素标记的抗TFF多克隆抗体 | -- | -- | |
| 辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素 | Vector Laboratories | -- | |
| TMB底物溶液 | Scytek Laboratories | -- | |
| 终止液 | Scytek Laboratories | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠胃癌模型:H. pylori SS1感染,MNU 120 ppm隔周给药共11周(总暴露5周),50周后处死;大鼠胃癌模型:MNNG 150 ppm饮水给药25周,分组及样本量:对照组n=4,对照+切除n=4,MNNG n=11,MNNG+切除n=8 阅读提示:Materials and methods: Animal study design; Figure 1A; Figure 2A |
| 血清TFF含量检测 | ELISA法检测血清TFF1-3,使用自制多克隆抗体,灵敏度:TFF1 7 pg/mL, TFF2 30 pg/mL, TFF3 30 pg/mL 阅读提示:Materials and methods: ELISA analysis |
| 器官表达分析 | 多种器官TFF3 mRNA RT-PCR检测,引物序列:forward TATCCCAAATGTGCCCTGGT, reverse CTTGTGTTGGCTGTGAGGTC;使用ΔΔCt法,triplicates 阅读提示:Materials and methods: RT-PCR; Figure 3 |
| 细胞因子检测 | 血清IL-4, IL-6, IL-13浓度使用Bio-Plex Pro Mouse Cytokine 23-plex Assay检测 阅读提示:Materials and methods: Cytokine measurement |
| 免疫组化 | 肝脏TFF3和pSTAT3免疫组化染色,抗体稀释度:TFF3 1:1000, pSTAT3 1:200;使用VECTASTAIN Elite ABC HRP Kit和DAB底物 阅读提示:Materials and methods: Immunohistochemistry |
| Western blot | 肝脏pSTAT3蛋白检测,蛋白上样量50 μg,抗体:p-STAT3 1:2000, β-actin 1:5000 阅读提示:Materials and methods: Western blot |
| 表观遗传分析 | Huh7细胞IL-6处理方案:第2天加入IL-6,处理2天,第4天或第6天收获(撤除IL-6后再培养2天);ChIP-qPCR检测H3K27ac富集,使用引物序列 阅读提示:Materials and methods: Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay and ChIP-qPCR; Figure 6A |