LARS2重编程线粒体代谢并通过表观遗传上调MHC-I增强鼻咽癌的抗肿瘤免疫

LARS2 reprograms mitochondrial metabolism and epigenetically upregulates MHC-I to boost antitumor immunity in nasopharyngeal carcinoma

作者信息Mei Yang, Yongzhen Mo, Daixi Ren, Shun Liu, Qijia Yan, Lei Shi, Pan Chen, Bo Xiang, Rongfang He, Songqing Fan, Ming Zhou, Ming Tan, Guiyuan Li, Xuyu Zu, Zhaoyang Zeng, Wei Xiong
PMID42637267
发布时间2026-08-24
DOI10.1136/jitc-2026-015098

实验完整度

包含体外细胞共培养、免疫缺陷裸鼠异种移植模型、免疫活性小鼠原位肿瘤模型及患者样本分析等多层次证据,并进行了功能验证和机制验证。

主要模型

鼻咽癌细胞系HK1和5-8F 小鼠口腔癌细胞系MOC1 BALB/c裸鼠异种移植模型 C57BL/6J小鼠同基因原位肿瘤模型

重点核对

LARS2在鼻咽癌组织中的表达水平及其与CD8+ T细胞浸润和免疫治疗反应的相关性 LARS2过表达或敲低对CD8+ T细胞介导的肿瘤细胞杀伤的影响 LARS2对线粒体OXPHOS活性和MHC-I表达的影响 高亮氨酸饮食对LARS2表达和抗PD-1免疫治疗效果的增强作用

摘要

背景:鼻咽癌(NPC)被认为是一种典型的“热”肿瘤,然而其免疫逃逸机制仍不明确,免疫治疗效果欠佳。减弱肿瘤细胞内在免疫原性以逃避T细胞识别和细胞毒性是肿瘤免疫逃逸的主要途径,其机制基础在很大程度上尚未阐明。方法:使用多重免疫荧光和免疫组织化学评估鼻咽癌组织中线粒体亮氨酰-tRNA合成酶2(LARS2)表达、CD8+ T细胞浸润和免疫治疗反应之间的相关性。使用体外CD8+ T细胞共培养、免疫缺陷裸鼠和免疫活性小鼠模型来探索LARS2依赖的CD8+介导的抗肿瘤免疫。进行蓝色非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(BN-PAGE)、细胞外通量和其他线粒体功能测定,以表征LARS2和亮氨酸在电子传递链(ETC)翻译和氧化磷酸化(OXPHOS)活性中的作用。染色质免疫沉淀-定量PCR、ELISA和流式细胞术分析了表观遗传修饰、主要组织相容性复合体I类(MHC-I)表达和抗原呈递。在小鼠模型中测试了亮氨酸补充联合抗程序性细胞死亡蛋白-1(PD-1)治疗,以评估其对NPC免疫逃逸的体内治疗效果。结果:我们证明了LARS2,一个定位在3p21染色体区域的基因,在NPC中显著下调,其表达与患者预后和免疫治疗反应呈正相关。通过体外和体内实验,我们证明恢复LARS2表达可加速线粒体ETC亚基的翻译,增强OXPHOS,并通过表观遗传机制上调MHC-I表达。这些效应共同增强肿瘤抗原呈递并增强CD8+ T细胞介导的细胞毒性。此外,我们证明了高亮氨酸饮食可增加LARS2表达并提高抗PD-1免疫治疗的有效性。结论:本研究揭示了一种新的机制,即肿瘤抑制因子LARS2通过上调MHC-I抑制NPC的免疫逃逸,并强调高亮氨酸饮食作为使肿瘤对免疫治疗敏感的潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LARS2在鼻咽癌免疫逃逸和免疫治疗抵抗中的作用及其机制是什么?
核心机制
LARS2通过促进线粒体电子传递链蛋白翻译增强OXPHOS,提高乙酰辅酶A水平进而增加H3K27ac修饰,表观遗传上调MHC-I表达,从而增强肿瘤抗原呈递和CD8+ T细胞介导的细胞毒性。
主要证据
在细胞共培养、裸鼠异种移植和免疫活性小鼠模型中,LARS2过表达增强CD8+ T细胞介导的肿瘤抑制;机制上,LARS2增强OXPHOS、提高乙酰辅酶A和H3K27ac水平并上调MHC-I表达。
研究意义
本研究揭示LARS2作为免疫微环境依赖性肿瘤抑制因子,并提议亮氨酸补充作为增强免疫检查点阻断治疗敏感性的辅助策略,可能为克服免疫治疗抵抗提供新见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本关联分析

评估LARS2表达与鼻咽癌患者预后、CD8+ T细胞浸润及免疫治疗反应的关系

对39例接受PD-1/PD-L1抑制剂治疗的鼻咽癌患者组织样本进行多重免疫荧光和免疫组化染色,分析LARS2、CD8A、PD-L1表达,并结合公共数据库进行生存分析和免疫细胞浸润分析

2

体外CD8+ T细胞共培养实验

验证LARS2对CD8+ T细胞介导的肿瘤细胞杀伤的影响

在HK1和5-8F细胞中过表达或敲低LARS2,与健康供者来源的激活CD8+ T细胞共培养,检测肿瘤细胞活力和凋亡,分析CD8+ T细胞中IFN-γ、TNF-α和GZMB的表达

3

体内免疫缺陷小鼠模型验证

在体内验证LARS2对CD8+ T细胞依赖性肿瘤生长的影响

将LARS2过表达或敲低的HK1细胞皮下植入裸鼠,部分小鼠经尾静脉注射体外激活的肿瘤特异性T细胞,监测肿瘤生长并分析肿瘤组织中CD8+ T细胞浸润和细胞毒性

4

免疫活性小鼠同基因模型验证

验证CD8+ T细胞是否是LARS2介导肿瘤抑制的关键效应细胞

将Lars2过表达的MOC1细胞接种至免疫活性C57BL/6J小鼠,使用抗CD8抗体清除CD8+ T细胞,监测肿瘤生长

5

LARS2对MHC-I表达和抗原呈递的影响

探究LARS2是否通过上调MHC-I促进肿瘤抗原呈递

检测LARS2过表达或敲低后HLA-ABC的表达和细胞表面丰度;在MOC1-OVA细胞中检测SIINFEKL肽呈递;并与OT-I小鼠来源的BMDCs和CD8+ T细胞共培养评估DC活化和T细胞激活

6

LARS2对线粒体功能的调控

阐明LARS2对线粒体电子传递链和OXPHOS的调控作用

通过BN-PAGE检测ETC复合物蛋白水平,Seahorse分析OCR和ECAR,检测NAD+/NADH比值、ATP产生和线粒体膜电位

7

LARS2通过ATP促进抗原肽转运

验证LARS2增强的OXPHOS产生的ATP是否促进TAP1介导的抗原肽转运

使用EtBr耗竭mtDNA或FCCP抑制OXPHOS,通过免疫荧光检测TAP1与内质网的共定位以及Cy5.5标记的SIINFEKL肽与TAP1和内质网的共定位,流式检测MOC1细胞表面SIINFEKL呈递

8

LARS2通过H3K27ac表观遗传上调MHC-I

探究LARS2是否通过增强H3K27ac修饰表观遗传调控MHC-I表达

检测LARS2对乙酰辅酶A水平、整体蛋白乙酰化和H3K27ac水平的影响;ChIP-qPCR检测HLA-A、B、C启动子区域H3K27ac富集;使用ACSS2抑制剂和乙酸盐补充实验验证

9

亮氨酸补充增强肿瘤杀伤

验证亮氨酸能否通过上调LARS2增强MHC-I介导的肿瘤抗原呈递和CD8+ T细胞杀伤

用不同浓度亮氨酸处理NPC细胞和MOC1-OVA细胞,检测LARS2、MHC-I表达和SIINFEKL呈递,并与OT-I CD8+ T细胞共培养检测杀伤效果

10

体内验证高亮氨酸饮食效果

验证高亮氨酸饮食能否增强抗肿瘤免疫和免疫检查点阻断疗效

在裸鼠异种移植模型和免疫活性小鼠原位模型中,给予1.5% (w/v)亮氨酸饮水,评估肿瘤生长、免疫细胞浸润和与抗PD-1联合治疗效果

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基GibcoC11995500BT
胎牛血清Gibco10270106
青霉素-链霉素BI03-03101B
Neofect转染试剂Neofect Biotech--
Hiperfect转染试剂Qiagen--
TRIzol试剂Invitrogen--
HiScript cDNA合成试剂盒VazymeR323-01
通用SYBR qPCR预混液VazymeQ511-02
CFX Connect实时荧光定量PCR检测系统Bio-Rad--
RIPA裂解液Epizyme BiomedicalPC101
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23227
SDS-PAGE凝胶ServicebioG2177
PVDF膜MilliporeIPVH00010
化学发光成像系统ServicebioG2020
线粒体分离缓冲液Beyotime--
NativePAGE 3-12% Bis-Tris蛋白凝胶Thermo Fisher ScientificBN1001BOX
Seahorse XF HS Mini分析仪Agilent--
Hoechst 33342染料Abmole--
DAPI染料InvitrogenD1306
增强型五标六色多重荧光染色试剂盒AiFangAFIHC036
Pannoramic SCAN II成像系统3DHISTECH--
Elivision Plus聚合物HRP(小鼠/兔)免疫组化试剂盒MaximKit-9902
Olympus BX51荧光显微镜Olympus--
乙酰辅酶A ELISA试剂盒SangonD751001-0048
TNF-α ELISA试剂盒ZCIBIOZC-M6765
GZMB ELISA试剂盒ZCIBIOZC-33834
IFN-γ ELISA试剂盒ZCIBIOZC-32271
SpectraMax M多功能酶标仪Molecular Devices--
Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒InvitrogenBMS500FI
布雷菲德菌素ASelleckS7046
DxP Athena流式细胞仪Cytek Biosciences--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子PeproTech315-03
白细胞介素-4PeproTech214-14
OVA257-264肽GenScriptRP10611CN
HitransG P病毒感染试剂上海吉凯基因--
嘌呤霉素MCE--
荧光素酶检测试剂Vazyme--
Ficoll分离液Cytiva--
干扰素-γSino Biological11725-HNAE
CD3/CD28磁珠Miltenyi130-091-441
白细胞介素-2Sino Biological--
白细胞介素-7Sino Biological--
白细胞介素-15Sino Biological--
DiR荧光染料Thermo Fisher Scientific--
L-亮氨酸SigmaL8912
抗PD-1抗体SelleckA2122
CD8中和抗体SelleckA2102
荧光素底物Genomeditech040621
IVIS Spectrum小动物活体成像系统----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
样本量(n=39)、患者治疗史、LARS2和CD8A表达评分标准、多重免疫荧光染色流程、免疫治疗反应判定标准
阅读提示:Materials and methods: Patient samples; Results: 图1D-H
细胞培养与转染
细胞系HK1、5-8F和MOC1的培养条件、LARS2过表达质粒和siRNA序列、转染试剂及用量
阅读提示:Materials and methods: Cell culture, plasmids, and cell transfection
体外T细胞共培养
T细胞供者HLA分型与肿瘤细胞匹配、DC诱导和抗原负载方法、共培养比例和时间、细胞毒性和凋亡检测方法
阅读提示:Materials and methods: Generation of human DCs and tumor-specific T cells; Results: 图2A-D
动物模型
小鼠品系、周龄和性别、细胞接种数量和部位、T细胞过继转移时间点和数量、肿瘤体积测量频率和计算方法
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; Results: 图2E-I
线粒体功能检测
BN-PAGE胶浓度和电泳条件、Seahorse检测细胞密度和试剂浓度(oligomycin、FCCP、rotenone/antimycin A)、ATP和NAD+/NADH检测试剂盒
阅读提示:Materials and methods: Mitochondrial isolation and blue native PAGE; Seahorse measurements; Results: 图4
抗原呈递检测
SIINFEKL肽浓度和孵育时间、FCCP和EtBr处理浓度和时间、MHC-I流式抗体克隆号
阅读提示:Materials and methods: Immunofluorescence staining; Flow cytometry; Results: 图5
表观遗传分析
ChIP实验细胞数量、抗体用量和来源、H3K27ac抗体克隆号、qPCR引物序列和HLA启动子区域
阅读提示:Materials and methods: Chromatin immunoprecipitation-quantitative PCR; Results: 图6D-E
亮氨酸处理与饮食干预
亮氨酸处理浓度和时间、亮氨酸饮食浓度(1.5% w/v)、BCH抑制剂浓度、抗PD-1抗体剂量和给药方案
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; Results: 图7和图8