验证T细胞嵌入泡沫的可行性
评估将人T细胞嵌入甲基纤维素微泡后的细胞活力和产量是否受影响。
制备含慢病毒载体的甲基纤维素泡沫,将人类T细胞混合嵌入,孵育24小时后评估细胞活力和产量。
Injectable bioinstructive microfoam for rapid bedside/in vivo programming of CAR-T cells
包含体外细胞实验、体内小鼠模型(白血病和肝癌)及离体功能验证,并提供了详细的材料与方法,证据层级丰富。
人PBMCs来源的T细胞 NSG小鼠异种移植模型(NALM-6白血病、Huh-7肝癌)
甲基纤维素泡沫制备:1.6%甲基纤维素溶液与空气按1:9比例混合,通过注射器反复混合27次 基因转移效率:LNP转染效率约提高20倍,慢病毒转导效率约提高3.4倍(MOI=1时62.9%) 泡沫处理时间:60分钟孵育可将脱靶基因转移降至6.2%,并提高靶向基因转移至93.8% 体内药代动力学:皮下注射泡沫相比静脉注射降低全身载体暴露152倍,相比皮下注射悬液降低24倍 刺激物作用:添加anti-CD3/CD28抗体和IL-2使转导效率提高1.7倍,并使转导细胞扩增21.2倍 肿瘤模型:NSG小鼠注射2x10^5 NALM-6-Luc或1x10^6 Huh-7-Luc细胞,5天后皮下注射泡沫混合物(含PBMCs、慢病毒MOI=5、anti-CD3/CD28、IL-2)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估将人T细胞嵌入甲基纤维素微泡后的细胞活力和产量是否受影响。
制备含慢病毒载体的甲基纤维素泡沫,将人类T细胞混合嵌入,孵育24小时后评估细胞活力和产量。
比较泡沫培养与悬浮培养中非病毒和病毒载体对T细胞的基因转移效率。
使用GFP mRNA-LNP(两种制剂)和慢病毒载体,分别转染/转导活性T细胞,通过流式细胞术评估GFP阳性率。
验证在泡沫中慢病毒转导产生的抗CD19 CAR-T细胞是否具有肿瘤杀伤、细胞因子分泌和扩增功能。
将CAR-T细胞与表达荧光素酶的CD19+靶细胞共培养,检测肿瘤细胞杀伤效率、IL-2、TNF-α、IFN-γ分泌水平以及细胞扩增情况。
探究泡沫能否将载体保留在作用部位,减少对非靶细胞(如HEK293)的基因转移和全身暴露。
在体外使用Transwell系统,将含荧光素酶慢病毒的泡沫或悬浮液置于HEK293单层上,孵育不同时间后检测靶向和非靶向转导。在体内通过检测血清HIV-1 p24水平评估药代动力学。
检验向泡沫中添加anti-CD3/CD28抗体和IL-2是否能提高基因转移效率和诱导T细胞扩增。
使用未活化的PBMCs,对比含或不含刺激物的泡沫中的基因转移效率和T细胞扩增,通过流式细胞术、共聚焦成像和活细胞成像分析。
在白血病和肝癌异种移植模型小鼠中,评估皮下注射泡沫编程的CAR-T细胞的治疗效力和药代动力学。
使用NSG小鼠,分别接种NALM-6和Huh-7肿瘤细胞,5天后皮下注射含CAR慢病毒(MOI=5)和PBMCs的泡沫,通过生物发光成像监测肿瘤负荷和CAR-T细胞分布,并评估生存期。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | NALM-6细胞系 | ATCC | CRL-3273 |
| Huh-7细胞系 | -- | -- | |
| 病毒脱落研究 | 人原代成纤维细胞 | ATCC | PCS-201-012 |
| 成纤维细胞基础培养基 | ATCC | PCS-201-030 | |
| 载体构建 | 慢病毒颗粒 | VectorBuilder | -- |
| mRNA转录 | CleanCap eGFP mRNA | TriLink Biotechnologies | L-7601-5 |
| 脂质纳米颗粒制备 | SM-102 | -- | -- |
| DSPC | -- | -- | |
| 胆固醇 | -- | -- | |
| DMG-PEG2000 | -- | -- | |
| Amicon Ultra超滤管(100K NMWL) | -- | -- | |
| 泡沫制备 | 甲基纤维素HV | Modernist Pantry | -- |
| CTS OpTmizer T细胞扩增无血清培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 基因转移 | InVivoMAb抗人CD3抗体 | Bio X Cell | -- |
| InVivoMAb抗人CD28抗体 | Bio X Cell | -- | |
| 重组人IL-2 | Peprotech | -- | |
| T细胞扩增 | CD3/CD28磁珠 | Life Technologies | -- |
| 小鼠实验 | NSG小鼠 | bred in house | -- |
| 细胞成像 | ImageXpress活细胞自动成像系统 | Molecular Devices | -- |
| Accu-Scope 3000-LED显微镜 | Microscope Central | -- | |
| View4K高清数码显微镜相机 | Microscope Central | -- | |
| PTFE打印环显微镜载玻片 | Delta Microscopies | D63417-13 | |
| ImageJ软件(版本1.53t) | -- | -- | |
| 细胞因子检测 | ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- |
| 病毒颗粒定量 | HIV1 p24 ELISA试剂盒 | Abcam | ab218268 |
| 数据分析与统计 | GraphPad Prism软件版本10.4.1 | GraphPad Software | -- |
| mRNA合成 | NanoSight NS300纳米颗粒追踪分析仪 | Malvern | -- |
| ZetaPALS动态光散射仪 | Brookhaven | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 泡沫制备 | 甲基纤维素浓度(1.6%),空气与液体比例(9:1),混合次数(27次),溶剂(CTS OpTmizer T Cell Expansion SFM) 阅读提示:详见Methods中的“Foam preparation”小节 |
| 细胞转导 | PBMCs来源及处理(IL-2预孵育),MOI(1或5),细胞密度(5×10^6),刺激物浓度(anti-CD3 5 μg/mL,anti-CD28 10 μg/mL,IL-2 200 ng/μL),孵育时间(48小时) 阅读提示:详见Methods中的“Cell transfection/transduction within foam versus suspension”和“Conventional CAR-T cell generation”小节 |
| 体内肿瘤模型 | NSG小鼠品系,肿瘤细胞接种量(NALM-6 2×10^5,Huh-7 1×10^6),治疗时间(肿瘤接种后5天),PBMCs数量(15×10^6或12×10^6),慢病毒MOI=5,对照设置(常规CAR-T细胞剂量) 阅读提示:详见Methods中的“Mice and in vivo tumor models”小节及图6、图7图注 |
| 药代动力学检测 | 血清样品采集时间点(0-24小时),HIV-1 p24 ELISA试剂盒(Abcam ab218268) 阅读提示:详见Methods中的“ELISA”小节及图4 |