鉴定LGALS1在肿瘤浸润免疫细胞中的表达
明确LGALS1在肿瘤微环境中不同细胞类型中的表达模式。
对小鼠肿瘤CD45+免疫细胞进行scRNA-seq,分析LGALS1表达;通过Western blot检测肿瘤细胞系中LGALS1表达;分析人类HNSCC scRNA-seq数据集和TCGA数据库。
Multifactorial effects of LGALS1 blockade sensitize tumors to immune checkpoint inhibitor
包含细胞系体外共培养、CRISPR敲除、小鼠肿瘤模型、患者样本分析及流式/单细胞测序等多层级验证。
A223小鼠SCC模型 A1419和A1206 4-NQO诱导的SCC模型 骨髓细胞-肿瘤细胞共培养体系 ICI治疗的HNSCC患者队列
LGALS1在肿瘤细胞和髓系细胞中的表达水平及亚细胞定位 抗PD-L1治疗反应者(R)与非反应者(NR)的LGALS1表达差异 OTX-008联合抗PD-L1对肿瘤生长和生存的影响 STAT3信号通路在OTX-008激活CD8 T细胞中的作用 TAMs的M1/M2极化状态及其功能
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确LGALS1在肿瘤微环境中不同细胞类型中的表达模式。
对小鼠肿瘤CD45+免疫细胞进行scRNA-seq,分析LGALS1表达;通过Western blot检测肿瘤细胞系中LGALS1表达;分析人类HNSCC scRNA-seq数据集和TCGA数据库。
探讨LGALS1表达水平是否与抗PD-L1/抗PD-1治疗结果相关。
通过流式细胞术检测小鼠PBMC和肿瘤中CD11b+细胞内LGALS1水平,检测血浆LGALS1浓度,并与治疗反应(R、SP、NR)和患者生存关联。
验证LGALS1抑制剂OTX-008与抗PD-L1联合是否能增强抗肿瘤效果。
在A223肿瘤模型中,给予不同治疗(对照、OTX-008、抗PD-L1、联合),监测肿瘤生长和生存。
确定联合治疗中,阻断肿瘤细胞来源的LGALS1与免疫细胞来源的LGALS1各自的作用。
利用CRISPR/Cas9生成LGALS1敲除的A223细胞系,体内外评估其生长,并将LGALS1-KO肿瘤移植小鼠,比较抗PD-L1单用与联合OTX-008的疗效。
研究联合治疗对髓系细胞亚群和TAM极化的影响。
流式细胞术分析肿瘤中CD11b+细胞、MDSCs、TAMs及其M1/M2表型。
在无体内复杂环境下,验证OTX-008对TAM分化和极化的直接效应。
将骨髓细胞与肿瘤细胞共培养,在有无OTX-008的条件下,分析TAM百分比和M1/M2标志。
确定OTX-008是否直接增强CD8 T细胞功能,并探索其机制。
分离脾脏CD8 T细胞,进行抗CD3/CD28刺激,用OTX-008和/或STAT3 ASO处理,检测活化标志(CD69)、细胞因子产生和凋亡。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | C57BL/6小鼠 | Jackson Laboratories | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Fisher Scientific | -- | |
| 动物实验 | Matrigel基底膜基质 | Corning | -- |
| 药物治疗 | 抗PD-L1抗体 | Leinco Technologies | P371 |
| OTX-008 | MedChemExpress | HY-19756 | |
| 流式细胞术 | Liberase DL | Sigma-Aldrich | -- |
| 红细胞裂解液 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞刺激 | 佛波醇-12-豆蔻酸酯-13-乙酸酯 | -- | -- |
| 离子霉素 | LC Laboratories | -- | |
| 布雷菲德菌素A溶液 | BD Biosciences | 347688 | |
| 流式细胞术 | LIVE/DEAD可固定Aqua死细胞染料 | Invitrogen | -- |
| BD固定/透化试剂盒 | BD Biosciences | -- | |
| TruStain FcX | BioLegend | -- | |
| Brilliant Stain Buffer Plus | BD Horizon | -- | |
| BD LSRFortessa X-20流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| FlowJo软件 | FLOWJO | -- | |
| 单细胞测序 | EasySep小鼠CD45阳性分选试剂盒 | StemCell Technologies | 18945 |
| 10x Genomics单细胞芯片G | 10x Genomics | -- | |
| Chromium Next GEM单细胞3'试剂盒 | 10x Genomics | -- | |
| Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- | |
| CellRanger软件 | 10x Genomics | -- | |
| Seurat软件 | -- | -- | |
| Western blot | Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Scientific | 23228 |
| SDS-PAGE凝胶 | Bio-Rad | -- | |
| 硝酸纤维素膜 | Bio-Rad | 1620112 | |
| ECL Plus发光液 | Cytiva | -- | |
| G:Box Chemi-XX6成像系统 | Syngene | -- | |
| ELISA | 小鼠LGALS1 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY1245 |
| 人LGALS1 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DGAL10 | |
| 血液采集 | BD Microtainer含EDTA二钾采血管 | BD Biosciences | 365974 |
| 基因敲除 | LGALS1敲除质粒 | Santa Cruz Biotechnologies | sc-421415-KO-2 |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | L3000008 |
| 细胞分选 | Beckman Coulter MoFlo Astrios高速分选仪 | Beckman Coulter | -- |
| 细胞增殖 | CellTrace Violet细胞增殖试剂盒 | Thermo Fischer Scientific | C34557 |
| LIVE/DEAD可固定绿色死细胞染料试剂盒 | Invitrogen | L23101 | |
| 细胞培养 | HEPES缓冲液 | -- | -- |
| MEM非必需氨基酸 | Mediatech Inc. | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| Gibco抗生素-抗真菌剂 | Life Science Corporation | -- | |
| β-巯基乙醇 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 吞噬实验 | Alexa Fluor 488偶联的Zymosan A生物颗粒 | Invitrogen | -- |
| CD8 T细胞分离 | EasySep小鼠CD8 T细胞分选试剂盒 | STEMCELL Technologies | 9853 |
| CD8 T细胞培养 | 人白介素-2 | -- | -- |
| CD8 T细胞刺激 | Gibco Dynabeads小鼠T细胞激活剂CD3/CD28 | Thermo Fisher Scientific | 11452D |
| CD8 T细胞处理 | STAT3特异性反义寡核苷酸 | -- | -- |
| 凋亡检测 | NucView Caspase-3底物 | Biotium | 10402 |
| 统计 | GraphPad Prism软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 肿瘤细胞系(A223、A1419或A1206)的注射数量(1×10^5或1×10^6)和注射体积(100 μL),小鼠品系(WT C57BL/6)和性别(6-8周龄)。 阅读提示:Methods: In vivo mouse work and tumor injection |
| 药物治疗方案 | 抗PD-L1剂量(200 μg/只)和给药时间(第12、14、16天),OTX-008剂量(5 mg/kg)和给药次数(7次,隔天一次),给药途径(腹腔注射)。 阅读提示:Methods: In vivo mouse work and tumor injection; Figure legends 2, 3 |
| 肿瘤测量与分组 | 肿瘤体积计算方法((length×width^2)/2),RCTV计算方式((TVn-TV0)/TV0),以及R(RCTV<0)、SP(0<RCTV≤1.5)和NR(RCTV>1.5)的定义。 阅读提示:Methods: In vivo mouse work and tumor injection; Figure legend 2 |
| 流式细胞术分析 | 肿瘤消化条件(Liberase DL 50 μg/mL,30分钟,37℃),表面和细胞内染色步骤,以及抗体克隆和浓度(见补充表1)。 阅读提示:Methods: Flow cytometry of tumor-infiltrating immune cells; Supplemental Table 1 |
| CD8 T细胞激活实验 | CD8 T细胞分离和培养条件(0.5×10^6 cells/mL),刺激条件(Dynabeads CD3/CD28 1:4),OTX-008浓度(20 μM),STAT3 ASO浓度(6或12 μM),以及刺激时间(72小时)。 阅读提示:Methods: CD8 T cell isolation and culture; Figure legend 9 |