建立抗失巢凋亡模型
获得抗失巢凋亡的骨肉瘤细胞,以模拟肿瘤转移过程中的关键步骤。
将MTH和U2OS细胞在超低附着六孔板中悬浮培养3天,转至常规板贴壁培养至单层,再悬浮培养14天,最后转至常规板,获得的再贴壁细胞作为抗失巢凋亡细胞MTHar和U2OSar。
Anoikis‑resistant human osteosarcoma cells display significant angiogenesis by activating the Src kinase‑mediated MAPK pathway.
包含体外细胞模型(MTHar/U2OSar)、HUVEC功能实验、患者组织IHC分析及裸鼠移植瘤模型,并进行了Src抑制剂干预的机制验证。
MTHar和U2OSar抗失巢凋亡骨肉瘤细胞 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 裸鼠皮下移植瘤模型 人骨肉瘤组织样本(26例)
抗失巢凋亡模型的建立条件(悬浮培养3天转贴壁,再悬浮14天) Src抑制剂PP2的浓度(10 μmol/l)和处理时间(24小时) HUVEC功能实验的检测指标(迁移、管形成、增殖) 患者组织p-Src和VEGF-A表达与转移的相关性(P值) 裸鼠移植瘤模型中MTH/MTHar细胞的注射剂量(1×10^6)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得抗失巢凋亡的骨肉瘤细胞,以模拟肿瘤转移过程中的关键步骤。
将MTH和U2OS细胞在超低附着六孔板中悬浮培养3天,转至常规板贴壁培养至单层,再悬浮培养14天,最后转至常规板,获得的再贴壁细胞作为抗失巢凋亡细胞MTHar和U2OSar。
检测抗失巢凋亡细胞的条件培养基(CM)对HUVEC血管生成能力的影响。
收集亲本和抗失巢凋亡细胞的CM,用于HUVEC的划痕实验、管形成实验和增殖实验,同时检测VEGF-A表达。
探究Src激酶是否通过JNK/ERK通路调控VEGF-A表达和血管生成。
用Src抑制剂PP2预处理抗失巢凋亡细胞,检测VEGF-A表达、HUVEC功能以及JNK/ERK/p38磷酸化水平。
评估p-Src和VEGF-A表达与骨肉瘤患者临床病理特征及血管生成的相关性。
收集26例骨肉瘤组织,进行IHC染色检测p-Src、VEGF-A和CD31,计算MVD,并与临床参数进行统计分析。
在体内验证抗失巢凋亡细胞通过p-Src和VEGF-A促进血管生成。
将MTH和MTHar细胞皮下注射到裸鼠,3周后取肿瘤进行IHC检测p-Src、VEGF-A和CD34。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| RPMI-1640培养基 | HyClone | -- | |
| 胎牛血清 | Biological Industries | -- | |
| 青霉素-链霉素 | HyClone | -- | |
| 建立抗失巢凋亡模型 | 超低附着六孔板 | Corning | -- |
| 流式凋亡检测 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | BD Biosciences | -- |
| 制备条件培养基 | PP2 | Selleckchem | -- |
| 细胞增殖实验 | CCK-8试剂盒 | Dojindo Laboratories | -- |
| 酶标仪 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| 管形成实验 | 基质胶 | BD Biosciences | -- |
| ELISA | 人VEGF-A ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Takara Bio Inc. | -- |
| RT-qPCR | QuantScript反转录试剂盒 | Takara Bio Inc. | -- |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | 89900 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | P0010S | |
| SDS-PAGE凝胶 | Beyotime Institute of Biotechnology | P0012A | |
| PVDF膜 | Roche | 3010040001 | |
| 抗p-Src抗体 | Cell Signaling Technology | 2105 | |
| 抗Src抗体 | Cell Signaling Technology | 2109 | |
| 抗VEGF抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-7269 | |
| 抗JNK抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AJ518 | |
| 抗ERK抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AM076 | |
| 抗p-ERK抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AF1891 | |
| 抗p-JNK抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AF1762 | |
| 抗p38抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AM065 | |
| 抗p-p38抗体 | Beyotime Institute of Biotechnology | AM063 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Biodragon Immunotech | BA1056 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Biodragon Immunotech | BA1050 | |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 5174 | |
| ECL化学发光试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | P0018FFT | |
| 免疫组织化学 | IHC试剂盒 | ZSGB-BIO | -- |
| 抗CD31抗体 | ZSGB-BIO | ZM-0044 | |
| 抗CD34抗体 | Abcam | Ab81289 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源:MTH和U2OS;培养基:DMEM和RPMI-1640;血清浓度10% FBS;培养条件:37°C、5% CO2。 阅读提示:Materials and methods, Cell culture |
| 抗失巢凋亡模型建立 | 悬浮培养时间:3天和14天;使用超低附着6孔板。 阅读提示:Materials and methods, AI culture |
| HUVEC功能实验 | 划痕实验:0和20小时;管形成实验:1×10^4细胞/孔,6小时拍照;增殖实验:1×10^3细胞/孔,1–5天检测。 阅读提示:Materials and methods, Wound healing assay, Tube formation assay, Cell proliferation assay |
| Src抑制剂处理 | PP2浓度:10 μmol/l;处理时间:24小时。 阅读提示:Materials and methods, Preparation of conditioned medium |
| 临床样本分析 | 患者样本数:26例;IHC评分标准;MVD计数方法。 阅读提示:Materials and methods, Human osteosarcoma specimen preparation, Immunohistochemistry (IHC) analysis |
| 动物实验 | 小鼠数量:8只;每组4只;注射细胞数:1×10^6;观察时间:3周。 阅读提示:Materials and methods, Mouse xenograft assay |