制备负载FUC的皮克林乳液
构建由京尼平交联SPI-COS纳米颗粒稳定的FUC负载皮克林乳液,并与天然SPI和物理混合SPI-COS稳定的乳液比较。
将京尼平交联SPI-COS纳米颗粒分散于水中作为水相,FUC溶于大豆油作为油相,混合后高速均质(13000 rpm,1 min)制备G-SPI-COS/FUC乳液;同样方法制备SPI/FUC和SPI-COS/FUC乳液作为对照。
Encapsulation of fucoxanthin in pickering emulsion with improved stability and bioaccessibility for inflammatory bowel disease prevention.
包含体外乳液稳定性表征、模拟消化实验、细胞摄取实验、小鼠体内分布实验及DSS诱导结肠炎模型预防实验,涉及体外和体内两个独立证据层级,并有功能验证和机制验证。
Caco-2细胞 BALB/c小鼠DSS诱导结肠炎模型 G-SPI-COS/FUC皮克林乳液
FUC浓度:250 μg/20 g/天,灌胃给药7天 DSS诱导浓度:4% DSS水溶液,自由饮用7天 动物模型:6周龄雄性BALB/c小鼠,每组6只 乳液粒径:G-SPI-COS/FUC乳液平均粒径约2.49 μm 体外消化:INFOGEST静态模拟消化模型
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建由京尼平交联SPI-COS纳米颗粒稳定的FUC负载皮克林乳液,并与天然SPI和物理混合SPI-COS稳定的乳液比较。
将京尼平交联SPI-COS纳米颗粒分散于水中作为水相,FUC溶于大豆油作为油相,混合后高速均质(13000 rpm,1 min)制备G-SPI-COS/FUC乳液;同样方法制备SPI/FUC和SPI-COS/FUC乳液作为对照。
评估不同稳定剂对FUC负载皮克林乳液的包封效率、粒径、pH稳定性、离子稳定性和储存稳定性的影响。
测定乳液的包封效率(EE)和平均粒径;在pH 2-9、NaCl浓度100-1000 mM条件下储存7天后测定粒径和FUC保留率;在4°C避光或光照条件下储存28天,每周测定粒径和FUC保留率。
模拟口腔、胃和肠道消化过程,评估乳液在胃肠道中的结构变化和FUC释放特性。
采用INFOGEST静态消化模型,将乳液依次暴露于模拟唾液、胃液和肠液中,通过激光共聚焦显微镜观察结构变化,监测游离脂肪酸(FFA)释放率。
评估乳液在消化过程中FUC的释放和生物利用度,以及消化后乳液对Caco-2细胞的细胞毒性和细胞摄取效果。
测定消化过程中不同时间点FUC的释放率,计算生物利用度;将消化后乳液与Caco-2细胞共培养,通过CCK-8法检测细胞活力;测定FUC的细胞摄取率。
评估不同乳液在小鼠体内的分布情况,比较其肠道吸收效果。
用尼罗蓝标记纳米颗粒制备荧光标记乳液,经口给予BALB/c小鼠PBS、SPI/FUC乳液和G-SPI-COS/FUC乳液,在6小时后采用活体成像系统观察荧光分布。
评估G-SPI-COS/FUC乳液对DSS诱导结肠炎的预防效果,并比较不同治疗组的效果。
小鼠随机分为对照组、DSS组、FUC组、SPI/FUC乳液组和G-SPI-COS/FUC乳液组,连续灌胃给药7天,然后自由饮用4% DSS水溶液一周,记录DAI评分、体重、存活率、脾脏指数、结肠长度,并检测血清中IL-6和TNF-α水平。
评估乳液处理对结肠组织病理损伤的改善作用,以及降低炎症因子表达的效果。
对结肠组织进行H&E染色观察组织形态;用ELISA试剂盒检测血清中IL-6和TNF-α水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 乳液制备 | 大豆油 | -- | -- |
| 岩藻黄素 | Macklin | -- | |
| 京尼平 | Yuanye | -- | |
| 大豆分离蛋白 | Yuanye | -- | |
| 壳寡糖 | Macklin | -- | |
| 体外消化 | 胃蛋白酶 | Aladdin | -- |
| 胆盐 | Aladdin | -- | |
| 胰酶 | Aladdin | -- | |
| 细胞培养 | 最低必需培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素 | Gibco | -- | |
| 链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞检测 | CCK-8试剂 | Beyotime | -- |
| 动物实验 | 葡聚糖硫酸钠 | Shanghai Advantage Biological Co., Ltd. | -- |
| 荧光标记 | 尼罗蓝 | -- | -- |
| 体外消化成像 | 尼罗红 | -- | -- |
| 尼罗蓝 | -- | -- | |
| 炎症因子检测 | ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| 粒径与Zeta电位测量 | 动态光散射仪(Nano-ZS90) | Malvern | -- |
| 荧光显微镜 | 激光共聚焦显微镜(LSM 710) | Carl Zeiss | -- |
| 活体成像 | 活体成像系统(Lumina III) | PerkinElmer | -- |
| 组织学分析 | 显微镜 | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 乳液制备 | 京尼平交联SPI-COS纳米颗粒的制备方法(参考Jiao et al., 2023),水相中纳米颗粒浓度300 mg/4 mL,油相FUC浓度1 mg/10 mL大豆油,均质条件13000 rpm 1 min。 阅读提示:Materials and methods 2.2和2.3 |
| 稳定性测试 | pH范围2-9,离子强度(NaCl浓度)100-1000 mM,储存温度4°C,时间7天或28天,光照条件(自然光或暗处)。 阅读提示:Materials and methods 2.5 |
| 体外模拟消化 | INFOGEST消化模型参数:SSF、SGF(含200 U/mL胃蛋白酶)、SIF(含40 mg/mL胆盐、20 U/mL胰酶),消化时间、pH、温度、转速。 阅读提示:Materials and methods 2.6 |
| 细胞实验 | Caco-2细胞培养条件(MEM+20% FBS),消化乳液浓度(0.1-0.5 mg/mL),FUC浓度20 μg/mL,处理时间1、2、4 h。 阅读提示:Materials and methods 2.7 |
| 动物实验 | 小鼠品系(BALB/c)、性别(雄性)、年龄(6周龄)、随机分组、每组数量(n=6)、给药剂量(FUC 250 μg/20 g/天)、给药方式(灌胃)、给药时间(7天)、DSS浓度(4%)及饮用时间(7天)。 阅读提示:Materials and methods 2.8和2.9 |