IHMs的构建与表征
合成并验证具有快速释放MCP-1和缓释自身抗原、表面修饰FasL能力的免疫稳态微粒。
采用双乳液法制备PAA-PHEMA-PLLA和PLGA聚合物微球,通过酰胺化、开环和点击反应修饰MSNs和PEG,并负载FasL、MCP-1和自身抗原肽;通过NMR、FTIR、SEM、TEM、EDX、TGA、BET等表征其理化性质。
Modular immune-homeostatic microparticles promote immune tolerance in mouse autoimmune models.
包含体外细胞实验、DSS诱导结肠炎模型、EAE模型、NOD糖尿病模型等多层级验证,并进行了组分缺失和中和抗体等机制验证。
DSS诱导结肠炎小鼠模型 MOG35-55诱导的EAE小鼠模型 NOD/ShiLtJ小鼠糖尿病模型 体外培养的活化T细胞
IHM的剂量:20 mg/kg MCP-1的快速释放和FasL的表面修饰 EAE模型中MOG35-55和NOD模型中GAD524-543的负载 EAE模型第14天、结肠炎模型第3天进行静脉注射 TGF-β中和抗体的使用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
合成并验证具有快速释放MCP-1和缓释自身抗原、表面修饰FasL能力的免疫稳态微粒。
采用双乳液法制备PAA-PHEMA-PLLA和PLGA聚合物微球,通过酰胺化、开环和点击反应修饰MSNs和PEG,并负载FasL、MCP-1和自身抗原肽;通过NMR、FTIR、SEM、TEM、EDX、TGA、BET等表征其理化性质。
验证IHMs通过MCP-1招募活化T细胞,并通过FasL/Fas途径诱导其凋亡。
使用transwell共培养系统检测T细胞迁移;用Western blot检测凋亡相关蛋白(cleaved caspase-3、Bax、Bcl-2、tBID)表达;用流式细胞术检测Annexin V/PI染色阳性细胞比例。
评估IHMs在结肠炎模型中的免疫调节和抗炎作用。
DSS诱导小鼠结肠炎,在第3天静脉注射PBS、PMPC、IHMMCP-1 null或IHMs,监测体重、DAI评分、T细胞亚群、血清细胞因子和结肠组织病理。
验证负载MOG35-55的IHMs能否通过诱导MOG特异性Treg抑制EAE。
免疫MOG35-55建立EAE,第14天静脉注射PBS、IHMOVA或IHMMOG,记录临床评分,检测T细胞凋亡、脊髓病理、脾细胞增殖和细胞因子、脑和脊髓中MOG35-55特异性Treg。
验证负载GAD524-543的IHMs能否诱导GAD特异性Treg并阻断糖尿病发展。
对血糖>200 mg/dl的NOD小鼠单次注射IHMGAD、IHMOVA或PBS,监测血糖、胰岛病理、胰腺引流淋巴结中Treg和Th1细胞比例、脾细胞GAD特异性增殖和细胞因子。
确定IHM介导的治疗效果是否依赖于MCP-1、FasL和TGF-β。
使用缺失MCP-1或FasL的IHM变体,以及TGF-β中和抗体处理,观察对T细胞凋亡、组织病理和抗原特异性Treg的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 微粒合成 | PAA-PHEMA-PLLA共聚物 | -- | -- |
| 聚乳酸-羟基乙酸共聚物 | -- | -- | |
| 氨基和巯基共功能化介孔二氧化硅纳米颗粒 | -- | -- | |
| 双环氧功能化聚乙二醇 | -- | -- | |
| 聚乙二醇甲基丙烯酸酯 | -- | -- | |
| 单核细胞趋化蛋白-1 | -- | -- | |
| Fas配体 | -- | -- | |
| 髓鞘少突胶质细胞糖蛋白35-55肽 | Ontores | -- | |
| 谷氨酸脱羧酶524-543肽 | Ontores | -- | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| L-谷氨酰胺 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 红细胞裂解液 | Beyotime Biotechnology | C3702 | |
| PBMC分离 | 淋巴细胞分离液 | Dakewe | 7211011 |
| 趋化实验 | PKH26荧光染料 | Sigma-Aldrich | -- |
| T细胞分选 | CD4+CD25+调节性T细胞分离试剂盒 | Miltenyi | 130-091-041 |
| 细胞增殖 | 羧基荧光素二乙酸琥珀酰亚胺酯 | BioLegend | 423801 |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| 流式细胞术 | Annexin-V-FLUOS染色试剂盒 | Roche | -- |
| True-Nuclear转录因子缓冲液套装 | BioLegend | 424401 | |
| 细胞活化鸡尾酒 | BioLegend | 423303 | |
| 抗CD3-APC抗体 | BioLegend | 100312 | |
| 抗IL-17A-PE抗体 | eBioscience | 12-7177-81 | |
| 抗CD4-PE/Cy7抗体 | BioLegend | 100528 | |
| 抗CD25-APC抗体 | BioLegend | 102012 | |
| 抗Foxp3-PE抗体 | eBioscience | 126404 | |
| 抗IFN-γ-PE抗体 | BioLegend | 507806 | |
| 抗CD8-FITC抗体 | eBioscience | 11-0081 | |
| 抗CD19-PE抗体 | eBioscience | 12-0193-82 | |
| 抗CD11b-PerCP/Cy5.5抗体 | BioLegend | 101227 | |
| 抗CD11c-Alexa Fluor 488抗体 | eBioscience | 53-0114-82 | |
| TGF-β中和 | 抗TGF-β中和抗体 | Bio X Cell | BE0057 |
| Western blot | caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9662 |
| cleaved caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| Bax抗体 | Cell Signaling Technology | 2772 | |
| Bcl-2抗体 | Cell Signaling Technology | 2870 | |
| BID抗体 | R&D Systems | AF860 | |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Cell Signaling Technology | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| Western Light化学发光检测系统 | Tanon | -- | |
| 结肠炎诱导 | 葡聚糖硫酸钠 | MP Biomedicals | -- |
| EAE诱导 | MOG35-55肽 | Ontores | -- |
| 不完全弗氏佐剂 | -- | -- | |
| 百日咳毒素 | Merck | -- | |
| 组织学分析 | 徕卡RM2235手动旋转切片机 | Leica | -- |
| 流式细胞术 | Cytomics FC 500流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| 统计分析 | SPSS软件版本25.0 | -- | -- |
| 细胞培养 | 抗CD3抗体 | BioLegend | 100314 |
| 抗CD28抗体 | eBioscience | 16-0281-85 | |
| 流式细胞术 | MOG35-55/I-Ab四聚体 | MBL | TS-M704 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| IHMs的构建 | 聚合物微球中PAA-PHEMA-PLLA与PLGA的质量比(1:1) 阅读提示:材料与方法:微粒合成 |
| DSS结肠炎模型 | DSS浓度(3% w/v)、处理时间(10天)、给药途径(口服饮水)、注射时间(第3天)、剂量(20 mg/kg) 阅读提示:材料与方法:Establishment of an experimental colitis model |
| EAE模型 | MOG35-55剂量(200 μg/只)、注射方式(皮下)、佐剂成分(不完全弗氏佐剂和热灭活结核分枝杆菌4 mg/ml)、百日咳毒素剂量(200 ng/只)、静脉注射时间(第14天)、剂量(20 mg/kg) 阅读提示:材料与方法:EAE induction |
| NOD糖尿病模型 | 小鼠品系(NOD/ShiLtJ)、血糖标准(>200 mg/dl治疗,>250 mg/dl判定糖尿病)、单次注射剂量 阅读提示:材料与方法:小鼠、结果图6 |
| T细胞迁移和凋亡实验 | T细胞激活抗体浓度(抗CD3和抗CD28均为2 μg/ml)、共培养时间(24小时)、IHM浓度(0.1 μg/μl)、凋亡检测时间(6小时) 阅读提示:材料与方法:Cell migration(chemotaxis)assay、结果图2 |