HaCaT细胞培养与钙诱导分化
建立不同分化水平的角质形成细胞模型,验证钙浓度对分化的影响。
将HaCaT细胞在无钙培养基中培养至少两周后,用0、0.1、1.2、1.8 mM钙浓度处理7、24、48小时诱导分化,并用形态学变化和分化标记物(K10、involucrin)验证分化状态。
Modulation of Corticotropin-Releasing Hormone Receptor Expression During In Vitro Keratinocyte Differentiation.
包含体外细胞系(HaCaT)分化模型与重建皮肤组织模型两个独立证据层级,并通过免疫细胞化学、Western blot和免疫组织化学进行功能与机制验证。
HaCaT细胞系(人永生化角质形成细胞) 重建皮肤模型(T-Skin™,含NHEK和NHDF)
钙浓度梯度:0、0.1、1.2、1.8 mM 分化诱导时间:7、24、48小时 分化标记物:cytokeratin K10和involucrin的表达 抗体浓度:ICC及Western blot中CRHR1/2抗体浓度不同(ICC: 10 µg/mL;WB: 4 µg/mL)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立不同分化水平的角质形成细胞模型,验证钙浓度对分化的影响。
将HaCaT细胞在无钙培养基中培养至少两周后,用0、0.1、1.2、1.8 mM钙浓度处理7、24、48小时诱导分化,并用形态学变化和分化标记物(K10、involucrin)验证分化状态。
定性检测不同分化状态下HaCaT细胞中CRHR1和CRHR2的表达定位与相对水平。
HaCaT细胞经钙梯度处理后,使用抗CRHR1/2抗体进行免疫荧光染色,通过荧光显微镜观察和定量分析荧光强度。
定量验证CRHR1和CRHR2在不同分化状态下的表达变化,并确认分化标记物表达。
收集不同处理条件下的HaCaT细胞蛋白,通过Western blot检测CRHR1、CRHR2、K10和involucrin的表达水平,以0 mM钙7h为参照进行定量。
在更接近生理状态的重建皮肤模型中验证CRHR1/2的定位与表达是否与体外观察一致。
对重建皮肤(T-Skin™)切片进行免疫组化染色,检测CRHR1和CRHR2在表皮各层的表达分布。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | HaCaT细胞 | Cytion GmbH | 300493 |
| DMEM培养基 | Gibco | 42430025 | |
| 胎牛血清 | Gibco | 10270-106 | |
| 青霉素-链霉素 | Sigma-Aldrich | P4333 | |
| 0.25%胰蛋白酶-EDTA | Gibco | 25200-056 | |
| 钙诱导分化 | Chelex 100 | Sigma-Aldrich | C7901 |
| 无钙DMEM | Gibco | 21036029 | |
| L-谷氨酰胺 | Thermo Fisher Scientific | 35050-061 | |
| 氯化钙 | Sigma-Aldrich | 21115 | |
| 比色法钙检测试剂盒 | Elabscience | E-BC-K103-M | |
| 免疫细胞化学 | Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 |
| 尿素 | Sigma-Aldrich | GE17-1319-01 | |
| 磷酸盐缓冲液 | Sigma-Aldrich | P4474 | |
| 牛血清白蛋白 | R&D Systems | DY995 | |
| 抗人CRHR1抗体 | Alomone Labs | ACR-050-200UL | |
| 抗人CRHR2抗体 | Alomone Labs | ACR-052-200UL | |
| Alexa Fluor-488标记山羊抗兔IgG | Invitrogen | A-1108 | |
| DAPI核染料 | Invitrogen | R37606 | |
| 兔IgG同型对照 | Invitrogen | 31235 | |
| Leica DMi8倒置荧光显微镜 | Leica Microsystems | -- | |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Sigma-Aldrich | 71285-M |
| Laemmli缓冲液 | Bio-Rad | 1610737 | |
| 二硫苏糖醇 | Bio-Rad | 1610610 | |
| Thermomixer C恒温混匀仪 | Eppendorf | -- | |
| Western C分子量标记 | Bio-Rad | 1610376 | |
| Trans-Blot Turbo半干转印系统 | Bio-Rad | -- | |
| EveryBlot封闭液 | Bio-Rad | 12010020 | |
| 抗K10抗体 | Sigma-Aldrich | ACR-310249 | |
| 抗involucrin抗体 | Sigma-Aldrich | I9018 | |
| Tris缓冲盐溶液 | Thermo Fisher Scientific | J60764.K2 | |
| 吐温20 | Bio-Rad | 1610781 | |
| Clarity Western ECL底物 | Bio-Rad | 1705061 | |
| ChemiDoc成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫组织化学 | T-Skin™重建皮肤 | Episkin | -- |
| HistoCore BIOCUT切片机 | Leica Microsystems | -- | |
| Superfrost Plus™显微镜载玻片 | Epredia™ | 10149870 | |
| 柠檬酸盐缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | J62918 | |
| 过氧化氢 | Sigma-Aldrich | H1009 | |
| 疏水阻隔笔 | TED PELLA | 22309 | |
| DAB底物试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 34002 | |
| Permount封片剂 | Thermo Fisher Scientific | SP15-100 | |
| Leica DMi8倒置显微镜 | Leica Microsystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| HaCaT细胞培养与钙诱导分化 | 细胞来源、培养基配方(无钙DMEM+10%无钙FBS+青霉素/链霉素+L-谷氨酰胺)、钙浓度(0、0.1、1.2、1.8 mM)、处理时间(7、24、48小时) 阅读提示:详见Methods 2.1和2.2节 |
| 免疫细胞化学 | 细胞密度(5000 cells/well)、固定(4% PFA)、透化(0.5% Triton X-100)、封闭(1% BSA)、一抗浓度(10 µg/mL)、二抗浓度(10 µg/mL)、孵育时间 阅读提示:详见Methods 2.3节 |
| Western blot | 细胞裂解方法、蛋白定量(BCA)、上样量(10 µg)、凝胶(4-20%)、转膜条件(2.5A,5min)、封闭(EveryBlot)、一抗浓度(CRHR1/2: 4 µg/mL;K10: 2 µg/mL;involucrin: 0.67 µg/mL)、二抗浓度、ECL检测 阅读提示:详见Methods 2.4节 |
| 重建皮肤免疫组织化学 | 重建皮肤模型(T-Skin™)、切片厚度(7 µm)、抗原修复(0.1 M柠檬酸盐缓冲液pH 6,90°C 30min)、一抗浓度(20 µg/mL)、二抗浓度(10 µg/mL)、DAB显色时间 阅读提示:详见Methods 2.5节 |