体外角质形成细胞分化过程中促肾上腺皮质激素释放激素受体表达的调节

Modulation of Corticotropin-Releasing Hormone Receptor Expression During In Vitro Keratinocyte Differentiation.

作者信息Carole-Anne Martins, Sara Lesink, Angéline Roux, Guillaume Collet, Richard Daniellou
PMID41751472
发布时间2026-02-14
DOI10.3390/cimb48020210

实验完整度

包含体外细胞系(HaCaT)分化模型与重建皮肤组织模型两个独立证据层级,并通过免疫细胞化学、Western blot和免疫组织化学进行功能与机制验证。

主要模型

HaCaT细胞系(人永生化角质形成细胞) 重建皮肤模型(T-Skin™,含NHEK和NHDF)

重点核对

钙浓度梯度:0、0.1、1.2、1.8 mM 分化诱导时间:7、24、48小时 分化标记物:cytokeratin K10和involucrin的表达 抗体浓度:ICC及Western blot中CRHR1/2抗体浓度不同(ICC: 10 µg/mL;WB: 4 µg/mL)

摘要

促肾上腺皮质激素释放激素(CRH)及其受体CRHR1和CRHR2是应激反应的主要参与者,且已被确定为下丘脑-垂体-肾上腺(HPA)轴的组成部分。证据还表明它们在周围组织中表达,更有趣的是在皮肤中表达。虽然CRHR1在角质形成细胞中的表达在存在与否方面已有文献记载,但关于CRHR2的数据仍然很少。此外,尚不清楚CRHR1/2受体在表皮不同层内的确切定位,这个问题尚未被探索。为了更好地理解应激与皮肤疾病之间的联系,我们旨在研究CRHR1和CRHR2在角质形成细胞中随分化水平不同而差异表达的情况。体外结果表明,CRHR1在分化早期阶段似乎更为丰富,而CRHR2在更晚期阶段更为丰富。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CRHR1和CRHR2在角质形成细胞中的表达是否随分化程度不同而差异表达,其具体定位如何?
核心机制
钙诱导的角质形成细胞分化调节CRHR1和CRHR2的表达,CRHR1在分化早期(0.1 mM钙)诱导,CRHR2在分化晚期(≥1.2 mM钙)诱导。
主要证据
体外HaCaT细胞钙诱导分化实验(免疫细胞化学和Western blot)显示CRHR1在0.1 mM钙时表达增加,CRHR2在1.2和1.8 mM钙时表达增加;重建皮肤模型免疫组化显示两者在表皮上层表达增强。
研究意义
揭示了CRHR1/2在角质形成细胞中的差异表达模式,为研究应激相关皮肤疾病中受体作用提供了新线索,但需进一步体内验证和功能研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

HaCaT细胞培养与钙诱导分化

建立不同分化水平的角质形成细胞模型,验证钙浓度对分化的影响。

将HaCaT细胞在无钙培养基中培养至少两周后,用0、0.1、1.2、1.8 mM钙浓度处理7、24、48小时诱导分化,并用形态学变化和分化标记物(K10、involucrin)验证分化状态。

2

免疫细胞化学检测CRHR1/2表达

定性检测不同分化状态下HaCaT细胞中CRHR1和CRHR2的表达定位与相对水平。

HaCaT细胞经钙梯度处理后,使用抗CRHR1/2抗体进行免疫荧光染色,通过荧光显微镜观察和定量分析荧光强度。

3

Western blot定量分析CRHR1/2表达

定量验证CRHR1和CRHR2在不同分化状态下的表达变化,并确认分化标记物表达。

收集不同处理条件下的HaCaT细胞蛋白,通过Western blot检测CRHR1、CRHR2、K10和involucrin的表达水平,以0 mM钙7h为参照进行定量。

4

重建皮肤模型免疫组化验证

在更接近生理状态的重建皮肤模型中验证CRHR1/2的定位与表达是否与体外观察一致。

对重建皮肤(T-Skin™)切片进行免疫组化染色,检测CRHR1和CRHR2在表皮各层的表达分布。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
HaCaT细胞Cytion GmbH300493
DMEM培养基Gibco42430025
胎牛血清Gibco10270-106
青霉素-链霉素Sigma-AldrichP4333
0.25%胰蛋白酶-EDTAGibco25200-056
Chelex 100Sigma-AldrichC7901
无钙DMEMGibco21036029
L-谷氨酰胺Thermo Fisher Scientific35050-061
氯化钙Sigma-Aldrich21115
比色法钙检测试剂盒ElabscienceE-BC-K103-M
Triton X-100Sigma-AldrichT8787
尿素Sigma-AldrichGE17-1319-01
磷酸盐缓冲液Sigma-AldrichP4474
牛血清白蛋白R&D SystemsDY995
抗人CRHR1抗体Alomone LabsACR-050-200UL
抗人CRHR2抗体Alomone LabsACR-052-200UL
Alexa Fluor-488标记山羊抗兔IgGInvitrogenA-1108
DAPI核染料InvitrogenR37606
兔IgG同型对照Invitrogen31235
Leica DMi8倒置荧光显微镜Leica Microsystems--
BCA蛋白定量试剂盒Sigma-Aldrich71285-M
Laemmli缓冲液Bio-Rad1610737
二硫苏糖醇Bio-Rad1610610
Thermomixer C恒温混匀仪Eppendorf--
Western C分子量标记Bio-Rad1610376
Trans-Blot Turbo半干转印系统Bio-Rad--
EveryBlot封闭液Bio-Rad12010020
抗K10抗体Sigma-AldrichACR-310249
抗involucrin抗体Sigma-AldrichI9018
Tris缓冲盐溶液Thermo Fisher ScientificJ60764.K2
吐温20Bio-Rad1610781
Clarity Western ECL底物Bio-Rad1705061
ChemiDoc成像系统Bio-Rad--
T-Skin™重建皮肤Episkin--
HistoCore BIOCUT切片机Leica Microsystems--
Superfrost Plus™显微镜载玻片Epredia™10149870
柠檬酸盐缓冲液Thermo Fisher ScientificJ62918
过氧化氢Sigma-AldrichH1009
疏水阻隔笔TED PELLA22309
DAB底物试剂盒Thermo Fisher Scientific34002
Permount封片剂Thermo Fisher ScientificSP15-100
Leica DMi8倒置显微镜Leica Microsystems--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
HaCaT细胞培养与钙诱导分化
细胞来源、培养基配方(无钙DMEM+10%无钙FBS+青霉素/链霉素+L-谷氨酰胺)、钙浓度(0、0.1、1.2、1.8 mM)、处理时间(7、24、48小时)
阅读提示:详见Methods 2.1和2.2节
免疫细胞化学
细胞密度(5000 cells/well)、固定(4% PFA)、透化(0.5% Triton X-100)、封闭(1% BSA)、一抗浓度(10 µg/mL)、二抗浓度(10 µg/mL)、孵育时间
阅读提示:详见Methods 2.3节
Western blot
细胞裂解方法、蛋白定量(BCA)、上样量(10 µg)、凝胶(4-20%)、转膜条件(2.5A,5min)、封闭(EveryBlot)、一抗浓度(CRHR1/2: 4 µg/mL;K10: 2 µg/mL;involucrin: 0.67 µg/mL)、二抗浓度、ECL检测
阅读提示:详见Methods 2.4节
重建皮肤免疫组织化学
重建皮肤模型(T-Skin™)、切片厚度(7 µm)、抗原修复(0.1 M柠檬酸盐缓冲液pH 6,90°C 30min)、一抗浓度(20 µg/mL)、二抗浓度(10 µg/mL)、DAB显色时间
阅读提示:详见Methods 2.5节