结直肠癌多胺代谢的多组学分析,强调细胞外腐胺在损害CXCR6+CD8+ T细胞抗肿瘤活性中的关键作用

Multiomics analysis of polyamine metabolism in colorectal cancer, highlighting the key role of extracellular putrescine in impairing CXCR6+CD8+ T cell anti-tumor activity.

作者信息Ziru Tan, Yuqiang Zhang, Cong Pei Jia, Haifeng Lian, Bin Wang
PMID41700134
期刊PeerJ
发布时间2026-02-12
DOI10.7717/peerj.20663

实验完整度

包含多组学数据分析、体外细胞实验、体外T细胞诱导功能实验和DSS小鼠模型及scRNA-seq验证,具备功能与机制验证。

主要模型

HCT-116和RKO结直肠癌细胞系 体外诱导的CXCR6+CD8+ T细胞 DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠模型 CRC患者组织样本(scRNA-seq及bulk RNA-seq队列)

重点核对

HCT-116和RKO细胞培养条件及PUT处理浓度(5 µg/mL) PBMCs分离及CXCR6+CD8+ T细胞体外诱导体系(CD3/CD28/CD2激活剂、IL-15、BALL-1抗原) DSS诱导结肠炎模型分组及处理(对照组、DSS组、DSS+PUT组) CXCR6+CD8+ T细胞功能评估基因集(细胞毒性、耗竭、组织驻留等) DFMO(ODC1抑制剂)对PUT抑制效应的逆转实验

摘要

腐胺(PUT)代谢对结直肠癌(CRC)肿瘤免疫监视受损的贡献,需要对其在肿瘤发展过程中的生物合成、分解代谢和转运进行全面检查。这项研究意外地发现,较好的预后与PUT生物合成基因ODC1和AGMAT的较高表达相关,而生物合成抑制剂和转运基因的高表达则预示着较差的结果。通过整合来自131名受试者221个样本的517,191个细胞的数据,对两个独立队列进行了解卷积。PUT转运评分较低的上皮亚群比例较高与预后改善相关。相反,低生物合成但相对较高转运评分的T/NK/ILC细胞比例较高与较差的结果相关。在HCT-116和RKO细胞中补充PUT促进了肿瘤细胞增殖,但对细胞迁移或N-钙粘蛋白和E-钙粘蛋白的表达没有影响。肿瘤组织中更普遍的CXCR6+ CD8+ T细胞,与CXCR6− CD8+ T细胞相比,表现出显著更高的细胞毒性,这是使用更新的T细胞功能评估基因集评估的。然而,CXCR6+CD8+ T细胞也表现出更高的耗竭标志物。值得注意的是,较高的CXCR6表达和增加的CXCR6+ CD8+ T细胞浸润与错配修复 proficient和错配修复 deficient CRC的改善预后相关。为了估计CXCR6+ CD8+ T细胞周围PUT的局部积累,定义了一个新的“Pi值”。发现Pi值与这些细胞的细胞毒活性和促炎潜力呈负相关。使用基于CRC肿瘤抗原的体外系统进一步研究,该系统可有效诱导CXCR6+ CD8+ T细胞,揭示细胞外PUT抑制其细胞毒功能。此外,在葡聚糖硫酸钠(DSS)诱导的结肠炎模型结合单细胞RNA测序中,补充PUT导致结肠中CXCR6+ CD8+ T细胞的消除。这些发现为多胺代谢,特别是细胞外PUT如何损害CXCR6+CD8+ T细胞的抗肿瘤活性提供了新的见解,可能有助于CRC进展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
细胞外腐胺是否以及如何通过损害CXCR6+CD8+ T细胞的抗肿瘤活性来促进结直肠癌进展?
核心机制
细胞外腐胺通过ODC1依赖性途径损害CXCR6+CD8+ T细胞的细胞毒功能并抑制其增殖,从而削弱抗肿瘤免疫监视。
主要证据
多组学分析显示细胞外腐胺积累与CXCR6+CD8+ T细胞细胞毒活性负相关;体外实验证实PUT抑制其细胞毒功能,DFMO可逆转;DSS模型中PUT补充导致CXCR6+CD8+ T细胞消失。
研究意义
研究揭示多胺代谢尤其是细胞外PUT在CRC免疫逃逸中的关键作用,提示靶向多胺代谢可能增强CXCR6+CD8+ T细胞功能,并与免疫检查点阻断联合应用,为精准免疫治疗提供潜在策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

多组学整合分析

评估腐胺代谢相关基因表达与CRC预后的关系,并确定其在不同细胞类型中的分布。

整合7个scRNA-seq数据集和GSE178341数据集,进行质量控制和聚类分析;对TCGA-COAD和GSE39582 bulk RNA-seq数据进行去卷积和生存分析。

2

体外评估PUT对CRC细胞恶性行为的影响

检测腐胺对CRC细胞增殖、迁移和EMT标志物表达的影响。

用1和5 µg/mL PUT处理HCT-116和RKO细胞,检测细胞增殖(MTT)、迁移(划痕实验)以及E-cadherin和N-cadherin表达(Western blot)。

3

CXCR6+CD8+ T细胞特征分析(scRNA-seq)

表征CXCR6+CD8+ T细胞在CRC中的比例、功能和预后意义。

基于整合scRNA-seq和GSE178341数据,比较CXCR6+CD8+ T细胞与CXCR6−CD8+ T细胞的基因表达和功能评分;进行生存分析。

4

腐胺积累与CXCR6+CD8+ T细胞功能关联

评估细胞外腐胺积累(Pi值)与CXCR6+CD8+ T细胞功能的相关性。

定义SPA和Pi值,通过LASSO回归分析Pi值与功能基因集评分的关联。

5

体外诱导CXCR6+CD8+ T细胞并验证PUT的抑制作用

验证细胞外腐胺是否直接抑制CXCR6+CD8+ T细胞的细胞毒功能。

使用HCT-116细胞裂解液和PBMCs体外诱导CXCR6+CD8+ T细胞,加PUT处理,检测细胞毒性相关标志物表达和细胞增殖。

6

体内DSS结肠炎模型验证PUT对CXCR6+CD8+ T细胞的影响

评估在体内补充腐胺对结肠CXCR6+CD8+ T细胞的影响及与炎症的关联。

建立DSS诱导结肠炎模型,三组:对照、DSS、DSS+PUT(1% PUT饲料)。进行组织学分析和scRNA-seq。

7

DFMO逆转实验

确定PUT对CXCR6+CD8+ T细胞的抑制作用是否通过ODC1途径。

用5 µg/mL PUT和/或DFMO处理脾脏来源的CXCR6+CD8+ T细胞,检测细胞毒分子表达和增殖。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
SeekOne® 数字液滴单细胞3'转录组试剂盒SeekOne--
RWD肠酶解试剂盒RWDDHIE-5007
DMEM培养基----
MEM培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
腐胺----
二氟甲基鸟氨酸----
MTT检测试剂盒Elabscience Biotechnology Co., Ltd.--
24孔Boyden腔,8µm孔径聚碳酸酯膜Corning--
抗微管蛋白抗体----
抗E-钙粘蛋白抗体----
抗N-钙粘蛋白抗体----
ImmunoCult™ 人CD3/CD28/CD2 T细胞激活剂StemcellCat. 10990
重组人白细胞介素-15BioLegendCat. 570306
RPMI 1640培养基----
Zombie NIR™ 可固定活力染料BioLegendCat. 423106
0.22µm无菌滤膜Nalgene720-1320

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
多组学数据分析
scRNA-seq数据集的质量控制指标(线粒体基因比例等)、细胞聚类分辨率、去卷积方法
阅读提示:Methods: Integration of single-cell RNA-seq datasets; Bulk RNA-seq cohorts, deconvolution, and survival analysis
细胞培养与处理
HCT-116和RKO细胞培养基(DMEM vs MEM)、FBS浓度(10%)、PUT处理浓度(1和5 µg/mL)、培养条件
阅读提示:Methods: In vitro culturing of HCT-116 and RKO cells
体外CXCR6+CD8+ T细胞诱导
PBMCs密度(2×10^6 cells/mL)、激活剂浓度(30 μL/mL)、IL-15浓度(20 ng/mL)、BALL-1细胞抗原体积(200 μL)、诱导时间(14天)、PUT处理浓度(2 µg/mL)
阅读提示:Methods: In vitro induction of CXCR6+CD8+T cells
DSS结肠炎模型
小鼠品系(C57BL/6)、年龄(6周)、性别(雄性)、分组(对照/DSS/DSS+PUT)、DSS浓度(2.5%)、PUT饮食浓度(1%)、实验持续时间(10天)、每组动物数(3只)
阅读提示:Methods: DSS-induced ulcerative colitis models
DFMO逆转实验
脾脏CXCR6+CD8+ T细胞分离方法、PUT和DFMO浓度、处理时间(48小时)
阅读提示:Methods: In vitro induction ...; Figure 8 legend