临床疗效评估
评估安降方在老年高血压患者中的降压疗效和血管功能改善
回顾性分析85例老年1级原发性高血压患者,分为AJ组和对照组,治疗8周,测量血压、FMD、PWV、cIMT和血清生物标志物
Anjiang formula inhibits PVN microglial activation and lowers blood pressure by targeting RhoA/ROCK2 pathway: a retrospective clinical and experimental study.
包含回顾性临床队列、SHR动物模型、BV-2小胶质细胞体外实验,以及SPR、MST、CETSA等生物物理验证,功能验证和机制验证明确。
自发性高血压大鼠(SHR) Wistar-Kyoto(WKY)对照大鼠 BV-2小胶质细胞 老年1级原发性高血压患者队列
AJ治疗组n=43,对照组n=42,治疗8周 SHR随机分为5组(n=5/组),AJ低剂量8.1 g/kg/天,高剂量16.2 g/kg/天,米诺环素50 mg/kg/天,灌胃10周 BV-2细胞用AngII 100 nM刺激,AJ浓度6.25和12.5 μg/mL SPR、MST、CETSA测定Shinflavanone与ROCK2的结合亲和力 ROCK2激动剂LPA逆转AJ效应的实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估安降方在老年高血压患者中的降压疗效和血管功能改善
回顾性分析85例老年1级原发性高血压患者,分为AJ组和对照组,治疗8周,测量血压、FMD、PWV、cIMT和血清生物标志物
鉴定安降方中与ROCK2直接结合的活性成分并验证其物理结合
通过UPLC-HRMS鉴定安降方化学成分;利用分子对接、SPR、MST和CETSA验证Shinflavanone与ROCK2的结合
在自发性高血压大鼠中验证安降方的降压效果和对PVN神经炎症的作用
SHR分为模型、AJ低剂量、AJ高剂量和米诺环素阳性对照组,治疗10周,每周测量血压,实验结束后进行组织学、免疫荧光和ELISA分析
在AngII刺激的BV-2小胶质细胞中验证安降方对RhoA/ROCK2通路及氧化应激和炎症的调节作用
BV-2细胞经AngII刺激,用AJ预处理,检测细胞活力、ROS、线粒体超氧化物、细胞因子、氧化应激标志物和相关蛋白表达;使用ROCK抑制剂Y-27632和激动剂LPA进行干预
评估临床和实验数据的统计学差异和关联
使用线性混合模型、单因素方差分析、多元逻辑回归等统计方法分析数据
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 血压测量 | 欧姆龙HEM-907XL | Omron | -- |
| 免疫荧光 | 抗Iba1抗体 | Abcam | AB221933 |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-R2401 |
| ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A001-3-2 | |
| 药物处理 | 血管紧张素II | Sigma-Aldrich | 05-23-0101 |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | KeyGEN BioTECH | KGA317 |
| 氧化应激检测 | 二氢乙啶检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | KGAF019 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | KeyGEN BioTECH | KGP903 |
| 细胞核染色 | Hoechst 33342 | KeyGEN BioTECH | KGA212-1 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Takara Bio | 9190 |
| RT-PCR | PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara Bio | RR820 A |
| Western blot | 抗NQO1抗体 | Proteintech | 67240-1-Ig |
| 抗Nox1抗体 | Proteintech | 17772-1-AP | |
| 抗Nox4抗体 | Proteintech | 67681-1-Ig | |
| 抗JUN抗体 | Proteintech | 24909-1-AP | |
| 抗ROCK2抗体 | Proteintech | 66633-1-Ig | |
| 抗CREB1抗体 | Proteintech | 67927-1-Ig | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 分子互作分析 | Biacore T200 | Cytiva | -- |
| Monolith NT.115 | NanoTemper Technologies | -- | |
| UPLC-HRMS | Q Exactive™ 四极杆-静电场轨道阱质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 色谱分离 | ACQUITY UPLC HSS T3色谱柱 | Waters | -- |
| 动物血压测量 | 尾套血压测量系统 | Kent Scientific | -- |
| 显微成像 | 共聚焦显微镜 | Nikon | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床研究 | 患者年龄≥60岁,1级原发性高血压(SBP≥140 mmHg,DBP≥90 mmHg);AJ组与对照组样本量分别为43和42;治疗周期8周;血压测量使用Omron HEM-907XL,取三次后两次平均值 阅读提示:Methods 2.1, 2.2; Figure 1a |
| 动物实验 | SHR和WKY大鼠8周龄;AJ低剂量8.1 g/kg/天、高剂量16.2 g/kg/天,米诺环素50 mg/kg/天,口服灌胃10周;各组n=5;血压每周测量 阅读提示:Methods 2.7; Figure 6a |
| 体外细胞实验 | BV-2小胶质细胞;AngII刺激浓度100 nM;AJ浓度6.25和12.5 μg/mL;LPA处理;CCK-8检测细胞活力;DHE和MitoSOX检测ROS 阅读提示:Methods 2.9; Figures 8, 11, 12 |
| 靶点结合验证 | SPR使用不同浓度Shinflavanone (3.125-50 μM);MST浓度范围0.1 nM-10 μM;CETSA浓度为10 μM,温度梯度40-67°C 阅读提示:Methods 2.6; Figure 5 |
| 统计分析 | 临床数据使用线性混合模型,含Group、Time和Group×Time交互项;多重比较采用ANOVA和Tukey或Dunnett's T3检验;显著性阈值p<0.05 阅读提示:Methods 2.13 |