一种组合性CAAR-T细胞策略在血友病A临床前模型中消除因子VIII抑制物

A combinatorial CAAR-T cell strategy to eliminate factor VIII inhibitors in preclinical models of hemophilia A.

作者信息Wenjie Li, Qirui Yang, Shuping Lai, Rongfang Wei, Lisheng Cai, Xue Zhang, Xin He, Yan Chen
PMID41797925
期刊iScience
发布时间2026-02-18
DOI10.1016/j.isci.2026.114924

实验完整度

包含体外细胞毒性、IFN-γ分泌、CD107a脱颗粒、F8KO小鼠模型体内疗效、ELISpot、Bethesda检测、抗体再激发、人源化NCG肿瘤模型及安全性评估等多个证据层级。

主要模型

F8KO血友病A小鼠模型 NCG人源化异种移植肿瘤模型 K562靶细胞系 人原代T细胞

重点核对

F8KO小鼠每周皮下注射重组人FVIII 10 IU共3周诱导抑制物;第0天尾静脉输注CAAR-T细胞 NCG小鼠皮下接种1×10^6 K562靶细胞(BOIIB2和RHD5 1:1混合),第3天和第7天尾静脉输注1×10^7 CAAR-T细胞 效靶比(E:T)为0.3:1、1:1和3:1用于体外杀伤实验 LDH释放法评估细胞毒性,IFN-γ ELISA检测免疫激活 ELISpot和Bethesda法检测抑制物滴度

摘要

嵌合自身抗体受体T(CAAR-T)细胞疗法将CAR-T技术扩展到靶向自身反应性免疫细胞,为治疗自身免疫性疾病提供了一种新方法。在血友病A中,抗因子VIII(FVIII)抑制物的产生构成了主要的临床挑战。本研究探讨了用FVIII C1或A2结构域工程化的CAAR-T细胞消除产生抑制物的B细胞的治疗潜力。体外细胞毒性试验证实,C1和A2 CAAR-T细胞对各自靶标表现出相当的杀伤效率。在F8KO血友病A小鼠模型中,两种CAAR-T细胞均显著降低了循环FVIII抑制物,而它们的组合进一步抑制了FVIII再激发后抑制物的重新出现。在人源化NCG小鼠模型中,组合CAAR-T疗法有效抑制了体内靶细胞扩增。这些发现表明,CAAR-T疗法,特别是组合方法,有望解决血友病A中FVIII抑制物的形成,提供一种靶向且有效的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CAAR-T细胞能否通过靶向FVIII A2和C1结构域来消除产生FVIII抑制物的B细胞,并通过组合疗法增强清除效果并抑制抑制物复发?
核心机制
CAAR-T细胞通过其表面展示的FVIII A2或C1结构域识别并结合抗FVIII B细胞受体(BCR),激活T细胞信号通路,导致靶细胞凋亡,从而清除产生FVIII抑制物的B细胞。
主要证据
体外细胞毒性实验显示A2和C1 CAAR-T细胞对靶细胞具有显著杀伤活性;F8KO小鼠模型中CAAR-T细胞显著降低血清FVIII抑制物水平,组合治疗进一步降低了再激发后的抑制物水平(Bethesda检测和ELISpot数据支持);人源化NCG模型中组合CAAR-T有效抑制肿瘤生长。
研究意义
该研究为针对FVIII抑制物的CAAR-T细胞疗法提供了临床前依据,特别是组合靶向A2和C1结构域的策略可能更全面地应对血友病A患者中异质性抑制物,为未来的临床转化奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CAAR构建与T细胞转导

构建靶向FVIII A2或C1结构域的CAAR-T细胞,并验证其在T细胞表面的表达。

将FVIII A2或C1结构域与CD28跨膜和共刺激域、CD3ζ信号域及P2A-GFP连接,克隆至慢病毒载体,转导激活的人或小鼠T细胞,通过GFP和HA标签检测表达。

2

体外靶细胞模型建立与杀伤验证

验证CAAR-T细胞能否特异性识别并杀伤表达抗FVIII抗体的靶细胞。

将源自BOIIB2(抗A2)和RHD5(抗C1)抗体的scFv插入K562细胞,建立靶细胞系;将CAAR-T细胞与靶细胞共培养,用LDH释放法检测细胞毒性,并检测IFN-γ分泌和CD107a表达。

3

F8KO小鼠模型评估体内疗效

在血友病A小鼠模型中评估CAAR-T细胞对FVIII抑制物的清除效果及长期作用。

F8KO小鼠皮下免疫重组人FVIII(10 IU/周×3周)建立抑制物模型,第0天尾静脉输注CAAR-T或对照T细胞;通过ELISA、ELISpot和Bethesda检测抑制物水平,并检测脾脏中CAAR-T细胞持久性。

4

FVIII再激发模型评估组合疗法

评估组合CAAR-T疗法在反复FVIII暴露下对抑制物复发的抑制作用。

F8KO小鼠免疫后输注A2、C1或组合CAAR-T细胞,第14天再次给予rFVIII再激发,第35天检测抑制物水平。

5

人源化NCG小鼠模型评估组合疗法的体内效果和安全性

在免疫缺陷小鼠中验证人CAAR-T细胞对模拟抑制物产生细胞的体内杀伤作用。

NCG小鼠皮下接种K562靶细胞(BOIIB2和RHD5 1:1混合),第3天和第7天静脉输注人A2和C1组合CAAR-T细胞,测量肿瘤体积和重量,并通过流式检测人T细胞持久性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
MojoSort™人CD3 T细胞分选试剂盒Biolegend480022
抗人CD3/CD28抗体Gibco11161D
ImmunoCult™-XF T细胞扩增培养基STEMCELL10981
HEK 293T细胞ATCC--
pMD2.G质粒----
psPAX2质粒----
聚乙二醇8000----
LDH细胞毒性检测试剂盒(WST)DOJINDOCK12
人IFN-γ ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0108
小鼠ELISPOT配件试剂盒DAKEWE2230014
APC抗人CD107a抗体Biolegend328619
APC抗小鼠CD45.1抗体Biolegend110713
Pacific Blue™抗人CD3抗体Biolegend980004
HA标签重组兔单克隆抗体InvitrogenMA5-27915
Pacific Blue™抗小鼠CD44抗体Biolegend156005
CD45.1重组单克隆抗体Proteintech84325-2-RR
CD3单克隆抗体Invitrogen14-0038-82
重组人凝血因子VIIISinoCellTechSCT800
F8KO小鼠Shanghai Modal Organisms--
NCG小鼠Jiangsu GemPharmatech Co., Ltd.--
6孔细胞培养板NEST714011
12孔细胞培养板NEST712002
96孔细胞培养板NEST713011
Multiscreen® 96孔板,亲水性PVDF膜MERCKMSHVS4510

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
F8KO小鼠模型建立
小鼠品系、性别、年龄、免疫剂量(10 IU rFVIII)、免疫次数(3次)、佐剂(铝佐剂)、总注射体积(200 μL)
阅读提示:请查阅STAR Methods中Animal models and in vivo CAAR T therapy部分(Hemophilia A mouse model)
体外细胞毒性实验
效应细胞与靶细胞比例(E:T)、共培养时间(18小时)、LDH释放试剂盒型号及货号
阅读提示:请查阅STAR Methods中In vitro cytotoxicity assay (LDH release)部分
F8KO小鼠体内疗效评估
CAAR-T细胞输注剂量、输注途径、检测时间点(第7天、70天等)
阅读提示:请查阅Results中In vivo therapeutic efficacy of CAAR-T cells in the HemA mouse model部分及图2图注
FVIII再激发模型
再激发剂量(10 IU)、再激发时间(第14天)、检测时间(第35天)、分组(UTD、A2、C1、组合)
阅读提示:请查阅Results中In vivo therapeutic efficacy...部分及图2E、F图注
人源化NCG肿瘤模型
NCG小鼠品系、靶细胞数量(1×10^6)、CAAR-T剂量(5×10^6每种,合计1×10^7)、注射时间(第3天、7天)、肿瘤测量频率(每4天)
阅读提示:请查阅STAR Methods中Tumor xenograft model部分及图4A图注