CAAR构建与T细胞转导
构建靶向FVIII A2或C1结构域的CAAR-T细胞,并验证其在T细胞表面的表达。
将FVIII A2或C1结构域与CD28跨膜和共刺激域、CD3ζ信号域及P2A-GFP连接,克隆至慢病毒载体,转导激活的人或小鼠T细胞,通过GFP和HA标签检测表达。
A combinatorial CAAR-T cell strategy to eliminate factor VIII inhibitors in preclinical models of hemophilia A.
包含体外细胞毒性、IFN-γ分泌、CD107a脱颗粒、F8KO小鼠模型体内疗效、ELISpot、Bethesda检测、抗体再激发、人源化NCG肿瘤模型及安全性评估等多个证据层级。
F8KO血友病A小鼠模型 NCG人源化异种移植肿瘤模型 K562靶细胞系 人原代T细胞
F8KO小鼠每周皮下注射重组人FVIII 10 IU共3周诱导抑制物;第0天尾静脉输注CAAR-T细胞 NCG小鼠皮下接种1×10^6 K562靶细胞(BOIIB2和RHD5 1:1混合),第3天和第7天尾静脉输注1×10^7 CAAR-T细胞 效靶比(E:T)为0.3:1、1:1和3:1用于体外杀伤实验 LDH释放法评估细胞毒性,IFN-γ ELISA检测免疫激活 ELISpot和Bethesda法检测抑制物滴度
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建靶向FVIII A2或C1结构域的CAAR-T细胞,并验证其在T细胞表面的表达。
将FVIII A2或C1结构域与CD28跨膜和共刺激域、CD3ζ信号域及P2A-GFP连接,克隆至慢病毒载体,转导激活的人或小鼠T细胞,通过GFP和HA标签检测表达。
验证CAAR-T细胞能否特异性识别并杀伤表达抗FVIII抗体的靶细胞。
将源自BOIIB2(抗A2)和RHD5(抗C1)抗体的scFv插入K562细胞,建立靶细胞系;将CAAR-T细胞与靶细胞共培养,用LDH释放法检测细胞毒性,并检测IFN-γ分泌和CD107a表达。
在血友病A小鼠模型中评估CAAR-T细胞对FVIII抑制物的清除效果及长期作用。
F8KO小鼠皮下免疫重组人FVIII(10 IU/周×3周)建立抑制物模型,第0天尾静脉输注CAAR-T或对照T细胞;通过ELISA、ELISpot和Bethesda检测抑制物水平,并检测脾脏中CAAR-T细胞持久性。
评估组合CAAR-T疗法在反复FVIII暴露下对抑制物复发的抑制作用。
F8KO小鼠免疫后输注A2、C1或组合CAAR-T细胞,第14天再次给予rFVIII再激发,第35天检测抑制物水平。
在免疫缺陷小鼠中验证人CAAR-T细胞对模拟抑制物产生细胞的体内杀伤作用。
NCG小鼠皮下接种K562靶细胞(BOIIB2和RHD5 1:1混合),第3天和第7天静脉输注人A2和C1组合CAAR-T细胞,测量肿瘤体积和重量,并通过流式检测人T细胞持久性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| T细胞分离与激活 | MojoSort™人CD3 T细胞分选试剂盒 | Biolegend | 480022 |
| 抗人CD3/CD28抗体 | Gibco | 11161D | |
| T细胞培养 | ImmunoCult™-XF T细胞扩增培养基 | STEMCELL | 10981 |
| 慢病毒包装 | HEK 293T细胞 | ATCC | -- |
| pMD2.G质粒 | -- | -- | |
| psPAX2质粒 | -- | -- | |
| 聚乙二醇8000 | -- | -- | |
| 细胞毒性检测 | LDH细胞毒性检测试剂盒(WST) | DOJINDO | CK12 |
| 细胞因子检测 | 人IFN-γ ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H0108 |
| ELISpot | 小鼠ELISPOT配件试剂盒 | DAKEWE | 2230014 |
| 流式细胞术 | APC抗人CD107a抗体 | Biolegend | 328619 |
| APC抗小鼠CD45.1抗体 | Biolegend | 110713 | |
| Pacific Blue™抗人CD3抗体 | Biolegend | 980004 | |
| 免疫组织化学 | HA标签重组兔单克隆抗体 | Invitrogen | MA5-27915 |
| 流式细胞术 | Pacific Blue™抗小鼠CD44抗体 | Biolegend | 156005 |
| 免疫组织化学 | CD45.1重组单克隆抗体 | Proteintech | 84325-2-RR |
| CD3单克隆抗体 | Invitrogen | 14-0038-82 | |
| 动物免疫 | 重组人凝血因子VIII | SinoCellTech | SCT800 |
| 动物模型 | F8KO小鼠 | Shanghai Modal Organisms | -- |
| NCG小鼠 | Jiangsu GemPharmatech Co., Ltd. | -- | |
| 细胞培养耗材 | 6孔细胞培养板 | NEST | 714011 |
| 12孔细胞培养板 | NEST | 712002 | |
| 96孔细胞培养板 | NEST | 713011 | |
| ELISpot | Multiscreen® 96孔板,亲水性PVDF膜 | MERCK | MSHVS4510 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| F8KO小鼠模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、免疫剂量(10 IU rFVIII)、免疫次数(3次)、佐剂(铝佐剂)、总注射体积(200 μL) 阅读提示:请查阅STAR Methods中Animal models and in vivo CAAR T therapy部分(Hemophilia A mouse model) |
| 体外细胞毒性实验 | 效应细胞与靶细胞比例(E:T)、共培养时间(18小时)、LDH释放试剂盒型号及货号 阅读提示:请查阅STAR Methods中In vitro cytotoxicity assay (LDH release)部分 |
| F8KO小鼠体内疗效评估 | CAAR-T细胞输注剂量、输注途径、检测时间点(第7天、70天等) 阅读提示:请查阅Results中In vivo therapeutic efficacy of CAAR-T cells in the HemA mouse model部分及图2图注 |
| FVIII再激发模型 | 再激发剂量(10 IU)、再激发时间(第14天)、检测时间(第35天)、分组(UTD、A2、C1、组合) 阅读提示:请查阅Results中In vivo therapeutic efficacy...部分及图2E、F图注 |
| 人源化NCG肿瘤模型 | NCG小鼠品系、靶细胞数量(1×10^6)、CAAR-T剂量(5×10^6每种,合计1×10^7)、注射时间(第3天、7天)、肿瘤测量频率(每4天) 阅读提示:请查阅STAR Methods中Tumor xenograft model部分及图4A图注 |