进化获得生长停滞持留菌
筛选能在指数期提前进入休眠的突变株
对数期大肠杆菌KLY周期性暴露于高浓度厄他培南,获得R6E2a等突变株,全基因组测序发现serS基因突变。
DEAD-box ATPase-marked condensates coordinate compartmentalized translation and antibiotic persistence.
包含体外相分离实验、体内荧光共定位、功能验证(敲除与过表达)、翻译活性检测及蛋白质组学等多层级验证。
大肠杆菌KLY菌株 大肠杆菌SerST突变株 大肠杆菌BW25113菌株 体外纯化蛋白体系
SerRS G208D突变导致其优先进入DeaD凝聚体 丝氨酸耗竭触发SerRS进入DeaD凝聚体 DeaD敲除对生长和滞后期影响极小,可能与其他DEAD-box ATPase冗余 SerRS进入凝聚体抑制凝聚体相关翻译 丝氨酸补充逆转SerRS隔离和翻译抑制
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选能在指数期提前进入休眠的突变株
对数期大肠杆菌KLY周期性暴露于高浓度厄他培南,获得R6E2a等突变株,全基因组测序发现serS基因突变。
检测丝氨酸缺乏是否为生长停滞的原因
通过LC-MS检测培养基中丝氨酸浓度,添加丝氨酸或类似物观察对生长和抗生素敏感性的影响。
检测SerRS是否进入凝聚体
利用CRISPR-Cas9在基因组中插入mCherry标签,共表达ECFP标记的DeaD,通过荧光显微镜观察共定位。
证明DeaD相分离并优先招募SerRST
体外纯化DeaD和SerRS蛋白,进行相分离实验,检测SerRST在DeaD凝聚体中的富集。
检测SerRS隔离是否影响翻译
使用SUnSET和OPP标记新合成多肽,检测整体和局部翻译水平。
鉴定SerRST进入凝聚体后成分改变
通过质谱分析不溶部分和免疫共沉淀,鉴定与SerRST互作的蛋白,并验证RplQ和HrpA的定位和功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | LB培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| M9基本培养基 | Sangon | -- | |
| 抗生素处理 | 厄他培南 | Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd. | -- |
| 诺氟沙星 | -- | -- | |
| 卡那霉素 | -- | -- | |
| 诱导剂 | 异丙基β-D-硫代半乳糖苷 | -- | -- |
| 四环素 | -- | -- | |
| 荧光标记 | mCherry荧光蛋白 | -- | -- |
| 增强型青色荧光蛋白 | -- | -- | |
| 蛋白质表达与纯化 | Ni-NTA琼脂糖 | -- | -- |
| 免疫印迹 | mCherry抗体 | Cell Signaling | 43590 |
| His标签抗体 | Sangon | D191001 | |
| 抗DnaK抗体 | Abcam | ab80161 | |
| 抗嘌呤霉素抗体 | AbClonal | A23031 | |
| 蛋白质浓度测定 | BCA蛋白测定试剂盒 | Beyotime | P0012 |
| 免疫共沉淀 | 抗mCherry纳米抗体免疫磁珠 | Elabscience | EAIP-005MN |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| GlycoBlue共沉淀剂 | Invitrogen | AM9515 | |
| tRNA charging assay | 酵母tRNAPhe | Sigma-Aldrich | R4018 |
| 截短T4 RNA连接酶2 | NEB | M0373 | |
| SuperScript IV逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific | 18090050 | |
| 翻译可视化 | Click-iT Plus OPP Alexa Fluor 594蛋白质合成检测试剂盒 | Invitrogen | -- |
| LC-MS | 4500+ QTrap质谱仪 | AB SCIEX | -- |
| ACQUITY UPLC H-Class系统 | Waters | -- | |
| ACQUITY UPLC BEH Amide色谱柱 | Waters | -- | |
| 质谱分析 | Thermo Orbitrap Fusion Tribrid质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 显微镜 | 尼康Ti2-E显微镜 | Nikon | -- |
| 尼康AXR NSPARC共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| FRAP | 奥林巴斯FV3000共聚焦显微镜 | Olympus | -- |
| 基因编辑 | CRISPR-Cas9系统 | -- | -- |
| 克隆 | ClonExpress II一步克隆试剂盒 | Vazyme | C112-01 |
| DNA提取 | TIANamp细菌DNA提取试剂盒 | Tiangen | DP302 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 菌株与生长条件 | 菌株:E. coli KLY (relA1 spoT1) 和 BW25113;培养基:LB (Sigma) 或 M9 (Sangon),补充0.2%葡萄糖等;温度37°C,摇床220 rpm;生长阶段:LB中∆OD600≈0.1(丝氨酸耗竭后) 阅读提示:Methods: Strains and cell culture |
| 抗生素处理与持留菌检测 | 厄他培南浓度:2 μg/ml;处理时间:2小时(循环)或3小时(杀伤实验);其他抗生素:诺氟沙星10 μg/ml,卡那霉素100 μg/ml;洗涤步骤:离心6000 rpm 6分钟,0.9% NaCl洗两次; 阅读提示:Methods: Cyclic evolution design, Killing assay |
| SerRS定位与凝聚体观察 | mCherry标签插入基因组;DeaD-ECFP表达质粒;诱导剂:四环素(0.05 μg/ml)或IPTG(1 mM);显微镜:Nikon AXR NSPARC或Olympus FV3000;荧光通道:445nm(ECFP), 561nm(mCherry) 阅读提示:Methods: Construct, Microscopy imaging |
| 翻译活性检测 | OPP浓度:20 μM;标记时间:30分钟;click反应;固定:4%甲醛;透化:0.1% Triton X-100;检测:荧光显微镜 阅读提示:Methods: Translation visualization |
| 体外相分离实验 | 蛋白浓度和NaCl浓度范围(100-500 mM);缓冲液:20 mM Tris-HCl pH 7.4, 500 mM NaCl;孵育5分钟;显微镜:Olympus FV3000 阅读提示:Methods: In vitro expression and purification, In vitro phase-separation assay |