预后基因筛选与验证
从免疫表型评分模型中鉴定与LUSC预后相关的关键基因。
基于既往17基因免疫表型评分模型,整合TCGA-LUSC队列的基因表达和生存数据,采用随机森林算法评估基因重要性,确定TGM2为最高优先级预后基因,并通过单因素和多因素Cox回归分析验证其独立预后价值。
TGM2 regulated by transcription factor NR3C1 drives p38 MAPK-mediated tumor progression and immune evasion in lung squamous cell carcinoma.
研究包含TCGA队列分析、细胞系功能实验(增殖、迁移、侵袭、凋亡)、Western blot验证p38通路及ChIP-qPCR验证NR3C1调控,但缺乏体内动物模型验证。
NCI-H520细胞系(低TGM2表达) SK-MES-1细胞系(高TGM2表达) TCGA-LUSC患者队列
TGM2预后价值(TCGA-LUSC队列,OS和DFS,P值分别为0.00018和0.00019) TGM2过表达/敲低细胞模型(NCI-H520过表达,SK-MES-1敲低) p38 MAPK通路激活验证(Western blot检测p-p38水平) NR3C1调控TGM2(ChIP-qPCR验证结合位点921-935) 免疫浸润分析(TIMER2.0,TGM2与Th1、NK细胞负相关,与M2巨噬细胞正相关)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从免疫表型评分模型中鉴定与LUSC预后相关的关键基因。
基于既往17基因免疫表型评分模型,整合TCGA-LUSC队列的基因表达和生存数据,采用随机森林算法评估基因重要性,确定TGM2为最高优先级预后基因,并通过单因素和多因素Cox回归分析验证其独立预后价值。
验证TGM2对LUSC细胞恶性表型(增殖、迁移、侵袭、克隆形成、凋亡)的影响。
在NCI-H520细胞中建立TGM2过表达(TGM2-OE)稳转株,在SK-MES-1细胞中通过siRNA敲低TGM2,分别用CCK-8、划痕愈合、Transwell、克隆形成和流式凋亡检测评估功能变化。
鉴定TGM2调控的下游信号通路。
通过TCGA-LUSC RPPA蛋白质组学分析鉴定TGM2高低风险组间的差异表达蛋白,结合UALCAN数据库分析信号通路,最后用Western blot验证p38 MAPK及其磷酸化水平。
探究TGM2表达与肿瘤免疫微环境的关系。
基于TCGA-LUSC转录组数据,通过limma筛选TGM2高低风险组间的差异表达基因,GSEA进行KEGG通路富集分析,TIMER2.0分析TGM2表达与免疫细胞浸润的相关性。
鉴定并验证调控TGM2表达的上游转录因子。
使用Cistrome DB和hTFtarget数据库预测TGM2潜在转录因子,与DEGs取交集后筛选出NR3C1,通过GEPIA分析NR3C1与TGM2表达相关性,JASPAR预测NR3C1结合位点,最后通过ChIP-qPCR验证NR3C1与TGM2启动子区域的直接结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | 上海生工生物工程股份有限公司 | -- |
| 细胞侵袭检测 | 基质胶 | -- | -- |
| 克隆形成实验 | 结晶紫 | 上海碧云天生物技术有限公司 | -- |
| 凋亡检测 | Annexin V-APC/7-AAD凋亡检测试剂盒 | 武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司 | -- |
| Western blot | 抗TGM2抗体 | HUABIO | ET1706-35 |
| 抗p38 MAPK抗体 | HUABIO | HA722036 | |
| 抗磷酸化p38 MAPK (T180/Y182)抗体 | HUABIO | ER1903-01 | |
| 抗NR3C1抗体 | Cell Signaling Technology | 12041 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 抗β-微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 2146 | |
| HRP标记的二抗 | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| ChIP-qPCR | SimpleChIP®酶法染色质免疫沉淀试剂盒(琼脂糖珠) | Cell Signaling Technology | 9002 |
| 图像分析 | ImageJ软件 | NIH | v1.53t |
| 数据分析 | GraphPad Prism软件 | -- | 9.0.0 |
| R软件 | -- | 4.3.1 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系与培养条件 | 细胞系为NCI-H520(TGM2低表达)和SK-MES-1(TGM2高表达),培养于RPMI-1640培养基,含10% FBS和1%青霉素-链霉素,37°C、5% CO₂。 阅读提示:Materials and Methods 2.3节 |
| TGM2过表达与敲低 | NCI-H520细胞通过慢病毒转染建立稳定TGM2过表达株;SK-MES-1细胞使用siRNA-1敲低。需验证转染效率和敲低效率。 阅读提示:Materials and Methods 2.3节,补充图S1A |
| 细胞功能表型检测条件 | CCK-8检测时间点(0-96小时)和450nm吸光度;Transwell迁移/侵袭使用2×10⁴细胞/孔;克隆形成1000细胞/皿培养10天;凋亡用Annexin V-APC/7-AAD染色。 阅读提示:Materials and Methods 2.4节 |
| Western blot条件 | 一抗稀释比例:TGM2 (1:1000),p38 MAPK (1:1000),p-p38 MAPK (1:1000),NR3C1 (1:1000),GAPDH (1:5000),β-tubulin (1:1000),二抗1:10000。 阅读提示:Materials and Methods 2.3节 |
| ChIP-qPCR验证 | 使用SimpleChIP® Enzymatic Chromatin IP Kit (#9002),NR3C1抗体,IgG为阴性对照。验证位点:TGM2启动子区域Site 1 (921-935)等。 阅读提示:Materials and Methods 2.7节,Results 3.5节,图8 |