转录因子NR3C1调控的TGM2驱动肺鳞状细胞癌中p38 MAPK介导的肿瘤进展和免疫逃逸

TGM2 regulated by transcription factor NR3C1 drives p38 MAPK-mediated tumor progression and immune evasion in lung squamous cell carcinoma.

作者信息Chunlong Lin, Shangfu Li, Liang Yi, Huiling Zhou, Zhiyi Xiao, Zhuo Yang, Qingping Chen, Xiangyang Peng, Kanao Li, Qing Wang, Wei Liu, Ni Li, Lun Li, Duanlin Du, Qi Xu, Lingge Yang
PMID41050683
发布时间2025-09-18
DOI10.3389/fimmu.2025.1595907

实验完整度

中

研究包含TCGA队列分析、细胞系功能实验(增殖、迁移、侵袭、凋亡)、Western blot验证p38通路及ChIP-qPCR验证NR3C1调控,但缺乏体内动物模型验证。

主要模型

NCI-H520细胞系(低TGM2表达) SK-MES-1细胞系(高TGM2表达) TCGA-LUSC患者队列

重点核对

TGM2预后价值(TCGA-LUSC队列,OS和DFS,P值分别为0.00018和0.00019) TGM2过表达/敲低细胞模型(NCI-H520过表达,SK-MES-1敲低) p38 MAPK通路激活验证(Western blot检测p-p38水平) NR3C1调控TGM2(ChIP-qPCR验证结合位点921-935) 免疫浸润分析(TIMER2.0,TGM2与Th1、NK细胞负相关,与M2巨噬细胞正相关)

摘要

背景:肺鳞状细胞癌(LUSC)恶性程度高,治疗靶点有限。既往研究表明转谷氨酰胺酶2(TGM2)调节肿瘤微环境,但其驱动LUSC进展和免疫逃逸的机制仍不清楚。方法:使用TCGA LUSC队列分析TGM2的预后价值。通过随机森林算法筛选关键基因。在NCI-H520和SK-MES-1细胞系中进行功能验证。蛋白质组学、GSEA和TIMER2.0评估下游通路和免疫浸润。转录调控数据库预测TGM2的上游转录因子,并通过染色质免疫沉淀(ChIP)-qPCR进行验证。结果:TGM2是LUSC的独立预后因素。TGM2高表达与总生存期(OS,P = 0.00018)和无病生存期(DFS,P = 0.00019)缩短相关。TGM2通过激活p38 MAPK信号通路促进LUSC细胞的增殖、迁移、侵袭、克隆形成,并抑制凋亡。TGM2水平升高与免疫抑制微环境相关:Th1(R = -0.186,P < 0.0001)和NK细胞浸润减少(R = -0.116,P = 0.0092),M2巨噬细胞(R = 0.164–0.528,P < 0.0001)和癌症相关成纤维细胞浸润增加(R = 0.469,P < 0.0001)。NR3C1被确定为调控TGM2的关键转录因子。ChIP-qPCR分析证实NR3C1与TGM2启动子内的特定位点(921-935)结合,且它们的表达呈强正相关(R = 0.53,P < 0.0001)。结论:TGM2通过p38 MAPK激活驱动LUSC进展,并通过NR3C1的转录调控塑造免疫抑制微环境。本研究支持TGM2作为预后生物标志物,并提示其作为治疗靶点的潜力,这可能为未来的联合免疫治疗策略提供信息。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TGM2在LUSC中驱动肿瘤进展和免疫逃逸的具体分子机制及其上游调控因子是什么?
核心机制
NR3C1作为转录因子结合TGM2启动子区域(921-935位点)促进其转录,上调的TGM2通过激活p38 MAPK信号通路促进肿瘤细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡抵抗,并可能通过调节该通路塑造免疫抑制微环境。
主要证据
TCGA-LUSC队列分析显示TGM2高表达与不良预后相关;NCI-H520和SK-MES-1细胞系的功能实验证实TGM2促癌作用;Western blot验证p38 MAPK激活;ChIP-qPCR证实NR3C1直接结合TGM2启动子;TIMER2.0分析显示TGM2与免疫细胞浸润相关。
研究意义
本研究首次阐明NR3C1/TGM2-p38 MAPK轴在LUSC中驱动肿瘤恶性进展和免疫微环境失衡的双重作用,为将TGM2作为预后生物标志物和潜在治疗靶点提供机制依据,可能为未来的靶向-免疫联合治疗策略提供信息。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

预后基因筛选与验证

从免疫表型评分模型中鉴定与LUSC预后相关的关键基因。

基于既往17基因免疫表型评分模型,整合TCGA-LUSC队列的基因表达和生存数据,采用随机森林算法评估基因重要性,确定TGM2为最高优先级预后基因,并通过单因素和多因素Cox回归分析验证其独立预后价值。

2

TGM2功能表型验证

验证TGM2对LUSC细胞恶性表型(增殖、迁移、侵袭、克隆形成、凋亡)的影响。

在NCI-H520细胞中建立TGM2过表达(TGM2-OE)稳转株,在SK-MES-1细胞中通过siRNA敲低TGM2,分别用CCK-8、划痕愈合、Transwell、克隆形成和流式凋亡检测评估功能变化。

3

下游信号通路验证

鉴定TGM2调控的下游信号通路。

通过TCGA-LUSC RPPA蛋白质组学分析鉴定TGM2高低风险组间的差异表达蛋白,结合UALCAN数据库分析信号通路,最后用Western blot验证p38 MAPK及其磷酸化水平。

4

免疫微环境分析

探究TGM2表达与肿瘤免疫微环境的关系。

基于TCGA-LUSC转录组数据,通过limma筛选TGM2高低风险组间的差异表达基因,GSEA进行KEGG通路富集分析,TIMER2.0分析TGM2表达与免疫细胞浸润的相关性。

5

上游转录调控机制探索

鉴定并验证调控TGM2表达的上游转录因子。

使用Cistrome DB和hTFtarget数据库预测TGM2潜在转录因子,与DEGs取交集后筛选出NR3C1,通过GEPIA分析NR3C1与TGM2表达相关性,JASPAR预测NR3C1结合位点,最后通过ChIP-qPCR验证NR3C1与TGM2启动子区域的直接结合。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
CCK-8试剂盒上海生工生物工程股份有限公司--
基质胶----
结晶紫上海碧云天生物技术有限公司--
Annexin V-APC/7-AAD凋亡检测试剂盒武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司--
抗TGM2抗体HUABIOET1706-35
抗p38 MAPK抗体HUABIOHA722036
抗磷酸化p38 MAPK (T180/Y182)抗体HUABIOER1903-01
抗NR3C1抗体Cell Signaling Technology12041
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2146
HRP标记的二抗Cell Signaling Technology7076
SimpleChIP®酶法染色质免疫沉淀试剂盒(琼脂糖珠)Cell Signaling Technology9002
ImageJ软件NIHv1.53t
GraphPad Prism软件--9.0.0
R软件--4.3.1

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞系与培养条件
细胞系为NCI-H520(TGM2低表达)和SK-MES-1(TGM2高表达),培养于RPMI-1640培养基,含10% FBS和1%青霉素-链霉素,37°C、5% CO₂。
阅读提示:Materials and Methods 2.3节
TGM2过表达与敲低
NCI-H520细胞通过慢病毒转染建立稳定TGM2过表达株;SK-MES-1细胞使用siRNA-1敲低。需验证转染效率和敲低效率。
阅读提示:Materials and Methods 2.3节,补充图S1A
细胞功能表型检测条件
CCK-8检测时间点(0-96小时)和450nm吸光度;Transwell迁移/侵袭使用2×10⁴细胞/孔;克隆形成1000细胞/皿培养10天;凋亡用Annexin V-APC/7-AAD染色。
阅读提示:Materials and Methods 2.4节
Western blot条件
一抗稀释比例:TGM2 (1:1000),p38 MAPK (1:1000),p-p38 MAPK (1:1000),NR3C1 (1:1000),GAPDH (1:5000),β-tubulin (1:1000),二抗1:10000。
阅读提示:Materials and Methods 2.3节
ChIP-qPCR验证
使用SimpleChIP® Enzymatic Chromatin IP Kit (#9002),NR3C1抗体,IgG为阴性对照。验证位点:TGM2启动子区域Site 1 (921-935)等。
阅读提示:Materials and Methods 2.7节,Results 3.5节,图8