临床队列纳入与基线评估
比较PSP患者与健康对照的基线临床特征和动脉粥样硬化危险因素。
纳入56名PSP患者和56名年龄、性别匹配的健康对照,收集人口学、临床病史和实验室检查数据。
Increased tau-induced inflammatory responses are associated with a greater degree of atherosclerosis in progressive supranuclear palsy.
包含临床患者横断面研究(影像学、血浆生化、流式)和动物模型验证(tau-PFFs注射后组织学、生化、流式)两个独立证据层级,并包含功能验证。
PSP患者队列(n=56) 健康对照队列(n=56) C57BL/6J小鼠tau-PFFs尾静脉注射模型
PSP和对照组的年龄、性别匹配(n=56 vs 56) tau-PFFs注射剂量:5μg,每2周一次,共3个月(12只/组) 颈动脉超声和MRA评估参数(max-CIMT, max-CPT, TPN, CPS, stenosis%, GSS) 血浆tau和炎症因子检测(ELISA)及流式细胞术(巨噬细胞比例) 主动脉组织学(H&E, Oil Red O, CD68 IHC)和Western blot(CD68, tau, IL-6, IL-1β)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较PSP患者与健康对照的基线临床特征和动脉粥样硬化危险因素。
纳入56名PSP患者和56名年龄、性别匹配的健康对照,收集人口学、临床病史和实验室检查数据。
评估PSP患者与对照组在颈动脉和颅内动脉的动脉粥样硬化负担差异。
使用颈动脉彩超测量max-CIMT、max-CPT、TPN、CPS和狭窄百分比;使用3T MRA评估颅内狭窄并计算GSS。
比较PSP患者与对照组血浆中脂质、tau蛋白和炎症因子水平的差异。
采集空腹外周血,离心分离血浆,使用ELISA检测总tau、p-tau181、p-tau396、IL-6、IL-1β、IL-10、TNF-α、IFN-γ等,并检测血脂、HbA1c、Hcy。
评估PSP患者外周血中巨噬细胞及其M1亚群比例的变化。
使用流式细胞术检测外周血中CD14+CD68+巨噬细胞和CD86+CD206- M1型巨噬细胞比例。
验证慢性外周tau暴露是否会诱导全身炎症和血管病变。
C57BL/6J小鼠(12只/组)尾静脉注射tau-PFFs(5μg/次,每2周一次)或PBS对照,3个月后取材。
评估tau-PFFs处理后小鼠主动脉的组织学变化和炎症分子表达。
对主动脉弓进行H&E、Oil Red O染色和CD68免疫组化;Western blot检测CD68、tau、IL-6、IL-1β、TNF-α表达。
评估tau-PFFs处理后小鼠外周血中巨噬细胞比例和炎症因子水平。
通过流式细胞术检测CD11b+F4/80+巨噬细胞比例;ELISA检测血浆IL-6、IL-1β、TNF-α水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 颈动脉超声 | 7.5 MHz线性探头 | GE Healthcare | -- |
| 磁共振血管成像 | 3特斯拉磁共振扫描仪 | Siemens Healthcare | -- |
| 电泳与转膜 | 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- |
| 蛋白检测 | 增强化学发光检测试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RIPA裂解 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 组织包埋 | OCT包埋剂 | Tissue-Tek, Sakura Finetek | -- |
| 冷冻切片 | 冷冻切片机 | Leica | CM1950 |
| 组织染色 | 油红O染色试剂盒 | Solarbio | -- |
| 红细胞裂解 | 红细胞裂解液 | Solarbio | -- |
| 细胞活性染色 | Zombie Aqua™可固定活力染料 | BioLegend | -- |
| 流式细胞术 | BD FACS Celesta流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 流式数据分析 | FlowJo软件(v10.4) | FlowJo LLC | -- |
| Western blot定量 | ImageJ软件(v1.53) | National Institutes of Health | -- |
| 统计分析 | IBM SPSS统计软件(27.0版) | IBM Corp. | -- |
| GraphPad Prism 9.0软件 | GraphPad Software Inc. | -- | |
| 抗体(CD68) | CD68抗体 | Abcam | ab955 |
| 抗体(tau) | Tau抗体 | Invitrogen | MN1000 |
| 抗体(IL-1β) | IL-1β抗体 | Abcam | ab200478 |
| 抗体(TNF-α) | TNF-α抗体 | Proteintech | 17590-1-AP |
| 抗体(IL-6) | IL-6抗体 | Affinity | DF6087 |
| 抗体(GAPDH) | GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP |
| 抗体(二抗) | 抗鼠二抗 | Abcam | ab6789 |
| 抗兔二抗 | Abcam | ab6721 | |
| ELISA(人IL-6) | 人白细胞介素-6 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-HSEL-H0003 |
| ELISA(人IL-1β) | 人白细胞介素-1β ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-HSEL-H0001 |
| ELISA(人IL-10) | 人白细胞介素-10 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-EL-H0005 |
| ELISA(人IFN-γ) | 人干扰素-γ ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-HSEL-H0007 |
| ELISA(人TNF-α) | 人肿瘤坏死因子-α ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-HSEL-H0109c |
| ELISA(人总tau) | 人总tau ELISA试剂盒 | mlbio | ml057755 |
| ELISA(人p-tau181) | 人磷酸化tau-181 ELISA试剂盒 | mlbio | ml057691 |
| ELISA(人p-tau396) | 人磷酸化tau-396 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-EL-H5314c |
| ELISA(小鼠IL-6) | 小鼠白细胞介素-6 ELISA试剂盒 | mlbio | ml098430 |
| ELISA(小鼠IL-1β) | 小鼠白细胞介素-1β ELISA试剂盒 | mlbio | ml098416 |
| ELISA(小鼠TNF-α) | 小鼠肿瘤坏死因子-α ELISA试剂盒 | mlbio | mIC50536-1 |
| 流式抗体(人CD45) | 抗人CD45抗体 | BioLegend | -- |
| 流式抗体(人CD14) | 抗人CD14抗体 | BioLegend | -- |
| 流式抗体(人CD86) | 抗人CD86抗体 | BioLegend | -- |
| 流式抗体(人CD206) | 抗人CD206抗体 | BioLegend | -- |
| 流式抗体(人CD68) | 抗人CD68抗体 | BioLegend | -- |
| 流式破膜剂 | 固定/破膜缓冲液 | eBioscience | -- |
| 流式抗体(小鼠CD45) | 抗小鼠CD45抗体 | BD Pharmingen | -- |
| 流式抗体(小鼠CD11b) | 抗小鼠CD11b抗体 | BD Pharmingen | -- |
| 流式抗体(小鼠F4/80) | 抗小鼠F4/80抗体 | Invitrogen | -- |
| tau-PFFs制备 | 重组小鼠tau单体 | CUSABIO | CSB-YP013481MO |
| 肝素 | -- | -- | |
| 二硫苏糖醇 | -- | -- | |
| 组织脱水 | 蔗糖溶液 | -- | -- |
| Western blot封闭 | 脱脂奶粉 | -- | -- |
| Western blot洗涤 | 吐温-20 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床队列纳入 | PSP诊断标准(MDS标准)、年龄>50岁、排除标准(3个月内使用抗生素/免疫抑制剂、炎症性疾病、自身免疫病、恶性肿瘤) 阅读提示:Methods 2.1 Participants |
| 颈动脉超声评估 | 使用7.5 MHz线性探头,max-CIMT测量位置(1-1.5cm处),斑块定义(>50%周围壁厚),CPS评分标准(斑块直径≥1.5, 2.5, 3.5mm分别记1,2,3分) 阅读提示:Methods 2.3 Carotid artery assessment |
| MRA评估 | 3T MRI,11个血管区域,狭窄分级标准(0-4级),GSS计算 阅读提示:Methods 2.4 Magnetic resonance angiography examination |
| 血浆生物标志物检测 | 空腹采血(K2 EDTA管),离心条件(2,000rpm, 10min, 4°C),ELISA试剂盒品牌和货号 阅读提示:Methods 2.2 Human sample collection and 2.10 ELISA |
| 流式细胞术 | 抗体克隆(CD45: 2D1, CD14: HCD14, CD86: IT2.2, CD206: 15-2, CD68: Y1/82A),孵育时间(30min, 4°C),破膜步骤,仪器(BD FACS Celesta) 阅读提示:Methods 2.11 Flow cytometry |
| tau-PFFs制备 | 重组tau单体浓度(1mg/mL),肝素共孵育,缓冲液组成(10mM HEPES, pH 7.4, 100mM NaCl, 5mM DTT),振荡条件(1,000rpm, 10天, 37°C) 阅读提示:Methods 2.6 Tau-preformed fibrils (tau-PFFs) preparation |
| 小鼠模型处理 | 小鼠品系(C57BL/6J雄性),年龄(6-8周),注射剂量(5μg/次,25μL,每2周),对照组(PBS),取材时间(3个月) 阅读提示:Methods 2.5 Animals and 2.7 Tail vein injection and sampling |
| 主动脉组织分析 | 固定液(4% PFA, 24h, 4°C),蔗糖脱水(30%, 24h),OCT包埋,切片厚度(20μm),H&E和Oil Red O染色,CD68 IHC(一抗ab955, 1:500) 阅读提示:Methods 2.8 Histopathology analysis |
| Western blot | RIPA裂解液(含蛋白酶抑制剂),离心(120,000g, 30min, 4°C),上样量(10μL),凝胶浓度(8%或12%),PVDF膜,封闭(5%脱脂奶粉,1h),一抗孵育(4°C过夜),二抗(1h) 阅读提示:Methods 2.9 Western blot |
| 统计方法 | 正态性检验(D'Agostino-Pearson),组间比较(t检验或Mann-Whitney U),ANCOVA调整协变量(年龄、性别、吸烟、卒中史),多因素线性回归调整协变量 阅读提示:Methods 2.12 Statistical analyses |