GD2TIF细胞的生成与体外验证
验证BCOR和ZC3H12A双敲除是否使GD2 CAR T细胞获得TIF特性。
使用CRISPR/Cas9系统生成野生型、单敲除和双敲除的GD2 CAR T细胞,检测其表型和功能。
GD2TIF cells as a platform for single-dose and long-term delivery of biologics.
包含体外细胞实验、动物模型(ob/ob、HFD、EAE、LCMV感染)、患者样本分析及单细胞测序等多层级验证,并明确功能验证和机制验证。
GD2TIF细胞(BCOR和ZC3H12A双敲除的GD2 CAR T细胞) ob/ob小鼠(瘦素缺陷) 高脂饮食诱导的肥胖小鼠模型 C57BL/6小鼠
GD2TIF细胞在免疫健全小鼠中无需化疗预处理即可长期存活(至少12个月); BCOR和ZC3H12A双敲除且表达GD2 CAR是诱导TIF状态的必要条件; 单次输注1×10^6 GD2TIF-Leptin细胞可显著降低ob/ob小鼠体重和体脂比例; 单次输注GD2TIF-GLP-1细胞可逆转HFD诱导的肥胖和糖尿病,且不影响胃排空; 通过anti-Thy1.1抗体可有效清除体内GD2TIF细胞。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证BCOR和ZC3H12A双敲除是否使GD2 CAR T细胞获得TIF特性。
使用CRISPR/Cas9系统生成野生型、单敲除和双敲除的GD2 CAR T细胞,检测其表型和功能。
评估GD2TIF细胞在无预处理条件下的体内扩增和持久性。
将1×10^6 GD2TIF细胞静脉输注至C57BL/6小鼠,通过系列采血和FACS监测细胞水平,并分析表型和克隆性。
评估GD2TIF细胞对宿主免疫稳态和整体健康的影响。
分析携带GD2TIF细胞的小鼠的内源性免疫细胞、组织病理、病毒清除能力和EAE诱导反应。
验证GD2TIF细胞能否通过分泌炎症因子快速建立疾病模型。
输注分泌TNF或IL-5的GD2TIF细胞至C57BL/6小鼠,监测髓系细胞或嗜酸性粒细胞扩增。
评估单次输注GD2TIF-Leptin细胞能否纠正遗传性瘦素缺乏。
将GD2TIF-Leptin细胞输注至ob/ob小鼠,监测体重、体脂、胰岛素敏感性、血糖稳态和代谢表型。
评估单次输注GD2TIF-GLP-1细胞能否逆转饮食诱导的肥胖和糖尿病。
将GD2TIF-GLP-1细胞输注至HFD饲养的C57BL/6小鼠,监测体重、体脂、血糖稳态和代谢参数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| RPMI1640培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| T细胞活化 | 抗小鼠CD3ε抗体 | Bio X Cell | BE0001-1 |
| 抗小鼠CD28抗体 | Bio X Cell | BE0015-1 | |
| 细胞增殖 | CellTrace Violet染料 | Invitrogen | C34571 |
| 流式细胞术 | Fc受体阻断剂 | InVivoMab | BE0307 |
| DAPI染料 | Thermo | 62248 | |
| H-2Db LCMV gp33四聚体-PE | MBL | TB-5002-1 | |
| 转录因子固定/通透试剂盒 | BD | 562574 | |
| 可固定近红外染料 | Invitrogen | L34976 | |
| BD CytoFix/通透试剂盒 | BD Pharmingen | 554714 | |
| 细胞因子刺激 | PMA | MCE | HY-18739 |
| 离子霉素 | MCE | HY-13434 | |
| GolgiStop | BD | 554724 | |
| 转染 | Chemifect转染试剂 | Fengrui Bio | 51985 |
| 基因表达 | pMSCV载体 | Addgene | 74056 |
| 组织消化 | IV型胶原酶 | Thermo Scientific | 17104-019 |
| 细胞分离 | Percoll | Cytiva | 17089101 |
| 组织处理 | 70μm细胞筛网 | BD | 352350 |
| 流式细胞术 | LSRFortessa流式细胞仪 | BD | -- |
| 流式细胞分选 | S3e分选仪 | Bio-Rad | -- |
| 单细胞测序 | 新格元Matrix单细胞处理系统 | Singleron | -- |
| 测序 | Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 代谢分析 | PhenoMaster代谢监测系统 | TSE System | -- |
| 身体成分分析 | EchoMRI分析仪 | EchoMRI | -- |
| 血糖测定 | 血糖仪 | Yuwell | -- |
| ELISA | 瘦素ELISA试剂盒 | Sangon | D721199 |
| 胃排空 | Tentagel MB-NH2微珠 | RAPP Polymer | RAP-MB250002 |
| Cy7标记试剂盒 | ElabScience | E-LK-C005C | |
| 体内成像 | IVIS Spectrum活体成像系统 | PerkinElmer | -- |
| 条件味觉厌恶 | 糖精 | MCE | HY-Y0272 |
| Exendin-4 | MCE | HY13443 | |
| EAE模型 | 不完全弗氏佐剂 | Difco | 263910 |
| 分枝杆菌 | Difco | 3114-33 | |
| 百日咳毒素 | Invitrogen | PHZ1174 | |
| MOG肽 | -- | -- | |
| 胰岛素耐量试验 | 诺和灵R | Novo Nordisk | -- |
| 抗体清除 | 抗小鼠Thy1.1抗体 | Bio X Cell | BE0214 |
| 流式细胞术 | 抗小鼠Thy1.1 (OX-7) 生物素化抗体 | BioLegend | 202510 |
| 抗小鼠Thy1.1 (OX-7) PE抗体 | BioLegend | 202524 | |
| 抗小鼠Thy1.1 (OX-7) APC抗体 | BioLegend | 202526 | |
| 抗小鼠CD8α (53-6.7) Brilliant Violet 421抗体 | Thermo Fisher Scientific | 100725 | |
| 抗小鼠CD4 (RM4-5) APC抗体 | BioLegend | 100526 | |
| 抗小鼠CD11b (M1/70) APC/Cyanine7抗体 | BD Biosciences | 561039 | |
| 抗小鼠CD44 (1M7) PerCP/Cyanine5.5抗体 | BioLegend | 103032 | |
| 抗小鼠CD62L (MEL-14) PE/Cyanine7抗体 | BioLegend | 104418 | |
| 抗小鼠TCF1 (C63D9) PE抗体 | Cell Signaling Technology | 14456 | |
| 抗小鼠TOX (TXRX10) PE抗体 | Thermo Fisher Scientific | 12-6502-82 | |
| 抗小鼠EOMES APC抗体 | Thermo Fisher Scientific | 17-4875-82 | |
| 抗小鼠Ly108 (13G3-19D) PE抗体 | Thermo Fisher Scientific | 17-1508-82 | |
| 抗小鼠CXCR5 生物素化抗体 (L138D7) | BioLegend | 145510 | |
| 抗小鼠IFN-γ PE抗体 (XMG1.2) | BioLegend | 505808 | |
| 抗小鼠B220 Brilliant Violet 421抗体 (RA3-6B2) | BioLegend | 48-0452-82 | |
| 抗小鼠Siglec-F PE抗体 (1RNM44N) | Thermo Fisher Scientific | 12-1702-82 | |
| 链霉亲和素PE | BioLegend | 405204 | |
| 链霉亲和素APC | BioLegend | 405243 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| GD2TIF细胞生成 | 使用CRISPR/Cas9同时敲除BCOR和ZC3H12A,并表达GD2 CAR;GD2 CAR的CD28共刺激域是必需的;对照需包括单敲除和野生型。 阅读提示:Methods 'Mice and cell lines'和'Plasmids'部分 |
| 细胞输注 | 细胞剂量:1×10^6 cells/mouse;输注途径:尾静脉注射;无需任何预处理方案;使用CD8+Thy1.1+或CD8+Thy1.1+GFP+细胞。 阅读提示:Methods 'T cell activation, transduction and adoptive cell transfer'部分 |
| ob/ob小鼠模型 | 使用4周龄雄性ob/ob小鼠;输注1×10^6 GD2TIF-Leptin细胞;监测体重、体脂、ITT、GTT、代谢表型。 阅读提示:Figure 3 legend 和 Methods 'Genetic and HFD-induced obesity models in mice'部分 |
| 高脂饮食模型 | 使用6周龄雄性C57BL/6小鼠;先输注1×10^6 GD2TIF-GLP-1细胞,一周后开始HFD(60% kCal fat);监测体重、体脂、ITT、GTT。 阅读提示:Figure 4 legend 和 Methods 'Genetic and HFD-induced obesity models in mice'部分 |
| 安全性评估 | 内源性免疫细胞水平、组织病理、LCMV感染反应、EAE诱导、anti-Thy1.1抗体清除的效率。 阅读提示:Results 'Safety of GD2TIF cells in vivo'部分和相关补充图 |